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| タイトル： | 特許公報(B2)_眼疾患モデル用非ヒト動物 |
| 出願番号： | 2008555002 |
| 年次： | 2012 |
| IPC分類： | A01K 67/027,C12N 15/09,G01N 33/50,G01N 33/15 |
特許情報キャッシュ
井上 馨 藤川 恵子 JP 5087011 特許公報(B2) 20120914 2008555002 20080123 眼疾患モデル用非ヒト動物 井上 馨 509198561 藤川 恵子 509198930 佐伯 憲生 100102668 井上 馨 藤川 恵子 JP 2007012458 20070123 20121128 A01K 67/027 20060101AFI20121108BHJP C12N 15/09 20060101ALI20121108BHJP G01N 33/50 20060101ALI20121108BHJP G01N 33/15 20060101ALI20121108BHJP JPA01K67/027C12N15/00 AG01N33/50 XG01N33/15 Z A01K 67/027 C12N 15/09 G01N 33/15 G01N 33/50 CA/BIOSIS/MEDLINE/WPIDS(STN) JSTPlus/JMEDPlus/JST7580(JDreamII) GenBank/EMBL/DDBJ/GeneSeq CiNii 日本免疫学会総会・学術集会記録，２００４年１１月 ５日，Vol. 34，p. 333, 3-I-W45-19-O/P The Journal of Experimental Medicine，２００３年，Vol. 198, No. 10，pp. 1595-1608 Nature Immunology，２００１年，Vol. 2, No. 6，pp. 542-547 Experimental Cell Research，２００５年１１月 １日，Vol. 310, No. 2，pp. 303-310 6 JP2008000069 20080123 WO2008090742 20080731 19 20101202 太田 雄三 本発明は、眼疾患のモデル非ヒト動物の提供に関し、より詳しくはＶａｖ２遺伝子及び／又はＶａｖ３遺伝子の機能を欠損させた眼疾患モデル用非ヒト動物に関する。 人間が外部から得る情報の約８０％は視覚であると言われているように、眼はヒトにとって最も重要な感覚器官の一つである。そのため、眼疾患の多くは致死性ではないものの、最終的に失明に至るおそれのある眼疾患は日常生活に重大な支障をもたらすため、その治療法の開発は、人類にとって極めて重要な意義を有する。 最終的に失明に至るおそれのある眼疾患として特に重要視されているのが、網膜神経が傷害を受けて視力を失う網膜変性や視神経変性を伴う疾患である。このような変性は、視力低下や視野狭窄、視野欠損、眼循環障害などの症状を惹起し、最終的には失明に至る。 特に、高い眼圧が原因となって網膜が損傷する緑内障は、高齢化に伴う大きな問題となっている。そのため、緑内障をはじめとする眼疾患の有効な薬物療法を開発するに当たって、高眼圧及び／又は網膜変性を呈する眼疾患モデル動物の作製は極めて重要な課題である。 これまでに、眼疾患症状を呈する種々のモデル動物が作製されてきた。その多くは、特定の化合物ないし薬物を投与して癌疾患と同様の症状を生じさせたモデル動物である。例えば、先天性糖尿病動物であるＧＫラットにローズベンガルを投与することで網膜血管傷害を併発させた網膜症モデル動物（特許文献１）、架橋ポリマー含有液を前房内に注入することによって高眼圧および視神経損傷を誘発させた実験動物（特許文献２）などが挙げられる。