生命科学関連特許情報

特許情報キャッシュ

氏内 圭一 JP 2010233503 公開特許公報(A) 20101021 2009085316 20090331 抗酸菌遺伝子の増幅方法 東洋紡績株式会社 000003160 氏内 圭一 C12N 15/09 20060101AFI20100924BHJP C12Q 1/68 20060101ALI20100924BHJP JPC12N15/00 AC12Q1/68 A 4 ＯＬ 10 4B024 4B063 4B024AA01 4B024AA11 4B024CA01 4B024HA08 4B024HA12 4B063QA18 4B063QA19 4B063QQ03 4B063QQ06 4B063QQ42 4B063QR08 4B063QR32 4B063QR55 4B063QR62 4B063QR72 4B063QS25 4B063QS28 4B063QS34 4B063QS36 4B063QX02 4B063QX10本発明は喀痰のＮＡＬＣ−ＮａＯＨ処理済液をそのまま核酸増幅反応に持ち込み、不純物の混じったサンプルから抗酸菌遺伝子を増幅するための遺伝子増幅方法に関する。臨床上重要とされる抗酸菌の同定には、培養検査、塗沫検査および遺伝子検査が行われている。しかしながら主な検体となる喀痰は粘性が非常に高くこのままでは検査に用いることはできない。そこでこれらの検査の前処理には古くよりＮ−アセチルＬ−システイン水酸化ナトリウム（ＮＡＬＣ−ＮａＯＨ）法（非特許文献１）が利用されている。ＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法は抗酸菌が酸やアルカリに強い性質を利用し、喀痰に含まれる抗酸菌以外の細菌を死滅させ、かつ後工程を阻害する喀痰成分を除去する役割を担う。喀痰は個人差が大きく、抗酸菌を生きたまま前処理を行う必要があることから現在でも喀痰の前処理に利用されている（非特許文献２）。 また、抗酸菌は、ミコール酸を含む脂質層を有した強固な細胞壁を持つことを特徴とするが、この細胞壁を破壊しないと検査に用いることはできない。 従来から用いられているＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法は、生菌のまま処理する方法であることから抗酸菌の破砕をする方法ではなかった。抗酸菌はこの脂質層の細胞壁を持つため、溶菌を妨げる一つの原因となっている。遺伝子検査の標的となる物質は抗酸菌細胞内に存在する核酸である。細菌の遺伝子検査前処理方法で重要なことは、細菌の細胞を破壊して核酸を抽出することと不純物を取り除くことである。抗酸菌の遺伝子を検出する場合、強固な細胞壁を持つため大腸菌などの一般細菌の遺伝子検査と比較して、特に核酸の抽出は難しい。 また、ＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法は抗酸菌の塗沫検査および培養検査のための方法で遺伝子検査に用いた場合、処理後に残存している不純物によって後工程の反応が阻害されていた。そこで従来の方法ではＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法で処理した溶液を抗酸菌遺伝子検査のために溶菌する方法が開示されている。 特許文献１には加熱による抗酸菌の溶菌方法が開示されている。溶菌剤など溶菌のための条件を用いることなしに、６０℃以上１００℃以下の加熱のみによって十分な核酸を遊離することが可能であるとしている。 特許文献２には非イオン界面活性剤を含み、かつ金属キレート剤を含まない溶液と抗酸菌を含む懸濁液を混合して加熱する第１の方法が開示されている。遺伝子を増幅検出するための前処理方法で、この溶菌方法を用いると溶菌処理を行った溶液をそのまま増幅検出工程に用いることができる。 特許文献２にはもうひとつの方法（第２）が開示されている。抗酸菌の溶菌にリパーゼ含む溶液を使用し脂質分解処理を行う工程、非イオン界面活性剤および金属キレート剤を含む溶液中で加熱して抗酸菌を溶菌する工程からなる方法である。