生命科学関連特許情報
| タイトル： | 公表特許公報(A)_相対的溶血指数を決定するための抗体、システム、および、方法 |
| 出願番号： | 2012535370 |
| 年次： | 2013 |
| IPC分類： | G01N 33/68,G01N 33/50 |
特許情報キャッシュ
ハルバーソン、グレゴリー アール JP 2013508730 公表特許公報(A) 20130307 2012535370 20101021 相対的溶血指数を決定するための抗体、システム、および、方法 ニューヨーク ブラッド センター インコーポレイテッド 511313802 木村 満 100095407 毛受 隆典 100109449 森川 泰司 100132883 雨宮 康仁 100123618 桜田 圭 100148633 美恵 英樹 100147924 ハルバーソン、グレゴリー アール US 61/253,774 20091021 G01N 33/68 20060101AFI20130208BHJP G01N 33/50 20060101ALI20130208BHJP JPG01N33/68G01N33/50 L AP(BW,GH,GM,KE,LR,LS,MW,MZ,NA,SD,SL,SZ,TZ,UG,ZM,ZW),EA(AM,AZ,BY,KG,KZ,MD,RU,TJ,TM),EP(AL,AT,BE,BG,CH,CY,CZ,DE,DK,EE,ES,FI,FR,GB,GR,HR,HU,IE,IS,IT,LT,LU,LV,MC,MK,MT,NL,NO,PL,PT,RO,RS,SE,SI,SK,SM,TR),OA(BF,BJ,CF,CG,CI,CM,GA,GN,GQ,GW,ML,MR,NE,SN,TD,TG),AE,AG,AL,AM,AO,AT,AU,AZ,BA,BB,BG,BH,BR,BW,BY,BZ,CA,CH,CL,CN,CO,CR,CU,CZ,DE,DK,DM,DO,DZ,EC,EE,EG,ES,FI,GB,GD,GE,GH,GM,GT,HN,HR,HU,ID,IL,IN,IS,JP,KE,KG,KM,KN,KP,KR,KZ,LA,LC,LK,LR,LS,LT,LU,LY,MA,MD,ME,MG,MK,MN,MW,MX,MY,MZ,NA,NG,NI,NO,NZ,OM,PE,PG,PH,PL,PT,RO,RS,RU,SC,SD,SE,SG,SK,SL,SM,ST,SV,SY,TH,TJ,TM,TN,TR,TT,TZ,UA,UG,US,UZ,VC,VN,ZA,ZM,ZW US2010053565 20101021 WO2011050172 20110428 19 20120619 2G045 2G045AA07 2G045CA26 2G045DA37 本出願は、２００９年１０月２１日に出願された米国仮出願番号６１／２５３，７７４に優先権を主張するもので、その全体が参照により本明細書に援用される。 医療におけるより深刻な問題の一つは、患者間の輸血の適合性である。適合性のない血液の輸血はまた、血管内溶血と呼ばれる溶血性輸血イベントが発生する可能性がある。 血管内溶血は、赤血球膜の破裂と末梢血液循環中への細胞内容物の放出に起因する、赤血球（ＲＢＣ）の破壊からなる。遊離ヘモグロビンは、血漿中（ヘモグロビン血症）や、尿中に（ヘモグロビン尿症）観察され、腎機能は、しばしば尿細管を遮断（閉塞）する赤血球膜断片のために損なわれる。すぐに医学的処置が行われない場合、この閉塞は腎機能の損失、そして死へとつながる。 溶血は、患者の血液中の、輸血された赤血球（ＲＢＣ）への攻撃を促進する抗体の存在に起因する、輸血後の免疫系の活性化によって引き起こされる。ほとんどの血液型システムでは、ある（血液型の）グループの人は、グループに付されている型名の抗体を持っていない。したがって、患者は、同様に型付けされた人から、溶血を誘発することなく、輸血を受けることができるはずである。ただし、状況によっては、ある（血液型の）グループの人は、欠如していると考えられる抗体を産生することができる。このような抗体の産生は、それ以前の輸血、多胎妊娠、ある特定の感染、または、ヒト血液型抗原に相同なタンパク質への自然曝露によって、その後生じる可能性がある。たとえば、研究では、すべての輸血患者の約１−２％が血液型抗原に特異的な同種抗体を生成することが示されている。これらの数値は、鎌状赤血球貧血症や白血病患者のような、多重輸血患者の間で非常に高く、これらの患者では、輸血適合性を決定する多くの抗体を産生するため、それが、輸血適合性の決定をはるかに困難にしている。 臨床的に重要であると考えられる抗体を産生するように感作された人はすべて、交差適合性のある血液を受ける必要がある。交差適合性（Cross-match compatibility）は、供血者（ドナー）の血液と受血者（レシピエント）の血清または血漿とを混合し、赤血球凝集または溶血が発生するかどうかを観察することによって決定される。