一方、内在性ＧＬＡＳT遺伝子の機能を欠損させた正常眼圧緑内障のモデルとしてのＧＬＡＳＴノックアウトマウス（特許文献３）は、特定の遺伝子の機能を抑制することで癌疾患症状を誘発させたモデル動物の例である。 しかし、前者の特定の化合物ないし薬物を投与して癌疾患と同様の症状を生じさせたモデル動物には、再現性の問題や、誘発させた症状と実際の疾患原因との関係が必ずしも直接的に反映されているとは限らないなどの問題が指摘されている。また、後者のＧＬＡＳＴノックアウトマウスは、正常眼圧緑内障のモデルにその用途が限定されている。国際公開第ＷＯ２００４／０８０１６６号パンフレット特開２００３−１４９２３６号公報国際公開第ＷＯ２００４／０９２３７１号パンフレット 本発明は、自然発生的に眼疾患、特に高眼圧及び／又は網膜症を呈するモデル動物の提供を目的とする。 本発明者らは、眼疾患モデル動物の提供とは異なる、免疫応答の機能解明を目的とした研究において、Ｖａｖファミリー遺伝子の一種であるＶａｖ２遺伝子及び／又はＶａｖ３遺伝子の機能を欠損させたノックアウトマウスを作製したが、全く意外なことに、当該マウスが自然発生的に高眼圧を初めとする種々の眼疾患症状を呈することを新たに見いだし、以下の各発明を完成させた。（１）Ｖａｖ２遺伝子及び／又はＶａｖ３遺伝子の機能を欠損させた眼疾患モデル用非ヒト動物。（２）Ｖａｖ２遺伝子及びＶａｖ３遺伝子の機能を欠損させた（１）に記載の眼疾患モデル用非ヒト動物。（３） 眼疾患が網膜変性、視神経変性、眼圧上昇、高眼圧、視力低下、視野狭窄、視野欠損の少なくとも１以上の症状を伴う疾患である、（１）又は（２）に記載の眼疾患モデル用非ヒト動物。（４）眼疾患が緑内障である、（２）又は（３）に記載の眼疾患モデル用非ヒト動物。（５）非ヒト動物がマウスである、（１）〜（４）の何れかに記載の眼疾患モデル用非ヒト動物。（６）Ｖａｖ２遺伝子及び／又はＶａｖ３遺伝子の機能を欠損させた非ヒト動物に化合物を投与する工程、及び該化合物の眼疾患に対する治療作用を確認する工程を含む、眼疾患治療作用を有する化合物のスクリーニング方法。（７）非ヒト動物がＶａｖ２遺伝子及びＶａｖ３遺伝子の機能を欠損させた非ヒト動物である、（６）に記載のスクリーニング方法。（８）眼疾患が網膜変性を伴う疾患であり、眼圧を測定することで化合物の治療作用を確認する、（６）又は（７）に記載のスクリーニング方法。（９）眼疾患が網膜変性を伴う疾患であり、眼組織の病理学的検査によって化合物の治療作用を確認する、（６）又は（７）に記載のスクリーニング方法。（１０）眼疾患が緑内障である、（７）〜（９）の何れかに記載のスクリーニング方法。（１１）眼疾患が網膜症、黄斑変性症、又は黄斑浮腫である、（７）〜（９）の何れかに記載のスクリーニング方法。正常マウスとＶａｖ２ｋｏの眼圧の変化を示す。縦軸は眼圧（ｍｍＨｇ）を、横軸は生後週齢数を、それぞれ示す。正常マウスとＶａｖ３ｋｏの眼圧の変化を示す。縦軸は眼圧（ｍｍＨｇ）を、横軸は生後週齢数を、それぞれ示す。正常マウスとＶａｖ２／３ｋｏの眼圧の変化を示す。縦軸は眼圧（ｍｍＨｇ）を、横軸は生後週齢数を、それぞれ示す。２１週齢のコントロールマウス（Ｂ６マウス）の、線維柱帯及びシュレム管の光学顕微鏡観察写真を示す。９週齢のＶａｖ２／３ｋｏの線維柱帯及び強膜静脈洞の光学顕微鏡観察写真を示す。Ｖａｖ２／３ｋｏの線維柱帯及び強膜静脈洞の光学顕微鏡観察写真を示す。Ｖａｖ２／３ｋｏにおける水晶体の変性の例を示す。Ｖａｖ２／３ｋｏにおける角膜の肥厚と血管新生の例を示す。Ｖａｖ２／３ｋｏにおける視神経の血管拡張の例を示す。Ｖａｖ２／３ｋｏにおける硝子体の好酸球浸潤の例を示す。Ｖａｖ２／３ｋｏにおける眼球網膜の萎縮変性の例を示す。Ｖａｖ２／３ｋｏにおける眼球の開放性の隅角の例を示す。３週齢のコントロールマウス（上段）及びＶａｖ２／３ｋｏ（下段）における眼球（ｅｙｅ ｂａｌｌ）、視神経乳頭（Ｏｐｔｉｃ ｎｅｒｖｅ ｈｅａｄ）及び網膜（Ｒｅｔｉｎａ）の様子を示す。