第２の方法では、抗酸菌の細胞壁が脂質を含んでいることに着目し、脂質分解工程を第１の方法に加えることによって、抗酸菌の細胞壁を脆弱化し、加熱工程によってさらなる溶菌効率を得ている。特許文献３には抗酸菌遺伝子検査におけるＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法の問題点が指摘されている。特に、沈殿した抗酸菌菌体を懸濁するリン酸緩衝液（ＰＢＳ）がＰＣＲを阻害する原因であることが述べられている。特許文献３ではこの問題点をＰＢＳ懸濁なしに抗酸菌を溶菌処理に供することで解決している。特開平６−３１９５２７特許第３９１０１９８号特開２００４−３４４１０８ＡｍｅｒｉｃａｎＳｏｃｉｅｔｙ ｆｏｒ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ：Ｓｅｃｔｉｏｎ ３． Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｙ．Ｃｌｉｎｉｃａｌ ＭｉｃｏｒｏｂｉｏｌｏｇｙＰｒｏｃｅｄｕｒｅｓ Ｈａｎｄｂｏｏｋ． ＡＳＭ，Ｗａｓｈｉｎｇｔｏｎ， Ｄ．Ｃ．，１９９４．結核菌検査指針２００７ （編者 日本結核病学会抗酸菌検査法検討委員会、発行元 財団法人結核予防会、第４章分離培養法、ｐ３３〜ｐ３７） 臨床検査において抗酸菌の遺伝子検査は手離れが悪く、喀痰をＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法で処理した後も溶菌処理や核酸精製処理を実施していた。溶菌や核酸精製処理を正確に行うためには高度な技術が必要であった。このような高度で専門的な技術は、一般の検査室レベルでは容易に習得できるものではなかった。 非イオン界面活性剤を含む溶液を用いた加熱方法では、溶菌効率は加熱のみに比べて向上した。しかしながら、界面活性剤やリパーゼなどの酵素を用いているため、増幅反応液中への持ち込み量が増加すると反応阻害が起こる。よって増幅反応液中への持ちこみ液量が限定されて、増幅対象物である核酸の量が少ない状態で使用せざるを得なかった。 また、リパーゼなどの酵素を細胞壁の脂質溶解に用いる場合酵素処理時間が必要となり、遺伝子検査の前処理方法としての時間が２０分以上かかった。ＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法処理後、ＰＢＳ溶液で懸濁することなしに沈殿を滅菌水へ懸濁する方法では、抗酸菌の溶菌が不十分である。また、溶菌液を追加で加えて溶菌処理した場合は、菌体が希釈されるため検出感度の低下を招くという問題点があった。研究用途で使用されている核酸精製方法では、操作が煩雑であり、専門的な知識を必要とするため臨床の場にそぐわない方法であった。抗酸菌遺伝子検査における前処理方法として上記のいずれの方法においても、操作が煩雑であったり、時間がかかったりして、簡便性と迅速性を満たすものではなかった。本発明者らは、上記課題に鑑み鋭意検討した結果、ＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法で処理した検体を用いて抗酸菌を溶菌することなしに核酸増幅試薬と混合することで核酸増幅反応が可能な方法を見出し、本発明を完成させるに至った。すなわち、本発明は以下のような構成からなる。［項１］以下の（１）〜（３）の工程を含むことを特徴とする抗酸菌遺伝子の増幅方法。（１）抗酸菌を含む検体をＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法で処理する工程。（２）（１）の工程で処理された試料を水または緩衝液で懸濁し、試料溶液とする工程。（３）（２）の工程で得られた試料溶液を核酸増幅試薬と混合し増幅を開始する工程。［項２］抗酸菌を含む検体が喀痰である項１に記載の抗酸菌遺伝子の増幅方法。［項３］核酸増幅反応がＰＣＲである項１または２に記載の抗酸菌遺伝子の増幅方法。［項４］ＰＣＲに用いるＤＮＡポリメラーゼが、以下の（１）および（２）からなる群から選ばれる１つ以上からなる、項１〜３のいずれかに記載の抗酸菌遺伝子の増幅方法。