いずれかが発生した場合、重要な溶血イベントを引き起こす可能性があるため、輸血は行われない。輸血されるドナーの血液は、レシピエントと適合性があり、理想的には、特定の抗血清でテストすることによって、抗原がネガティブであることが示されなければならない。この様に、２つの検査が、保留中の輸血の安全性を高めるために行われている。 現在利用可能な血清学的検査は、唯一、ヒト血清中のＲＢＣ−特異的抗体の存在を識別することが可能である。これらのアッセイは、生物学的アッセイではないので、確実性を持って、輸血中に生じる抗体介在性溶血の可能性を、予測することはできない。 輸血後の溶血イベントを有する患者のリスクは、抗体の特異性や、どのようなタイプの反応が引き起こされたか報告されている、過去のデータに基づいて、部分的に評価される。非常に複雑なケースでは、医師は、適合性のない血液の輸血結果とレシピアントの生存とを比較検討する必要がある。したがって、血液適合性試験での改善が必要となる。 本開示は、輸血後に生じる溶血性イベントの可能性を予測するための、新しいモノクローナル抗体、システムおよび方法を提供する。開示されたシステムおよび方法は、相対的溶血指数（Relative Hemolytic Index、「ＲＨＩ」）を決定するのに有用である。開示されたシステムおよび方法は、血管内溶血のリスク評価のための、より迅速、効率的で、かつより安価な方法を提供する。 一実施形態は、輸血レシピエントにおける輸血後の溶血の危険性を判断する方法であって、以下の各工程、つまり、輸血を必要とする患者から血漿または血清のサンプルを得る工程；、上記サンプルである血漿、血清または上記サンプルの吸収溶出液中の、総免疫グロブリン濃度を決定する工程、上記血漿、血清またはサンプルの吸収溶出液中の、免疫グロブリンの抗体アイソタイプを決定する工程、上記血漿、血清またはサンプルの吸収溶出液中の免疫グロブリンのＦｃガンマ受容体（ＦｃγＲ）との親和性を決定する工程、上記血漿、血清またはサンプルの吸収溶出液中の免疫グロブリンのＣ１ｑとの結合性を決定する工程、及び、相対的溶血指数（ＲＨＩ）、すなわち前記患者の輸血後溶血のリスクを計算する工程、を含む。 ある実施形態では、３０またはそれ以上のＲＨＩ範囲は、高い（あるいは重大な（significant））血管内溶血のリスクを示す。他の実施形態では、１５から３０、または１５以下のＲＨＩの範囲はそれぞれ、有意に、中程度又は低度の血管内溶血のリスクを示す。補体の活性化経路を示した図である。ヒトＩｇＧ１−ＦｃのＡｓｎ２９７にリンクする炭水化物のシーケンスを示した図である。図３Ａは、ＦＣＲＩに対するＨＩＭＡ−３９のＦｃガンマ受容体（ＦｃγＲ）親和性の、サイトメトリービーズアッセイ評価（Ｃｙｔｏｍｅｔｒｉｃ Ｂｅａｄ ａｓｓａｙ ａｓｓｅｓｓｍｅｎｔ）の結果を示す。図３Ｂは、ＦＣＲＩＩａに対するＨＩＭＡ−３９のＦｃガンマ受容体（ＦｃγＲ）親和性の、サイトメトリービーズアッセイ評価の結果を示す。図３Ｃは、ＦＣＲＩＩＩａに対するＨＩＭＡ−３９のＦｃガンマ受容体（ＦｃγＲ）親和性の、サイトメトリービーズアッセイ評価の結果を示す。図４Ａは、ＦＣＲＩに対するＨＩＭＡ−３５の、Ｆｃガンマ受容体（ＦｃγＲ）親和性の、サイトメトリービーズアッセイ評価の結果を示す。図４Ｂは、ＦＣＲＩＩａに対するＨＩＭＡ−３５の、Ｆｃガンマ受容体（ＦｃγＲ）親和性の、サイトメトリービーズアッセイ評価の結果を示す。図４Ｃは、ＦＣＲＩＩＩａに対するＨＩＭＡ−３５の、Ｆｃガンマ受容体（ＦｃγＲ）親和性の、サイトメトリービーズアッセイ評価の結果を示す。本明細書に開示の実施の形態に係るＲＨＩスコアを確立するための手順のフローチャートである。 開示は、輸血後の血管内溶血の可能性（すなわち、ＲＢＣの生存の可能性）を決定するための改善方法を提供する。開示された方法は、高度の正確性だけでなく、時間的、コスト的な効果がある。 溶血を促進する血漿分子は、免疫グロブリン（Ｉｇ）または抗体と呼ばれている。免疫グロブリン（Ｉｇ）は、主に、外来抗原が、細菌、毒素、タンパク質、炭水化物または輸血細胞の何れであっても、それらの外来抗原の検出および除去を担っている。一旦、免疫システムが特定の抗原に反応した後は、同じ抗原への付加的な暴露は、迅速な二次的または既往の反応を引き起し、結果、血清中のグロブリン力価がはるかに高くなる。 ヒトのＩｇは、次のアイソタイプ、すなわち、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４、ＩｇＡ、分泌型ＩｇＡ、ＩｇＭ、ＩｇＥ及びＩｇＤに、分類される。免疫グロブリンＧ（ＩｇＧ）は、正常なヒトサンプル中の最も一般的な血清抗体で、全平均血清Ｉｇ濃度の約７５％を占める。 