１０週齢のコントロールマウス（１段目）、１０週齢のＶａｖ２／３ｋｏ（２段目）、１５週齢のＶａｖ２／３ｋｏ（３段目）、３０週齢のＶａｖ２／３ｋｏ（４段目）における眼球（ｅｙｅ ｂａｌｌ）、視神経乳頭（Ｏｐｔｉｃ ｎｅｒｖｅ ｈｅａｄ）及び網膜（Ｒｅｔｉｎａ）の様子を示す。Ｖａｖ２／３ｋｏに対してラタノプラストを投与したときの眼圧低下を示す。左の２つのグラフがラタノプラストの投与を、右の２つのグラフがコントロールの投与をそれぞれ示す。Ｖａｖ２／３ｋｏに対してラタノプラスト又はコントロール溶液を投与したときの眼圧低下を示す。グラフ左のバーが投与前の、グラフ右のバーが投与３時間後の眼圧をそれぞれ示す。Ｖａｖ２ｋｏに対してラタノプラスト又はコントロール溶液を投与したときの眼圧低下を示す。グラフ左のバーが投与前の、グラフ右のバーが投与３時間後の眼圧をそれぞれ示す。Ｖａｖ２／３ｋｏに対してラタノプラスト、塩酸ドルゾラミド又はマレイン酸チモロールを投与したときの眼圧低下を示す。グラフ左のバーがラタノプラスト、グラフ中央のバーが塩酸ドルゾラミド、グラフ右のバーがマレイン酸チモロールである。正常マウスの眼球を構成する各組織におけるＶａｖ２遺伝子及びＶａｖ３遺伝子の発現をリアルタイムＰＣＲで確認した結果を示す。正常マウスの眼球の前房隅角におけるＶａｖ２遺伝子及びＶａｖ３遺伝子の発現を、ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーションで確認した結果を示す顕微鏡写真である。コントロールマウス、Ｖａｖ２／３ｋｏ、Ｖａｖ２ｋｏ、及びＶａｖ３ｋｏに対してＹ−２７６３２又はコントロール溶液を投与したときの眼圧低下を示す。バー１がコントロールマウス、バー２がＶａｖ２／３ｋｏ、バー３がＶａｖ２ｋｏ、バー４がＶａｖ３ｋｏである。 本発明において、Ｖａｖ２遺伝子及び／又はＶａｖ３遺伝子の機能を欠損させた非ヒト動物とは、染色体上の内在性Ｖａｖ２遺伝子及び／又はＶａｖ３遺伝子において、遺伝子中のアミノ酸配列をコードする領域に変異を導入することにより、あるいは当該遺伝子の発現調節領域、例えばプロモーター領域やイントロン領域中に変異を導入することにより、あるいは当該遺伝子の一部又は全部が他の遺伝子、典型的には外来性マーカー遺伝子によって置き換えられており、機能的なＶａｖ２遺伝子及び／又はＶａｖ３遺伝子が発現しないあるいは恒常的に抑制されている非ヒト動物を意味する。本発明において、Ｖａｖ２遺伝子及び／又はＶａｖ３遺伝子の機能を欠損させた非ヒト動物は、内在性Ｖａｖ２遺伝子及び／又はＶａｖ３遺伝子がそれぞれ２つ欠損しているホモ接合型及び内在性Ｖａｖ２遺伝子及び／又はＶａｖ３遺伝子がそれぞれ１つ欠損しているヘテロ接合型を包含するが、ホモ接合型非ヒト動物の利用が好ましい。また動物種としては、マウスが特に好ましい。 Ｖａｖ２及びＶａｖ３は、ｖａｖファミリータンパク質に属するオンコジーンの一種であり、Ｒｈｏ／Ｒａｃ ｓｍａｌｌＧタンパクのＧＤＰ／ＧＴＰ交換反応を促進する酵素タンパクの一群である。Ｖａｖ２はＲａｃ１やＣｄｃ４２を活性化し（Ｂｅｔｔｙ Ｐ．ら、Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．、２０００年、第２０巻、第１９号、第７１６０−７１６９頁）、Ｖａｖ３はＲａｃ１を介したホスホイノシチド３キナーゼ（ｐｈｏｓｐｈｏｉｎｏｓｉｔｉｄｅ ３ ｋｉｎａｓｅ）の活性化ならびにＢ細胞リセプター応答に関与すると報告されている（Ｉｎａｂｅら、Ｊ． Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．、２００２年、第１９５巻、第２号、第１８９−２００頁）。 本発明におけるＶａｖ２遺伝子及び／又はＶａｖ３遺伝子の機能を欠損させた非ヒト動物の代表例は、Ｆｕｊｉｋａｗａ K.