（１）Ｔｂｒ，Ｔｆｌ，Ｔｒｕ，Ｔｔｈ，Ｔ１ｉ，Ｔａｃ，Ｔｎｅ，Ｔｍａ，Ｔｉｈ、Ｔｆｉ，Ｐｆｕ，Ｐｆｕｔｕｂｏ，Ｐｙｒｏｂｅｓｔ（登録商標），Ｐｗｏ，ＫＯＤ，Ｂｓｔ，Ｓａｃ，Ｓｓｏ，Ｐｏｃ，Ｐａｂ，Ｍｔｈ，Ｐｈｏ，ＥＳ４，ＶＥＮＴおよびＤＥＥＰＶＥＮＴからなる群。（２）（１）で示される群のＤＮＡポリメラーゼの変異体であり、かつ、ＤＮＡポリメラーゼ活性を有する変異体。本発明によれば、迅速かつ簡便な操作で抗酸菌の核酸を増幅することが可能となる。具体的には、複雑で工数の多い操作を行っていた抗酸菌の溶菌方法を行うことなしに、ＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法処理後の試料から直接核酸増幅が達成可能となった。従来行っていた抗酸菌の溶菌工程と核酸の精製工程が不要となり、より簡便な遺伝子検査の前処理が実現できた。ＢＣＧ菌懸濁液を用いて結核菌遺伝子を検出した結果。結核菌陽性検体のＮＡＬＣ−ＮａＯＨ処理済試料を用いて結核菌遺伝子を検出した結果。結核菌陰性検体のＮＡＬＣ−ＮａＯＨ処理済試料を用いて結核菌遺伝子を検出した結果。結核菌陰性検体のＮＡＬＣ−ＮａＯＨ処理済試料にＢＣＧ菌懸濁液を混合した試料を用いて結核菌遺伝子を検出した結果。本発明の抗酸菌遺伝子の増幅方法 本発明の実施形態の一つは、以下の（１）〜（３）の工程を含むことを特徴とする抗酸菌遺伝子の増幅方法である。（１）抗酸菌を含む検体をＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法で処理する工程。（２）（１）の工程で処理された試料を水または緩衝液で懸濁し、試料溶液とする工程。（３）（２）の工程で得られた試料溶液を核酸増幅試薬と混合し増幅を開始する工程。 本発明の特徴は、上記（１）〜（３）の工程の間に、他の処理をいっさい行わないことである。他の処理とは、ＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法で処理したときの残存物や核酸増幅方法阻害物質を除去する工程や抗酸菌の強固な細胞壁を破壊して抗酸菌遺伝子を取り出す溶菌工程であり、増幅効率を上げるための前処理工程を示す。（１）より前の工程では、喀痰の粘性を下げる工程を含んでもよく、（３）より後の工程では目的としている増幅産物を検出する工程を含んでも良い。本発明で対象となる抗酸菌本発明で対象となる抗酸菌とは、マイコバクテリウム属細菌の総称であり、大きくは結核菌群と非結核性抗酸菌とに分けられる。抗酸菌は、結核菌群に分類されているヒト型結核菌（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｔｕｂｅｒｃｕｌｏｓｉｓ）の他にも、ウシ型結核菌（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｂｏｖｉｓ）、アフリカ型結核菌（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ａｆｒｉｃａｎｕｍ）、ネズミ型結核菌（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｍｉｃｒｏｔｉ）、マイコバクテリウム・カネッティ（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｃａｎｅｔｔｉｉ）、マイコバクテリウム・カプレ（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｃａｐｒａｅ）、アシカ型結核菌（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｐｉｎｎｉｐｅｄｉｉ）などが挙げられるが、特に限定されない。