Ｉｇ分子の基本構造は、κ（カッパ）または、λ（ラムダ）のいずれかの２つの軽鎖が、５つのクラスの免疫グロブリン（ＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＧおよびＩｇＭ）のいずれかの重鎖２つにジスルフィド結合によって連結され、モノマー、ダイマー、トリマー、クアドリマー(quadrimer)、またはペンタマーの構成を持つ。各クラスは、血清中での濃度、分子量、血清半減期、補体（細胞外病原体を攻撃するために一緒に行動する血漿タンパク質のセット）結合能、能動的胎盤通過能、及び、様々なタンパク質への結合特性が、異なる。 特定のＩｇの特性は、輸血後の溶血リスクを増加させることが知られている。これらの特性には、総免疫グロブリン濃度、Ｉｇアイソタイプ、補体を活性化するためのＣ１ｑへの結合能、および／または、Ｆｃガンマ受容体（ＦｃγＲ）親和性が含まれている。 補体活性化の古典的パスウェイ（図１）は、Ｃ１、つまり、Ｃ１ｒとＣ１ｓのセリンプロテアーゼ（各２）と、より大きい６つのＣ１ｑ糖タンパク質との複合体からスタートしている。活性化は、ＩｇＧまたはＩｇＭが標的抗原に結合した後、ＩｇＧまたはＩｇＭのＦｃ結合ドメインにＣ１ｑが結合することによって、生じる。Ｃ１ｑのＮ末端部分の少なくとも２箇所が、Ｃ１活性化のためにバインドする必要がある。それはＣ１ｑの結合のために必要とされるＦｃ受容体のＣＨ２ドメインである。３つのアミノ酸残基、Ｇｌｕ３１８、Ｌｙｓ３２０とＬｙｓ３２２は、ヒトのＩｇＧや、いくつかの他の種の免疫グロブリン（Ｉｇｓ）で保存されていることが見出されており、従ってそれらはＣ１ｑの結合モチーフとして指定されている。しかしながら、アイソタイプのコア結合部位間には、さらなる差異が存在する。それ故に、これらの差異が、同種抗体または自己抗体かどうかにかかわらず、輸血赤血球の生存可能性を減少させる又はインビボ溶血を生じさせるという、抗体のポテンシャルを決定づけることができる可能性がある。 上記は、Ｃ１ｑ結合に効率的なＩｇｓが、より容易に補体を活性化できることを示唆している。ＩｇＭ抗体は、ＩｇＧ抗体よりもより効率的に補体を活性化することが知られている。アイソタイプＩｇＧ１、ＩｇＧ２およびＩｇＧ３は、様々な程度に補体を活性化することができるが、ＩｇＧ４とＩｇＡはそうではないため、溶血を引き起こす可能性が低い。 ＦｃγＲｓ結合性免疫グロブリンもまた、溶血の発生に関与している。ヒトＦｃγＲｓは、免疫細胞（単球、マクロファージ、好中球、樹状細胞、ＮＫ細胞など）の表面上に発現されている。各ＦｃγＲは、異なる細胞外および細胞内ドメインを持ち、あるものは、多型性の細胞外ドメインをもつことで複雑化している。これは、ＩｇＧに高い又は低い親和性を持つメンバーを含み、その全ては、ＩｇＧ免疫複合体に結合することができるが、高い親和性を有する受容体のみが、単量体ＩｇＧに結合することができる。ヒトでは、１つの高親和性受容体ＦｃγＲＩ（ＣＤ６４）と、低親和性ＩｇＧ受容体の２つのファミリー（ＦｃγＲＩＩ ａｎｄ ＦｃγＲＩＩＩ）があり、これらのファミリーは、ＦｃγＲＩＩａ（ＣＤ３２ａ）、ＦｃγＲＩＩｂ （ＣＤ３２ｂ）、ＦｃγＲＩＩｃ（ＣＤ３２ｃ）、ＦｃγＲＩＩＩａ（ＣＤ１６ａ）およびＦｃγＲＩＩＩｂ（ＣＤ１６ｂ）、を含む。用語ＣＤは、クラスタ分類（cluster of differentiation）またはクラスタ指定に関連し、細胞表面上の特異的抗原を指す。ＦｃＲＩ、ＦｃＲＩＩａ、ＦｃＲＩＩｃおよびＦｃＲＩＩＩａは、活性化受容体である。ＦｃＲＩＩｂは、抑制性受容体であり、ＦｃＲＩＩＩｂは機能の不明なＧＰＩリンク型受容体である。ＦｃγＲＩは、３つの細胞外免疫グロブリン（Ｉｇ）様ドメインをもっており、ＦｃγＲＩＩやＦｃγＲＩＩＩのファミリーメンバーより多くのドメインを持つことにより、ＦｃγＲＩＩやＦｃγＲＩＩＩの様に複合化した二量体抗体に結合するというよりむしろ、単量体の抗体に結合することによって直接の活性化を可能にする。ＦｃγＲとの結合は、サイトカイン産生、貪食作用（phagocytosis）やセロトニン放出のような免疫応答を開始させる。 ＩｇＧ抗体のグリコシル化は、Ｃ１ｑとの結合性およびＦｃγＲとの親和性のために必要な構造を維持する。脱グリコシル化されたＩｇＧ抗体は、ｉｎ ｖｉｖｏで活性化された炎症反応を調節することができないと考えられている。ＩｇＧグリコシル化の改変は、関節リウマチや自己免疫性血小板減少症などの多くの自己免疫疾患で発見されており、健常人と比較した場合、抗体は主に脱グリコシル化されている。グリコシル化のレベルはまた、老化のプロセスや、輸血や妊娠という免疫上のイベントによって異なっていることが示されている。従って、抗体のグリコシル化は、溶血の危険性を評価する際に考慮すべき要因である。 Ｆｃ受容体のＡｓｎ２９７のＮ−結合型グリカンは、異なる時点で、フコース、ガラクトースや末端シアル酸で、択一的にグリコシル化されている。図３は、ヒトＩｇＧ１−ＦｃのＡｓｎ２９７にリンクされる炭水化物のシーケンスを示している。