生命科学関連特許情報
| タイトル： | 公開特許公報(A)_鶏のカンピロバクター感染を制御するための飲料 |
| 出願番号： | 2011043933 |
| 年次： | 2012 |
| IPC分類： | A61K 35/74,A23K 1/00,A23K 1/16,A23K 1/18,A61K 31/7016,A61K 31/702,A61P 31/04,A61P 43/00 |
特許情報キャッシュ
兼重 貴裕 JP 2012180304 公開特許公報(A) 20120920 2011043933 20110301 鶏のカンピロバクター感染を制御するための飲料 株式会社微生物化学研究所 591193370 兼重 貴裕 A61K 35/74 20060101AFI20120824BHJP A23K 1/00 20060101ALI20120824BHJP A23K 1/16 20060101ALI20120824BHJP A23K 1/18 20060101ALI20120824BHJP A61K 31/7016 20060101ALI20120824BHJP A61K 31/702 20060101ALI20120824BHJP A61P 31/04 20060101ALI20120824BHJP A61P 43/00 20060101ALI20120824BHJP JPA61K35/74 AA23K1/00 ZA23K1/16 303DA23K1/16 304BA23K1/18 DA61K31/7016A61K31/702A61P31/04 171A61P43/00 121 9 ＯＬ 8 2B005 2B150 4C086 4C087 2B005DA01 2B150AA05 2B150AB10 2B150AC06 2B150AE18 2B150DC15 2B150DD12 4C086AA01 4C086AA02 4C086EA01 4C086MA02 4C086MA03 4C086MA04 4C086MA17 4C086MA52 4C086NA14 4C086ZB35 4C086ZC61 4C086ZC75 4C087AA01 4C087AA02 4C087BC56 4C087CA09 4C087MA02 4C087MA17 4C087MA52 4C087NA14 4C087ZB35 4C087ZC75本発明は、養鶏場における鶏のカンピロバクター汚染を制御する飲料に関する。カンピロバクター属菌は、グラム陰性、両端又は一端に長い鞭毛を持つ微好気性の螺旋形桿菌で、家畜、家禽、伴侶動物および野生動物の消化管や生殖器などに広く分布している。近年、カンピロバクターは先進国では小児と青年層を中心に主に食中毒による散発性下痢症から最も高率に分離され、ヨーロッパではカンピロバクターが原因である食中毒が年間約２０万件発生している（非特許文献１）。日本では平成２１年の食中毒発生状況によるとカンピロバクター食中毒の発生件数は３４５件で原因物質別で第１位となっている（厚生労働省食中毒統計）。食中毒統計に報告される事件数は実際の被害実数の氷山の一角にすぎないことも指摘されている（非特許文献２）。またカンピロバクター感染症は食中毒としてだけではなく人獣共通感染症として公衆衛生上重要なテーマの一つとなっている。また、臨床症状としては、重症度に違いはあるものの、通常は単純な急性胃腸炎として経過し、多くは数日以内に軽快するが、合併症として、ギランバレー症候群などを併発することがある。カンピロバクター食中毒の感染源としては食品、保菌動物の糞便、井戸水、未殺菌乳などが知られている。特に、先進諸国で感染源として最も重要視されているのが鶏肉で、鶏肉の汚染率は他の畜肉に比べ非常に高く、検査した鶏肉の１００％が汚染されていた例も報告されている（非特許文献３）。これは、養鶏場において、鶏が高率にカンピロバクターを保菌していることに由来する（非特許文献４、５、６）。養鶏場におけるカンピロバクター汚染が制御出来ればカンピロバクター食中毒の減少に多大な貢献ができるため、ワクチン（特許文献１参照）や生薬（特許文献２、３参照）あるいはβ−１，４−マンノビオース（特許文献４参照）などが検討されている。鶏肉のカンピロバクター汚染の直接の原因としては、食鳥処理場における交差汚染が非常に重要である。カンピロバクター汚染鶏群の処理後にカンピロバクター非汚染鶏群を処理した場合に鶏肉がカンピロバクターに汚染される。また、まな板の上での鶏肉の解体時に汚染してしまうという二次的な汚染によることも多々ある。 