また、非結核性抗酸菌は様々な種が挙げられ、特にヒトに病原性を示すトリ型結核菌（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ａｖｉｕｍ）、マイコバクテリウム・イントラセルラーレ（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｉｎｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒｅ）、マイコバクテリウム・カンサシイ（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｋａｎｓａｓｉｉ）、マイコバクテリウム・スクロフラセウム（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｃｒｏｆｕｌａｃｅｕｍ）、マイコバクテリウム・フォーチュイタム（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｆｏｒｔｕｉｔｕｍ）が対象である。ただしこれらに限定されるものではない。 抗酸菌を含む検体としては、喀痰、気管支洗浄液、気管支肺胞洗浄液、胃液、血液、尿、便、体腔液、組織など様々な検体が例示できるが、これらに限定されるものではない。本発明の増幅方法の特徴となる工程本発明では、抗酸菌を含む検体を、まずＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法で処理する。ＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法とは、一般的に行われている喀痰の処理方法である。具体的には粘性溶解剤としてＮＡＬＣを加えて喀痰の粘性物質の消化を促進し、低濃度の水酸化ナトリウムにより抗酸菌以外の汚染菌を死滅除去し、緩衝液で希釈した後、遠心分離を行い、沈さを緩衝液で懸濁して培地へ接種する方法である。抗酸菌の培養検査や塗沫検査に用いるための喀痰の前処理法である。本発明のＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法は上述の原理を利用した方法を示し、さらには集菌剤を追加した改良されたＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法などの一般的方法と同様の効果を持つ変法も含まれる。 抗酸菌を含む未処理の検体をＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法で処理する前に、スプタザイム(登録商標)、プレソルブ（登録商標）などのタンパク分解酵素セミアルカリプロテアーゼ（ＳＡＰ）処理を行っても良い。ＳＡＰ処理は、喀痰を溶解・均等化し、ＮＡＬＣ−ＮａＯＨ溶液を効率よく作用させ、培地の雑菌汚染の低減を図るために用いられる。 本発明では、従来行われていたＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法以後の前処理操作を行わず、ＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法で処理された試料を、水または緩衝液で懸濁し、試料溶液として増幅工程に供する。ＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法で処理された試料を、例えばリン酸緩衝液（ＰＢＳ）やＥＤＴＡなどの金属キレート剤を含む緩衝液などで懸濁すると増幅工程を阻害するため、試料は水または増幅阻害を起こさない緩衝液で懸濁することが好ましい。緩衝液としては特に限定されるものではないが、トリスやヘペスなどのグッドバッファーおよび、リン酸緩衝液などが用いられるが、具体的には、１０〜２００ｍＭの各種バッファー（ｐＨ７．５〜９（２５℃））が例示できる。好ましくはトリス緩衝液である。好ましい緩衝ｐＨ範囲は７〜９である。本発明で用いる増幅方法増幅方法としては特に限定されず、適宜公知の方法を用いることができる。例えば、ＰＣＲ、ＮＡＳＢＡ（Ｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄ ｓｅｑｕｅｎｃｅ−ｂａｓｅｄａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｍｅｔｈｏｄ；Ｎａｔｕｒｅ 第３５０巻、第９１頁、１９９１年参照）、ＬＣＲ（国際公開８９／１２６９６号、特開平２−２９３４号参照）、ＳＤＡ（Ｓｔｒａｎｄ Ｄｉｓｐｌａｃｅｍｅｎｔ Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ：Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． 