択一的なグリコシル化の効果は、最も内側のＧｌｃＮＡｃ残基とＡｓｐ２９７残基との間の切断、Ｎ−結合型糖タンパク質から高マンノースや複合型オリゴ糖の切断を行う、ＰＮＧアーゼＦを用いて、抗体を処理することによって決定することができる。また、ノイラミニダーゼによる処理は、末端残基のソースに応じて異なる複合型オリゴ糖から、α−（２−＞３）、α−（２−＞６）、α−（２−＞８）および／またはα−（２−９）−結合型ＮｅｕＡｃ残基を、選択的に加水分解することができる。そこで、脱グリコシル化および脱シアリル化抗体は、Ｃ１ｑとＦｃγＲｓへの改変された結合活性について試験することができる。 現在開示されている相対的な溶血指数（ＲＨＩ）アッセイは、溶血の危険性を予測する際にこれらの要因のすべてを利用している。特に、ＲＨＩアッセイは、総ＩｇＧ免疫グロブリンの濃度（又は力価）およびＩｇＧ／Ａ／Ｍアイソタイプ、Ｃ１ｑの補体結合能およびＦｃγＲとの親和性を評価する。マルチプレックスアッセイでこれらのテストを提供することにより、本明細書に記載されたＲＨＩメソッドは、多くの必要とされる検査データを特定の患者のＲＨＩを予測するために提供することができ、すなわち、特定の患者の抗体が重篤な輸血反応を引き起こし、つまり輸血赤血球の生存率の低下やｉｎ ｖｉｖｏ溶血（in vivo hemolysis）を引き起こす可能性を、予測するために提供できる。説明したＲＨＩ方法はまた、次のような利点を提供する。つまり、２００μＬのような小さなサンプルを使用可能で、溶血サンプルを使用でき、各抗体の赤血球の溶出に、全血、血清または血漿を使用でき、サンプルの年齢と無関係で、迅速で（すなわち数日に対して数時間）、費用対効果があり、多重フォーマットであり、そして正確さを有する、という点である。 当初、ｉｎ ｖｉｔｒｏでの新鮮な補体の存在下で赤血球凝集によって溶血を引き起こす２つのマウスモノクローナル抗体、ＭＩＭＡ−２１１とＭＩＭＡ−２１２が、生成された。ＭＩＭＡ−２１１とＭＩＭＡ−２１２は共に、ヒトの赤血球で顕著に発現しているグリコホリンＡ（ＧＰＡ）とグリコホリンＢ（ＧＰＢ）に共通の、決定基を認識する。これらの抗体は、ｉｎ ｖｉｔｒｏで溶血を引き起こすので、ヒト抗体を評価するための前記ＲＨＩ試験方法を標準化するために使用された。 ＲＨＩの評価のために提出されたサンプルは、血清、血漿、または、吸収および精製された抗体の調製物である溶出液（eluate）、でありうる。新鮮な補体が試験液に加えられた時、ＭＩＭＡ−２１１と ＭＩＭＡ−２１２はｉｎ ｖｉｔｒｏで赤血球凝集による溶血を引き起こす。溶出工程によって、抗体のグリコシル化が変化しないことを記録するために、我々はＭＩＭＡ−２１１と ＭＩＭＡ−２１２の両方の溶出液を調製し、補体の添加による赤血球凝集によってそれらをテスト済みである。新鮮な補体がアッセイシステムに存在した時に、ＭＩＭＡ−２１１とＭＩＭＡ−２１２の両方からの溶出液は、ｉｎ ｖｉｔｒｏでの溶血を起こすことから、溶出プロセスは、抗体のグリコシル化を改変しないことを確認している。 コントロール抗体ＭＩＭＡ−２１１とＭＩＭＡ−２１２は、その後単球単層アッセイ（ＭＭＡ）法で試験された。アッセイは、一般に、以下のように実行される。単核細胞をリン酸緩衝塩類液で洗浄した後、５％ウシ胎児血清を含む標準培地に懸濁し、組織培養チャンバースライドに加えた。１時間３７℃でチャンバーをインキュベーションし、非接着性細胞を含む上清をピペットにより除去し、その後、補体源としての正常血清を添加して、或いは添加せずに、感作赤血球に、抗原陽性または抗原陰性の赤血球を加えたものを、上記チャンバーに加える。１時間３７℃でインキュベーションし、非接着性赤血球ＲＢＣを除去し、スライドをＰＢＳで洗浄する。その後、スライドをライト・ギムザ染色し、ＲＢＣ接着性や貪食性を顕微鏡で観察する。非感作赤血球の反応性に基づいて、５パーセント単球反応のカットオフは、陽性と陰性のアッセイを区別する。 コントロールマウス抗体は、ＭＩＭＡ−２１１だと１２．３％、ＭＩＭＡ−２１２だと２３．３％で、それぞれ有意なＭＭＡ（単球単層アッセイ）結果を示した。溶出液の結果は、ＭＩＭＡ−２１１とＭＩＭＡ−２１２の結合カラムからそれぞれ３．７％、４２％であった。 サイトメトリービーズアッセイ法（CBA, BD BioSciences, Franklin Lakes, NJ）は、水溶性タンパク質に共有結合可能な、色分けされた７．５μｍのポリスチレンビーズを利用した、フローサイトメトリー解析システムである。一度機能化されると、それらは、シングル・マルチプレックス・アッセイシステムでＩｇＧやＩｇＭアイソタイプに実行するのと同様に、血清試料中の総Ｉｇの測定のための捕捉抗原として機能する。ＥＬＩＳＡや比濁法（nephelometry）などの他のアッセイに対してこの方法を使用することの利点は、非常に小さなサンプルサイズでも、非常に感度が高く、はるかに迅速で、完全なサンプル分析のためには約４時間を必要とするにすぎない。 