消化管には多数の細菌が腸内細菌叢を形成している。これらの腸内細菌叢の中には生体にとって有用であるとされる乳酸菌やビフィズス菌に代表される善玉菌や生体によって有害とされている悪玉菌とが存在する。消化管内において乳酸菌やビフィズス菌を増加させると、結果として悪玉菌が減少し、腸内環境が改善される。これにもとづき、乳酸菌やビフィズス菌そのものであるプロバイオティクス、乳酸菌やビフィズス菌の増殖を促進させるものとしてオリゴ糖などのプレバイオティクスまたそれらを組み合わせたシンバイオティクスが。ヒトでは健康食品または医療品として、家畜では家畜用飼料または飼料添加物として利用されている 養鶏関係ではプレバイオティクスであるオリゴ糖を飼料に添加して鶏に投与することにより、鶏の腸管内の善玉菌である乳酸菌やビフィズス菌の増殖を促進し、ヒトの食中毒起因菌であるサルモネラの増殖抑制に効果があるとされているが、顕著な効果は得られていない（非特許文献７）。乳酸菌を動物へ用いる例として，ラクトバシラス・ロイテリおよびラクトバシラス・クリスパータスからなる生菌剤によるサルモネラ菌の腸管定着防止（特許文献５）、抗体と乳酸菌を投与するコクジウム症予防及び治療剤（特許文献６）、強制換羽障害防止剤（特許文献７）等があるが、本発明とは使用目的が異なっている。また、カンピロバクターに対して、オリゴ糖を飼料に添加することによって増殖が抑制されたという報告（非特許文献８）もあるが、感染初期段階には増殖を遅延させる効果はあるものの既にカンピロバクターに汚染されている鶏に対してはその改善は困難なようである。特開２０００−３５１７３５号公報特開２００４−６５２２６号公報特開２００５−１２０００３号公報特開２００６−３２５５８７号公報特開２００９−２４２２７５号公報特許第３９９５５４１号公報特開２００４−２５０３６５号公報Rinyら、Clin. Microbiol.Rev. 2008, 21; 505-518日本カンピロバクター研究会誌, 2008, 1; 43Suzukiら、J. Vet. Med. Sci. 2008, 71; 255-261Natherら、Poult. Sci. 2009, 88;1299-1305Newellら、Appl. Environ. Microbiol.2003, 69; 4343-4351Onoら、Int. J. Food Microbiol.1999, 47; 211-219深田恒夫ら、鶏病研報, 1995, 31; 113-117向原要一ら、鶏病研報, 1993, 28; 203-205鶏のカンピロバクター汚染を制御する有効な手法は確立されていない。そのため、養鶏場はカンピロバクターに汚染されたままの鶏を市場へ出荷しており、これが原因による食中毒の発生が絶えない。本発明の目的は、鶏の体内から効率よくカンピロバクターを排除する効果を有する乳酸菌を含む飲用水の提供である。さらに養鶏場のカンピロバクター感染鶏群に対し、本飲用水を飲水投与することによりカンピロバクターを体内から排除する手法を提供することであるすなわち、本発明は、乳酸菌を通常の飲用水に浮遊または懸濁させた鶏用飲用水であり、好ましくはさらに腸内乳酸菌の増殖を促進するオリゴ糖を加えたものである。乳酸菌は、鶏腸内のｐHを約５に維持する性状を有する菌であることが望ましく，鶏の盲腸内から常法により分離、選択が可能である。本発明に使用した分離株Lactobacillus salivarius B-22は特許微生物寄託センターへ寄託されている（受託番号：FERM P-22045）。これらの乳酸菌を最終濃度で10７CFU/mL以上好ましくは108CFU/mL以上となるよう飲水に懸濁すればよい。乳酸菌に添加するオリゴ糖は、フラクトオリゴ糖が好ましいが、特に限定されない。添加濃度が５％から１０％の範囲では、濃度に比例してカンピロバクターの発育は阻止される。さらに糖分として乳糖を５％程度添加すればなおよい。本発明の飲用水は、投与期間が1日の飲水投与で持続効果が得られる特徴を有する。この特徴は、食鳥処理場へ出荷する前の作業量の軽減に貢献する。本発明により、多忙な養鶏業者にも受け入れ可能な、簡便かつ安価なカンピロバクターの汚染防止方法が提供できる。本発明の飲用水を出荷前の鶏に一日間飲用させるだけで，鶏の腸管に存在するカンピロバクターを長期間排除することができ、鶏のカンピロバクターに起因する食中毒の発生を防止できる。