第２０巻、第１６９１頁、１９９２年参照）、ＲＣＡ（国際公開９０／１０６９号参照）、ＴＭＡ（Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ ｍｅｄｉａｔｅｄ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｍｅｔｈｏｄ；Ｊ． Ｃｌｉｎ． Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ． 第３１巻、第３２７０頁、１９９３年参照）、ＬＡＭＰ（Ｌｏｏｐ−ｍｅｄｉａｔｅｄ ｉｓｏｔｈｅｒｍａｌ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｍｅｔｈｏｄ：Ｊ． Ｃｌｉｎ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ. 第４２巻：第１９５６頁、２００４年参照）、ＩＣＡＮ（ｉｓｏｔｈｅｒｍａｌ ａｎｄ ｃｈｉｍｅｒｉｃ ｐｒｉｍｅｒ−ｉｎｉｔｉａｔｅｄ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄｓ：Ｋｅｋｋａｋｕ. 第７８巻、第５３３頁、２００３年参照）などを挙げることができるが、これらに限定されない。好ましくはＰＣＲなどの温度変化を利用して増幅する方法が良い。増幅方法としてＰＣＲ法を用いる場合、用いるＤＮＡポリメラーゼは特に限定されるものではないが、以下の（１）および（２）からなる群から選ばれる１つ以上からなるものが例示される。（１）Ｔｂｒ，Ｔｆｌ，Ｔｒｕ，Ｔｔｈ，Ｔ１ｉ，Ｔａｃ，Ｔｎｅ，Ｔｍａ，Ｔｉｈ、Ｔｆｉ，Ｐｆｕ，Ｐｆｕｔｕｂｏ，Ｐｙｒｏｂｅｓｔ（登録商標），Ｐｗｏ，ＫＯＤ，Ｂｓｔ，Ｓａｃ，Ｓｓｏ，Ｐｏｃ，Ｐａｂ，Ｍｔｈ，Ｐｈｏ，ＥＳ４，ＶＥＮＴおよびＤＥＥＰＶＥＮＴからなる群。（２）（１）で示される群のＤＮＡポリメラーゼの変異体であり、かつ、ＤＮＡポリメラーゼ活性を有する変異体。 なかでも、ＤＮＡポリメラーゼとして「伸長速度」が速いＤＮＡポリメラーゼを用いるＰＣＲ法が好ましい。ＤＮＡポリメラーゼの「増幅効率」がよく、「伸長速度」が速い特徴は、少量の核酸から増幅反応を行うことを可能にする。特に限定するわけではないが伸長速度の遅いＴａｑポリメラーゼでは、短時間で少量の核酸を増幅させることは難しい。ＤＮＡポリメラーゼの「伸長速度」は、１００塩基／秒以上であることが好ましい。 また至適緩衝液が核酸を含む臨床検体残存物からの検出を可能にする。例えば、マグネシウムイオン濃度の許容幅が広いことは臨床検体からの検出に有利に働く。臨床検体に含まれる金属キレート作用を持つ物質のため、マグネシウムイオンキレート化されて不足するとＤＮＡポリメラーゼの増幅反応は起こらない。マグネシウムイオンの濃度は特に限定されないが、１ｍＭ〜８ｍＭが好ましく、より好ましくは２ｍＭ〜８ｍＭである。さらに好ましくは３ｍＭ〜６ｍＭである。その他、至適緩衝液中に反応に影響を及ぼさない範囲でアミノ酸またはタンパク質、糖類、還元剤多価アルコール、ジメチルスルホキシドなどを配してもよい。アミノ酸又はタンパク質としては、グルタミン酸ソーダ、アルブミン、スキムミルク等、糖としてはシュクロース、マルトース等、還元剤としてはグルタチオン、メルカプトエタノール等、多価アルコールとしてはグリセロール、ソルビトールなどが含まれていても良い。至適緩衝液中に界面活性剤などが含まれていても良い。界面活性剤としては、非イオン性界面活性剤がよく、好ましくＴｒｉｔｏｎＸ−１００、Ｔｗｅｅｎ２０、Ｎｏｎｉｄｅｔ Ｐ４０などが例示される。界面活性剤は、反応段階、すなわち、ポリメラーゼ反応時に、０．０００１〜１％になるように含まれていてもよく、好ましくは０．