Ｃ１ｑ結合のために、ＥＬＩＳＡプレート（BD Falcon, Franklin Lakes, NJ）を、最初に１０ｎｇの精製Ｃ１ｑタンパク質（Sigma, St. Louis, MO）で被覆し、４℃で一晩放置した。室温（ＲＴ）で２時間ブロッッキング（SuperBlock, Pierce, Rockford IL）した後、プレートを2回洗浄（1% Tween-20 in PBS pH 7.3, Sigma）し、１００μｌの抗体を加えて、１時間室温でインキュベートした。３回洗浄した後、１００μｌのＨＲＰ結合抗ＩｇＧ抗体を添加し、プレートを再び１時間インキュベートした。最後の３回洗浄の後、発色はＨ２Ｏ２と共に５０μｌのＴＭＢ基質を添加し、１０分間反応させた。その後、反応は、５０μｌの１ＮＨ２ＳＯ４の添加によって停止させ、プレートのＯＤを４５０ｎｍでリーディングした。結果を表１に示す（総Ｉｇ濃度、ＩｇＧ／Ｍアイソタイプ、及び、Ｃ１ｑ結合（IAT = Indirect Antiglobulin Test（間接的抗Ｉｇテスト）− 赤血球凝集の強さは、負または０から正の最大１２までスコアされる））。 アイソタイプの合計（ＩｇＧ１＋ＩｇＧ２＋ＩｇＧ３＋ＩｇＧ４）は、総ＩｇＧ濃度とほぼ同じであるはずである。いかなる特定の理論に拘束されることを望まないが、表１のいくつかにおいて、結果がそうでないことについて考えられる理由は、溶出液サンプルがテストされ、このことにより、溶液中に抗体が集中する傾向があるという事実に起因するかもしれないということである。 総ＩｇＧとアイソタイプのテスト結果は、ＥＬＩＳＡ法によるＣ１ｑ結合の結果と比較した（表１）。サンプル１、４、８および９に見られるように、これらのサンプルは、より高いＩｇＧの濃度を有していた。これらの高レベルのＩｇＧ１は、溶血抗体を含む可能性の高いサンプルであることを示している。一般的に低い総ＩｇＧ濃度のサンプルでは、Ｃ１ｑ結合のための非常に強力なシグナルを生成することはなかった。 ＦｃγＲ結合親和性の決定は、サイトメトリービーズアッセイを用いて行った。このテストでは、ポリスチレンビーズは、ＦｃγＲＩ（ＣＤ６４）、ＦｃγＲＩＩＡ（ＣＤ３２）、およびＦｃγＲＩＩＩａ（ＣＤ１６）に対応する共有結合合成タンパク質によって機能化された。このコンジュゲーションの確認は、マウス抗ＦｃγＲモノクローナル抗体を用いて行った。テストサンプルのシグナルが、５００ＭＦＩ、またはネガティブコントロールサンプルのシグナルよりも大きい場合、コンジュゲーションは成功であった。このプロセスを通じて、可溶性タンパク質でのビーズのコーティングが達成可能であることが実証されている。 テストは、抗Ｄｓ、ＨＩＭＡ−３９とＨＩＭＡ−３５の各々に対する我々のコントロールモノクローナル抗体の親和性を決定するために、ＦｃγＲＩ、ＦｃγＲＩＩＡ及びＦｃγＲＩＩＩａのための機能化ビーズで行った（各々、図３Ａ−Ｃおよび４Ａ−Ｃ、参照）。 上述のテストは、多くの異なるタイプの抗体で実行され、同じ最終結果が、ほぼ普遍的に実現された。必要とはいえないが、抗体の構造と機能上の、脱グリコシル化（de-glycosylation）または脱シアリル化（de-sialylation）の効果を評価する有用な方法が決定され、同様に本明細書で提供されている。抗体の、脱グリコシル化及び／又は脱シアリル化の効果を調べるために、抗体検体は、フラボバクテリウム・メニンゴセプティカム（Flavobacterium meningosepticum） から精製されたＮ−グリコシダーゼＦ(PNGaseF) ペプチド(New England BioLabs)５００ユニットで、３７℃で１時間処理した後に、分析された。それらは交互に、ウェルシュ菌（Clostridium perfringes）からのα−２，３／α−２，６ノイラミニダーゼ(Sigma Chemicals, St. Louis, MO)７００ユニットで、３７℃で１時間処理された。脱グリコシル化および脱シアリル化された調整物の単量体組成物は、例に制限無く、ＳＤＳ−ＰＡＧＥで確認した。 アッセイのために選択された抗体のＦｃ部分に結合している糖鎖（glycans）を除去することにより、炎症反応の緩和性におけるそれらの活性を評価した。ＰＮＧアーゼＦ（PNGase F）やアミダーゼによる処理は、特にＮ−結合型糖タンパク質からマンノース、ハイブリッドや複合型オリゴ糖の残基を切断する。ノイラミニダーゼ（シアリダーゼ, sialydase ）による処理は、選択抗体のコア構造を選択的に脱シアリル化する。したがって、これらの酵素は、抗体の構造を変化させ、その結合親和性を変更させる。 ＨＩＭＡ−３５とＨＩＭＡ−３９について、ＲＨＩに含まれる試験を行った。総免疫グロブリン（Ｉｇ）濃度は、アイソタイプ、Ｃ１ｑ結合およびＦｃγＲとの親和性と共に決定された。