カンピロバクター・ジェジュニ（Campylobacter jejuni）を感染させた鶏の盲腸内残存生菌数比較（４日齢時に感染，８日齢時に乳酸菌＋オリゴ糖を飲用）カンピロバクター・ジェジュニを感染させた鶏の盲腸内残存生菌数比較（３９日齢時に感染，４３日齢時に乳酸菌＋オリゴ糖を飲用）カンピロバクター・ジェジュニを感染させた鶏の盲腸内残存生菌数比較（４日齢時に感染，８日齢時に乳酸菌＋オリゴ糖＋乳糖を飲用）カンピロバクター・ジェジュニを感染させた鶏の盲腸内残存生菌数比較（３２日齢時に感染，３６日齢時に乳酸菌＋オリゴ糖＋乳糖を飲用）オリゴ糖濃度と残存生菌数乳酸菌量と残存生菌数盲腸内容物pH値とカンピロバクター・ジェジュニ生菌数の関係例１鶏の盲腸内から分離し、かつ高度にカンピロバクター・ジェジュニの発育を阻止する乳酸菌、ラクトバシラス・サリバリウス（Lactobacillu salivarius） B-22株をMRS液体培地で３７℃、１８時間培養し、培養菌液を7,500rpm、５分間遠心後、沈渣を水に浮遊（108CFU/mL濃度、浮遊液という。）させた。またフラクトオリゴ糖をこの浮遊液に5%濃度で添加し、試験区用の飲用水とした。試験１試験区として鶏１０羽、対照区として鶏１０羽を用いた。４日齢時、試験区及び対照区の鶏にカンピロバクター・ジェジュニを107CFU/羽ずつ経口投与チューブを用いてそ嚢内に接種し感染させた。８日齢時、対照区の鶏に乳酸菌及びオリゴ糖を含む上記の飲用水を１日間不断飲水投与し、投与終了後に鶏を安楽死させ盲腸内容物を採材し、盲腸内のカンピロバクター・ジェジュニ生菌数の測定を行った。結果、試験区１０羽の平均菌数（対数）は4.32±0.90（標準誤差：SE）Log10CFU/gで、対照区１０羽の平均菌数は7.00±0.57 (SE) Log10CFU/gであった。また両区には有意差（危険率５％）が認められた。試験区については１０羽中２羽でカンピロバクター・ジェジュニ生菌数が検出限界以下であった。（図１参照）。 試験２試験区として鶏２０羽、対照区として鶏１０羽を用いた。３９日齢時、試験区及び対照区の鶏にカンピロバクター・ジェジュニを107CFU/羽ずつ経口投与チューブを用いてそ嚢内に接種し感染させた。４３日齢時、対照区の鶏に乳酸菌及びオリゴ糖を含む上記の飲用水を１日間不断飲水投与し、投与終了後に鶏を安楽死させ盲腸内容物を採材し、盲腸内のカンピロバクター・ジェジュニ生菌数の測定を行った。結果、試験区20羽の平均菌数（対数）は5.35±0.39 (SE) Log10CFU/gで、対照区１０羽の平均菌数は6.56±0.38 (SE) Log10CFU/gであった。また両区には有意差（危険率５％）が認められた。試験区については２０羽中１羽でカンピロバクター・ジェジュニ生菌数が検出限界以下であった（図２参照）。例２上記例１と同じラクトバシラス・サリバリウス浮遊液（濃度：108CFU/mL）に、フラクトオリゴ糖及び乳糖をそれぞれ５%濃度となるよう添加して、試験区用の飲用水とした。試験1試験区として鶏５羽、対照区として鶏５羽を用いた。４日齢時、試験区及び対照区の鶏にカンピロバクター・ジェジュニを107CFU／羽ずつ経口投与チューブを用いてそ嚢内に接種し感染させた。８日齢時、対照区の鶏に乳酸菌、オリゴ糖、乳糖を含む上記の飲用水を１日間不断飲水投与し、投与終了後に鶏を安楽死させ盲腸内容物を採材し、盲腸内のカンピロバクター・ジェジュニ生菌数の測定を行った。結果、試験区５羽の平均菌数（対数）は2.13±1.31 (SE) Log10CFU/gで、対照区５羽の平均菌数は6.35±0.61 (SE) Log10CFU/gであった。また両区には有意差（危険率５％）が認められた。試験区については５羽中３羽でカンピロバクター・ジェジュニ生菌数が検出限界以下であった。（図３参照）。試験２試験区として鶏１１羽、対照区として鶏１１羽を用いた。３２日齢時、試験区及び対照区の鶏にカンピロバクター・ジェジュニを107CFU/羽ずつ経口投与チューブを用いてそ嚢内に接種し感染させた。３６日齢時、対照区の鶏に乳酸菌及びオリゴ糖を含む上記の飲用水を1日間不断飲水投与し、投与終了後に鶏を安楽死させ盲腸内容物を採材し、盲腸内のカンピロバクター・ジェジュニ生菌数の測定を行った。結果、試験区１１羽の平均菌数(対数)は4.23±0.95 (SE) Log10 CFU/gで、対照区１１羽の平均菌数は7.36±0.24 (SE) Log10 CFU/gであった。また両区には有意差(危険率1%)が認められた。試験区については１１羽中３羽でカンピロバクター・ジェジュニ生菌数が検出限界以下であった（図４参照）。