００１〜０．１％がよい。 抗酸菌遺伝子を増幅させた後の検出する工程は特に限定されないが、電気泳動により適切な位置に目的の増幅産物を示すバンドを確認する方法、蛍光標識プローブと目的の増幅産物とのハイブリダイゼーションした時に蛍光値が変化することを検出する方法、ＳＹＢＲＧｒｅｅｎ Ｉなどの二本鎖核酸にインターカレートする蛍光色素を用いて目的の増幅産物を検出する方法、目的の増幅産物が得られた場合に発色または発光させて検出する方法、ＴａｑＭａｎ（登録商標）プローブ法を用いて目的の増幅産物を検出する方法などが挙げられる。特に増幅と検出が容器を開封することなしに可能な検出方法が好ましい。〔ＢＣＧ菌体からの直接増幅〕（１）試料の調製細菌は、Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｂｏｖｉｓ ＢＣＧ株（ＢＣＧと略す）を使用した。３％小川培地（日水製薬製）にて２週間３５℃で培養後、抗酸菌培養の液体培地であるＭｙｃｏＢｒｏｔｈ（極東製薬工業製）に接種し６日間３７℃で培養した。培養後の液体培地は、分散性の高い菌液を得るため、５μｍの親水性フィルターでろ過した後、濁度計でＯＤ６００を測定し、マクファーランド比濁法に従ってマクファーランド１の濃度に菌液を調整した。さらにマクファーランド１の菌液１．０ｍＬを１．５ｍＬのチューブに加え、遠心分離操作で菌体だけを沈殿させた。その後上清を取り除いて１．０ｍＬの滅菌水で再懸濁させた。この操作は液体培地中に既に遊離している核酸を除去するために行った。さらに、ＢＣＧのゲノムＤＮＡを得るために、フェノールクロロホルム法にてゲノムＤＮＡを抽出した。（２）材料の準備調製したマクファーランド１濃度のＢＣＧ菌体懸濁液を滅菌水で１０００倍希釈した溶液を準備した（試料１）。コントロールとして同じくＢＣＧ菌体懸濁液より抽出したゲノム溶液１００コピーおよび滅菌水を用いた。（３）ＰＣＲによる増幅および融解曲線解析による検出試料１、１００コピーのＢＣＧゲノム溶液および滅菌水をそれぞれ下記試薬に添加して、下記条件によりＰＣＲ増幅および検出を行った。下記試薬・条件はＢＣＧ株を特異的に検出できるプライマーおよびプローブの組み合わせである。増幅産物とプローブがハイブリダイゼーションすることでプローブに標識された蛍光色素の蛍光が消光すること（ＱＰｒｏｂｅ法：）を検出原理としている。核酸増幅および検出にはロシュ・ダイアグノスティック社製ライトサイクラー（登録商標）を使用した。測定モードは５３０ｎｍを利用し、増幅反応後、融解曲線解析を実施した。融解曲線解析は蛍光標識プローブが標的核酸から解離する時の蛍光量の増加を検出している。図１〜４の縦軸は蛍光強度の一次導関数の逆符号の値（−ｄＦ／ｄｔ）、横軸は温度（℃）である。（４）試薬組成 以下の試薬を含む１０μＬ溶液を調製した。ＫＯＤ ｐｌｕｓ ＤＮＡポリメラーゼ反応液 オリゴ１ ２５０ｎＭ、 オリゴ２ １５００ｎＭ、オリゴ３（３’末端をＢＯＤＩＰＹ−ＦＬ標識） ２５０ｎＭ、 ×１０緩衝液 １μＬ、 ｄＮＴＰ ０．２ｍＭ、 ＭｇＳＯ４ ４ｍＭ、 ジメチルスルホキシド ７．５％ ＫＯＤ ｐｌｕｓ ＤＮＡポリメラーゼ ０．３Ｕ、 試料またはコントロール溶液 ３μＬ （５）核酸増幅および検出条件 （ＰＣＲ）９４℃・２分 ９８℃・０秒、６０℃・５秒、５０サイクル （融解曲線解析） ９４℃・１分、４０℃・１分 ０．５℃／秒で７５℃まで温度上昇（６）結果図１は、菌体懸濁液を直接増幅検出用反応液に混合して検出した結果である。菌懸濁液を用いた場合でも、ゲノムＤＮＡ同様に抗酸菌ゲノムの増幅および検出が可能であった。抗酸菌については強固な細胞壁を持っているが、溶菌操作を行わなくともＰＣＲ反応中にＢＣＧのゲノムＤＮＡを取り出して増幅できることがわかった。〔ＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法処理済試料からの直接増幅〕（１）試料の調製喀痰は、あらかじめ培養検査で陽性陰性がわかっているヒト型結核菌陽性およびヒト型結核菌陰性の検体を用いて一般的なＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法に従って前処理を実施した。