抗体はまた、ＲＨＩで得られた結果と比較するためにＭＭＡも行った。結果は、表２、表３に示す。 図５は、本明細書に開示されるＲＨＩを決定するためのフローチャートを提供している。この例では、サンプルが低力価のＩｇＧ４である場合は、フローチャートは、Ｃ１ｑのテストを必要とせず、任意のＦｃγＲとの親和性を持たず、ＲＨＩはゼロである。しかし、サンプルが高力価のＩｇＧ１であれば、さらに評価され、高いＣ１ｑ結合能及びＦｃγＲＩ親和性で、このサンプルは、４０のＲＨＩに到達し、したがって、それは、生体内溶血を引き起こす可能性がある。高濃度の抗体及び高いＣ１ｑ結合親和性を有するアイソタイプＩｇＧ１、ＩｇＧ２およびＩｇＧ３は、陽性のＭＭＡを予測する。ＦｃγＲＩ及びＦｃγＲＩＩＩａとのＦｃγＲ親和性の結果は、ｉｎ ｖｉｖｏでの抗体介在性赤血球破壊のための追加の証拠を提供している。 ５％の「％ＭＭＡ」のカットオフ値は、赤血球ＲＢＣ抗原に対する抗体の存在に起因する重大な(Significant)反応の確率を意味することが示されている。ＲＨＩの範囲は、１５又はそれ以下と３０以上又はより高値との間である。３０以上は反応のリスクが高く（または非常に重大）、１５以下のものは、反応のリスクが低い（重大でない）と見なされる。ＲＨＩは、各サンプルが、さまざまなテストで得たポイントの数によって計算される。Ｉｇ濃度、アイソタイプの供与（又は優勢）、Ｃ１ｑ結合能力（高又は低）及び免疫細胞上の各ＦＣγ受容体(I, IIa, IIIa)に対する親和性、の各々に関して獲得した合計ポイントを加えることにより、ＲＨＩのスコアが提供される。 本明細書に開示される方法を実践するために必要とされるすべては、使用されているマシンに可視である光または赤外スペクトルを超えて、同時に異なる波長の発光を解読できることである。本明細書に開示される特定の実施形態は、総免疫グロブリン濃度、抗体のアイソタイプ、およびＦｃガンマ受容体親和性を決定するためのサイトメトリービーズアッセイの使用について説明している。多重フォーマット（サイトメトリービーズアレイ）で行われた一連のテストは、輸血が行われた場合に、任意の特定の抗体がｉｎ ｖｉｖｏ溶血を発生させる、相対溶血指数（ＲＨＩ）を確立する。サイトメトリービーズアレイは、特定の実施形態で使用されているが、他のアレイやアッセイを使用することもでき、それは、従来技術の範囲内である。ＲＨＩを決定するための他の可能なプラットフォームには、各試験液の上清中の適切な範囲が決定されれば、Ａｌｐｈａ−ＬＩＳＡ法(Perkin Elmer, Norwalk CT)、メソスケールデバイス（Meso Scale Devices, Biacore, Piscataway NJ）、および任意の定量的なＥＬＩＳＡアッセイ(Sigma, St. Louis, Bio-Rad, Hercules, CA, Pierce, Rockford IL) が、含まれる。 免疫グロブリンの研究のための新しい方法を確立することにより、すなわち多重フォーマットのリスク評価ツールとして、ＲＨＩは、輸血に関連した溶血を予測するために開発された。ＲＨＩは、現在使用されている標準的なバイオアッセイ、化学発光試験、抗体依存性細胞毒性アッセイ（ＡＤＣＣ）、単球の単層アッセイ（ＭＭＡ）、およびＣＲ５１ ＲＢＣの生存試験に取って代わる。ＲＨＩは、患者の輸血管理のためのコストと時間の両方において効率的なツールになるように設計されている。このテストは、同種抗体又は自己抗体に起因する不適合な輸血の設定での、患者の病的状態を心配する臨床医に対して提供することができる。特殊なスキル、機器や計画を必要とし、結果を得るために、しばしば、数日あるいは数週間を要する既存のバイオアッセイとは対照的に、試料調製を含め、ＲＨＩの分析は、約４から約６時間以内に完了させることができる。 特に断りのない限り、明細書や特許請求の範囲で使用されている、各成分、分子量や反応条件の特性、等の量を表現するすべての数字は、「約」という用語によって、全ての例で変更されるものとして理解されうる。したがって、これに反する指示がない限り、明細書及び特許請求の範囲に記載の数値パラメータは、本発明によって得られるように努めた所望の特性に応じて変動しうる、近似値である。少なくとも、特許請求の範囲に均等論の適用を制限する試みとしてではなく、各数値パラメータは、報告された有効桁数に照らして、普通の丸め技術（ordinary rounding techniques.）を適用することによって、少なくとも解釈されるべきである。本発明の広い範囲を示す数値範囲およびパラメータは近似値であることにかかわらず、特定の実施例に記載の数値は、可能な限り正確に報告されている。しかし、任意の数値は、本質的には必ずしも、それぞれの試験測定に見られる標準偏差に起因する特定のエラーが含まれている。 