例３例１，２と同じラクトバシラス・サリバリウス B-22株浮遊液（濃度：108CFU/mL）に、フラクトオリゴ糖を５％または１０％濃度となるように添加し、試験区用の飲用水とした。試験区としてそれぞれ鶏５羽、対照区として鶏５羽を用いた。４日齢時、試験区及び対照区の鶏にカンピロバクター・ジェジュニを107CFU/羽ずつ経口投与チューブを用いてそ嚢内に接種し感染させた。８日齢時、対照区の鶏に乳酸菌及びオリゴ糖を含む上記の飲用水を1日間不断飲水投与し、投与終了後に鶏を安楽死させ盲腸内容物を採材し、盲腸内のカンピロバクター・ジェジュニ生菌数の測定を行った。結果、乳酸菌＋オリゴ糖５％試験区５羽の平均菌数（対数）は6.70±0.53 (SE) Log10CFU/g、乳酸菌+オリゴ糖１０％試験区５羽の平均菌数は5.60±1.61 (SE) Log10CFU/gで、対照区５羽の平均菌数は7.92±0.26 (SE) Log10CFU/gであった。また試験区と対照区には有意差（危険率５％）が認められなかったが、試験区は減少傾向が認められ、乳酸菌+オリゴ糖１０％試験区については５羽中1羽でカンピロバクター・ジェジュニ生菌数が検出限界以下であった（図５参照）。例4例１と同一条件で培養、遠心処理したラクトバシラス・サリバリウス B-22株の沈渣を水に108、107、106CFU/mL濃度となるように浮遊させた。またフラクトオリゴ糖をこの浮遊液に５％濃度で添加し、試験区用の飲用水とした。試験区としてそれぞれ鶏５羽、対照区として鶏５羽を用いた。４日齢時、試験区及び対照区の鶏にカンピロバクター・ジェジュニを107CFU/羽ずつ経口投与チューブを用いてそ嚢内に接種し感染させた。８日齢時、対照区の鶏に乳酸菌及びオリゴ糖を含む上記の飲用水を1日間不断飲水投与し、投与終了後に鶏を安楽死させ盲腸内容物を採材し、盲腸内のカンピロバクター・ジェジュニ生菌数の測定を行った。結果、乳酸菌＋オリゴ糖５％試験区５羽の平均菌数（対数）は6.90±0.21（SE）Log10CFU/gで、対照区５羽の平均菌数8.6±0.21（SE）Log10CFU/gと比べ有意な差（危険率5%）が認められた。また、乳酸菌1/10量＋オリゴ糖５％試験区と対照区には有意な差は認められなかったが、乳酸菌1/10量＋オリゴ糖５％試験区の５羽中１羽でカンピロバクター・ジェジュニが検出されなかったことから、乳酸菌1/10量においても有効であることが確認された。乳酸菌1/100量＋オリゴ糖５％試験区では効果が認められなかった例５乳酸菌およびオリゴ糖５％を1日間飲水投与後の盲腸内容物pH値とカンピロバクター・ジェジュニ生菌数の関係を調べたところ、カンピロバクター・ジェジュニが盲腸内容から検出できなかった（検出限界以下：200CFU/g）検体の盲腸内容pH値は何れも低い値を示した（図６参照）。このことはカンピロバクター・ジェジュニ の発育条件がpH4.9〜9.0の低いpH域では死滅または発育できないことを意味する。FEＲＭ Ｐ−２２０４５乳酸菌とオリゴ糖または乳酸菌とオリゴ糖および乳糖を水に混和したことを特徴とする鶏のカンピロバクター感染を制御するための飲用水。乳酸菌が鶏の盲腸から分離された株であることを特徴とする請求項１に記載の飲用水。乳酸菌がラクトバシラス・サリバリウス B-22 （Lactobacillus salivariusB-22）株であることを特徴とする請求項１〜２に記載の飲用水。乳酸菌を少なくとも107CFU/mL含むことを特徴とする請求項１〜３に記載の飲用水。乳酸菌を少なくとも10８CFU/mL含むことを特徴とする請求項１〜４に記載の飲用水。オリゴ糖がフラクトオリゴ糖であることを特徴とする請求項１〜５に記載の飲用水。オリゴ糖を５〜１０％含有することを特徴とする請求項１〜６に記載の飲用水。さらに、乳糖を５〜１０％含有することを特徴とする請求項１〜７に記載の飲用水。鶏に請求項１〜８に記載の飲用水を投与してカンピロバクター感染を防止または治療する方法。 【課題】養鶏場の鶏のカンピロバクターによる汚染を防除する効果的な方法の提供。【解決手段】乳酸菌を通常の飲用水に浮遊または懸濁させた鶏用飲用水であり、好ましくはさらに腸内乳酸菌の増殖を促進するオリゴ糖を加えたものである。乳酸菌は、鶏腸内のｐHを約５に維持する性状を有する菌であることが望ましく，乳酸菌とオリゴ糖さらには乳糖を加えた飲用水を、鶏に一日飲用させるだけで鶏の腸管に存在するカンピロバクターを長期間排除することができる。出荷前の鶏にこの飲用水を飲用させることによりカンピロバクターに起因する食中毒の発生は抑制される。【選択図】なし