最終的に得られた沈殿物は滅菌水に懸濁した。（２）材料の準備ヒト型結核菌陽性検体のＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法処理済み溶液を試料２とした。ヒト型結核菌陰性検体のＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法処理済み試料を試料３とした。また、調製したマクファーランド１濃度のＢＣＧ菌体懸濁液を滅菌水で１００倍希釈した溶液を準備した。ＢＣＧ菌体１００倍希釈液をヒト型結核菌陰性検体のＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法処理済み試料に１０倍希釈して混合した液を試料４とした。コントロールとして同じくＢＣＧ菌体懸濁液より抽出したゲノム溶液１００コピーおよび滅菌水を用いた。（３）ＰＣＲによる増幅および融解曲線解析による検出試料２〜４、１００コピーのＢＣＧゲノム溶液および滅菌水をそれぞれ実施例１に記載の試薬に添加し、実施例１と同様の条件にてＰＣＲ増幅および検出を行った。（４）結果図２〜図４は試料１〜３をコントロールとともに検出した結果である。図２および図４からＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法処理済み溶液を用いた場合でも、ゲノムＤＮＡ同様に抗酸菌ゲノムの増幅および検出が可能であった。ＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法処理済み溶液には喀痰の残存物も残渣として残っているが、喀痰成分の影響を受けることなく標的遺伝子の増幅が可能であることがわかった。本発明によれば、迅速かつ簡便な操作で抗酸菌の核酸を増幅することが可能となる。具体的には、複雑で工数の多い操作を行っていた抗酸菌の溶菌方法を行うことなしに、ＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法処理後の試料から直接核酸増幅が達成可能となる。従来行っていた抗酸菌の溶菌工程と核酸の精製工程が不要となり、より簡便な遺伝子検査の前処理が実現できる。以下の（１）〜（３）の工程を含むことを特徴とする抗酸菌遺伝子の増幅方法。（１）抗酸菌を含む検体をＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法で処理する工程。（２）（１）の工程で処理された試料を水または緩衝液で懸濁し、試料溶液とする工程。（３）（２）の工程で得られた試料溶液を核酸増幅試薬と混合し増幅を開始する工程。抗酸菌を含む検体が喀痰である請求項１に記載の抗酸菌遺伝子の増幅方法。核酸増幅反応がＰＣＲである請求項１または２に記載の抗酸菌遺伝子の増幅方法。ＰＣＲに用いるＤＮＡポリメラーゼが、以下の（１）および（２）からなる群から選ばれる１つ以上からなる、請求項１〜３のいずれかに記載の抗酸菌遺伝子の増幅方法。（１）Ｔｂｒ，Ｔｆｌ，Ｔｒｕ，Ｔｔｈ，Ｔ１ｉ，Ｔａｃ，Ｔｎｅ，Ｔｍａ，Ｔｉｈ、Ｔｆｉ，Ｐｆｕ，Ｐｆｕｔｕｂｏ，Ｐｙｒｏｂｅｓｔ（登録商標），Ｐｗｏ，ＫＯＤ，Ｂｓｔ，Ｓａｃ，Ｓｓｏ，Ｐｏｃ，Ｐａｂ，Ｍｔｈ，Ｐｈｏ，ＥＳ４，ＶＥＮＴおよびＤＥＥＰＶＥＮＴからなる群。（２）（１）で示される群のＤＮＡポリメラーゼの変異体であり、かつ、ＤＮＡポリメラーゼ活性を有する変異体。 【課題】抗酸菌遺伝子検査は前処理の操作が煩雑であったり、時間がかかったりして、簡便性と迅速性を満たすものではなかった。【解決手段】抗酸菌を含む未処理の検体をＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法で処理し、次いで該工程で処理された試料を水または緩衝液で懸濁し試料溶液とし、次いで該工程で得られた試料溶液を核酸増幅試薬と混合し増幅を開始する工程を含むことを特徴とする抗酸菌遺伝子の増幅方法。【選択図】なし配列表

ページのトップへ戻る

生命科学データベース横断検索へ戻る