用語「a」、「an」、「the」及び本発明を説明する文脈（特に以下の特許請求の範囲の文脈）で使用される同様の指示は、特に断らない限り、又は明らかに文脈と矛盾しない限り、単数および複数の両方をカバーするために解釈されるべきである。本明細書の値の範囲の再引用は、単に範囲内の各個別の値を個別に参照する簡単な方法として機能することを意図されているにすぎない。そうでなければここに示されない限り、個々の個別の値は、本明細書に個々に再引用されたかのように、個々の値は明細書に組み込まれている。そうでなければ明細書に示され、あるいは明らかに文脈と矛盾しない限り、本明細書に記載のすべてのメソッドは、任意の適切な順序で実行することができる。いずれか又は全ての例の使用、または典型的な言語（例えば、「など（such as）」）の使用は、本発明をより明らかにするためにだけ意図され、それ以外の場合は、請求項に係る発明の範囲に制限をもたらすことはない。明細書の言語は、本発明の実施に不可欠な如何なるクレームされていない要素を示すものとして解釈されるべきではない。 本明細書に開示される発明の別の要素または実施形態のグループ分けは、制限付きで解釈されるべきではない。各グループのメンバーが、個々に又は本明細書に記載の他のグループメンバーや他の要素が参照され、クレームすることができる。あるグループの１つまたは複数のメンバーが、利便性及び／又は特許性の理由から、あるグループに含まれているか、そのグループから削除されることは予想される。そのような包含または削除が発生した場合、明細書は、添付された特許請求の範囲で使用されているすべてのマーカッシュ群の書かれた記述を満たすように修正されたグループを含むとみなされる。 本発明の特定の実施形態は、本発明を実施するために発明者に知られているベストモードを含むように、本明細書に記載されている。もちろん、これら記載された実施形態のバリエーションは、上記の説明を読めば当業者には明らかであろう。発明者は、熟練した職人が適切にその様なバリエーションを採用することを期待し、本発明が本明細書に具体的に記載した以上に実施されるべきと考えている。したがって、本発明は、適用法により許可されたように、特許請求の範囲に記載された主題のすべての修正及びその均等物を含む。明細書に記載されていないか、又は明らかに文脈と矛盾示しない限り、上記の要素の任意の組み合わせが、すべての可能なバリエーションで、その発明に包含される。 本明細書に開示される特定の実施形態は、特許請求の範囲の構成、又は、本質的に特許請求の範囲の言語で、さらに制限されるかもしれない。出願時又は補正で追加されて、特許請求の範囲で使用される場合、移行部の用語「から成る」（“consisting of”）は、特許請求の範囲で特定されていない、いかなる要素、ステップ、又は成分を除外する。移行部の用語「から本質的に成る」（“consisting essentially of”）は、指定された材料、ステップや、実質的に基本的かつ新規な特徴（群）に影響を与えないものに、特許請求の範囲を制限する。本発明の実施の形態は、本質的又は明示的に記述され、本明細書で有効である。 さらに、本明細書を通して、多数の特許や刊行物の参照がなされている。上記の引用文献および刊行物の各々は、それらの全体を参照することにより、個別に本明細書に援用されている。 最後に、本明細書に開示された本発明の実施形態は、本発明の原理の例示であることを理解すべきである。可能性のある他の修正は、本発明の範囲内である。それ故、例示の方法によって、制限なく、本発明の別の構成が、本明細書の教示に従って利用することができる。したがって、本発明は、示され記述されたものに正確に限定されるものではない。 輸血レシピエントにおける輸血後の溶血のリスクを決定する方法であって、 輸血を必要とする患者からの血漿または血清のサンプルを得る工程、 前記血漿、血清、または前記サンプルの吸収溶出液（eluate）中の総免疫グロブリン濃度を決定する工程、 前記血漿、血清、または前記サンプルの吸収溶出液中の免疫グロブリンの抗体アイソタイプを決定する工程、 前記血漿、血清、または前記サンプルの吸収溶出液中の免疫グロブリンのＦｃガンマ受容体（ＦｃγＲ）の親和性を決定する工程、 前記血漿、血清、または前記サンプルの吸収溶出液中の免疫グロブリンのＣ１ｑ結合性を決定する工程、及び、 相対的溶血指数を算出し、それによって、前記患者の輸血後の溶血リスクを算出する工程、を含む、方法。 約３０又はそれ以上の前記相対的溶血指数は、血管内溶血のリスクが高いことを示す、請求項１に記載の、方法。 約１５〜３０の前記相対的溶血指数は、血管内溶血のリスクが中程度であることを示す、請求項１に記載の、方法。 約１５又はそれ以下の前記相対的溶血指数は、血管内溶血のリスクが低いことを示す、請求項１記載の、方法。 本明細書は、交差適合性のない血液で輸血した後に生じる溶血のリスクを評価するための抗体、システムおよび方法を、開示している。この開示は、相対的溶血指数（ＲＨＩ）を決定するための方法を提供し、それ故、輸血の必要な患者のために、輸血後の溶血のリスクに関する情報を提供するものである。【選択図】図５ 20120824A16333全文3 輸血レシピエントにおける輸血後の溶血のリスクを決定する方法であって、 サンプルの血漿、血清、または吸収溶出液（eluate）中の総免疫グロブリン濃度を決定する工程、 前記サンプルの血漿、血清、または吸収溶出液中の免疫グロブリンの抗体アイソタイプを決定する工程、 前記サンプルの血漿、血清、または吸収溶出液中の免疫グロブリンのＦｃガンマ受容体（ＦｃγＲ）の親和性を決定する工程、 前記サンプルの血漿、血清、または吸収溶出液中の免疫グロブリンのＣ１ｑ結合性を決定する工程、及び、 相対的溶血指数（ＲＨＩ）を算出し、それによって、患者の輸血後の溶血リスクを算出する工程、を含む、方法。 約３０又はそれ以上の前記相対的溶血指数は、血管内溶血のリスクが高いことを示す、請求項１に記載の、方法。 約１５〜３０の前記相対的溶血指数は、血管内溶血のリスクが中程度であることを示す、請求項１に記載の、方法。 約１５又はそれ以下の前記相対的溶血指数は、血管内溶血のリスクが低いことを示す、請求項１に記載の、方法。 輸血の結果としての患者の溶血リスクを予測するためのアッセイであって、 前記患者のサンプルの相対的溶血指数を決定することを含み、 前記相対的溶血指数は、前記サンプルにおける総免疫グロブリン濃度、前記サンプルにおける免疫グロブリンのアイソタイプ、前記サンプルにおける免疫グロブリンのＣ１ｑ補体結合能、及び、前記サンプルにおける免疫グロブリンのＦｃガンマ受容体との親和性から決定され、前記相対的溶血指数は前記患者の輸血後の溶血リスクを予測する、アッセイ。 前記相対的溶血指数は、図５のフローチャートに基づいたアルゴリズムを用いて算出される、請求項５に記載のアッセイ。 約３０又はそれ以上の前記相対的溶血指数は、リスクが高いことを示す、請求項５に記載のアッセイ。 約１５〜３０の前記相対的溶血指数は、リスクが中程度であることを示す、請求項５に記載のアッセイ。 約１５又はそれ以下の前記相対的溶血指数は、リスクが低いことを示す、請求項５に記載のアッセイ。 前記サンプルは、全血、血清、血漿、または溶出液（eluate）を含む、請求項５に記載のアッセイ。 サンプルは、前記患者からの血漿又は血清の吸収溶出液を含む、請求項５に記載のアッセイ。 前記免疫グロブリン濃度は、免疫グロブリン力価である、請求項５に記載のアッセイ。 総免疫グロブリン濃度の決定は、低い免疫グロブリン濃度、中程度の免疫グロブリン濃度、または高い免疫グロブリン濃度の検出に基づいてスコアされる、請求項５に記載のアッセイ。 前記低い免疫グロブリン濃度は、１：１６力価未満の濃度として定義され、前記相対的溶血指数ではゼロポイントが割り当てられ、前記中程度免疫グロブリン濃度は、１：１６力価より大きく１：６４力価未満の範囲の濃度として定義され、前記相対的溶血指数で２ポイントが割り当てられ、前記高い免疫グロブリン濃度は１：６４力価より大きい濃度として定義され、前記相対的溶血指数で１０ポイントが割り当てられている、請求項１３に記載のアッセイ。 前記免疫グロブリンアイソタイプの決定は、ＩｇＭ、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、または、ＩｇＧ４の存在に基づいてスコアされる、請求項５に記載のアッセイ。 ＩｇＭの存在は前記相対的溶血指数で１０ポイント、ＩｇＧ１の存在は前記相対的溶血指数で１０ポイント、ＩｇＧ２の存在は前記相対的溶血指数で５ポイント、ＩｇＧ３の存在は、前記相対的溶血指数で１０ポイント、及び、ＩｇＧ４の存在は前記相対的溶血指数でゼロポイントが、それぞれ割り当てられている、請求項１５に記載のアッセイ。 Ｃ１ｑ補体結合能の決定は、低いＣ１ｑ結合性または高いＣ１ｑ結合性の検出に基づいてスコアされる、請求項５に記載のアッセイ。 前記低いＣ１ｑ結合性は、前記相対的溶血指数で２ポイント、前記高いＣ１ｑ結合性は前記相対的溶血指数で１０ポイントが、それぞれ割り当てられている、請求項１７に記載のアッセイ。 前記Ｆｃガンマ受容体（ＦｃγＲ）親和性の決定は、ＦｃγＲＩ結合、ＦｃγＲＩＩ結合、および／またはＦｃγＲＩＩＩ結合の検出に基づいてスコアされる、請求項５に記載のアッセイ。 前記ＦｃγＲＩ結合の検出は、前記相対的溶血指数で１０ポイント、前記ＦｃγＲＩＩ結合の検出は、前記相対的溶血指数で２ポイント、前記ＦｃγＲＩＩＩ結合の検出は、前記相対的溶血指数で５ポイントが、それぞれ割り当てられている、請求項１９に記載のアッセイ。 前記アッセイは、多重フォーマットで実行され、前記総免疫グロブリン濃度、前記免疫グロブリンアイソタイプ、前記Ｃ１ｑ補体結合能、および前記Ｆｃガンマ受容体親和性が、同時に決定される、請求項５に記載のアッセイ。20120828A16331図５3