ら（Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．、２００３年、第１９８巻、第１０号、第１５９５−１６０８頁）の研究において使用され、あるいは作製された、Ｖａｖ２遺伝子及び／又はＶａｖ３遺伝子の機能を欠損させたノックアウトマウスである。同研究では、Ｖａｖ２遺伝子の機能を欠損させたマウス（前記文献図２にＶａｖ２ｋｏと表記されており、以下本明細書でもこの表記を使用する）、Ｖａｖ３遺伝子の機能を欠損させたマウス（前記文献図２にＶａｖ３ｋｏと表記されており、以下本明細書でもこの表記を使用する）、Ｖａｖ２遺伝子及びＶａｖ３遺伝子がノックアウトされ、Ｖａｖ１遺伝子を正常に有するマウス（前記文献図２にＶａｖ２／３ｋｏと表記されており、以下本明細書でもこの表記を使用する）、さらにＶａｖ２及びＶａｖ３に加えてＶａｖ１遺伝子もノックアウトされたマウス（前記文献図２にＶａｖ１／２／３ｋｏと表記されており、以下本明細書でもこの表記を使用する）が使用されている。 Ｖａｖ２遺伝子の機能を欠損させたマウスの作製は、Ｄｏｏｄｙ Ｇ．Ｍ．ら（Ｎａｔｕｒｅ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、２００１年、第２巻、第６号、第５４２−５４７頁）において報告されている。またＶａｖ３ｋｏの作製は、前記Ｆｕｊｉｋａｗａ Ｋ．ら（Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．）において報告されている。Ｖａｖ２／３ｋｏは、Ｖａｖ２ｋｏとＶａｖ３ｋｏとを繰り返し交配させて作製することができる、Ｖａｖ２遺伝子及びＶａｖ３遺伝子の機能を欠損させたホモ型マウスである。またＶａｖ１／２／３ｋｏは、Ｔａｒａｋｈｏｖｓｋｙ Ａ．らの報告（Ｎａｔｕｒｅ、１９９５年、第３７４巻、第４６７−４７０頁）を元にＶａｖ１遺伝子を欠損させたマウスとＶａｖ２遺伝子を欠損させたマウス（Ｄｏｏｄｙ Ｇ．Ｍ．ら、Ｎａｔｕｒｅ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ）とを繰り返し交配させてＶａｖ１遺伝子及びＶａｖ２遺伝子の機能を欠損させたマウスを作製し、さらにこのマウスとＶａｖ３ｋｏとを繰り返し交配させて作製することができる、Ｖａｖ１遺伝子、Ｖａｖ２遺伝子及びＶａｖ３遺伝子の全ての機能を欠損させたホモ型マウスである。なお、Ｖａｖ１遺伝子、Ｖａｖ２遺伝子及びＶａｖ３遺伝子およびそれらの塩基配列はいずれも公知であり、Ｇｅｎｂａｎｋにａｃｃｅｓｓｉｏｎ Ｎｏ．ＮＭ＿０１１６９１（Ｖａｖ１）、ａｃｃｅｓｓｉｏｎ Ｎｏ．ＮＭ＿００９５００（Ｖａｖ２）及びａｃｃｅｓｓｉｏｎ Ｎｏ．ＮＭ＿０２０５０５（Ｖａｖ３）として、それぞれ登録されている。 Ｖａｖ３ｋｏ、Ｖａｖ２／３ｋｏ及びＶａｖ１／２／３ｋｏは、いずれも米国マサチューセッツ州にあるハーバード大学のＦｒｅｄｅｒｉｃｋ Ｗ． Ａｌｔ博士の研究室、及び米国ミズーリ州にあるワシントン大学のＳｗａｔ Ｗ．博士の研究室によって、現在もその系統が維持され、供給体制が確立されている。しかしながら、これらマウスにおいては眼疾患モデルとして樹立されたものではなく、また眼疾患評価のための非ヒト動物としては利用されていない。本発明は、これらＶａｖ２ｋｏ、Ｖａｖ３ｋｏ、Ｖａｖ２／3ｋｏ及びＶａｖ１／２／３ｋｏの眼疾患モデル非ヒト動物としての使用を提供するものである。以下、Ｖａｖ２ｋｏ、Ｖａｖ３ｋｏ、Ｖａｖ２／３ｋｏ及びＶａｖ１／２／３ｋｏを包含して表す場合には、Ｖａｖ２−３ＫＯマウスと表すことにする。 前記Ｆｕｊｉｋａｗａらの研究は、Ｖａｖ１、Ｖａｖ２及びＶａｖ３のリンパ系免疫細胞の分化における機能解明を目的として、Ｖａｖ１、Ｖａｖ２、Ｖａｖ３の各遺伝子及びそれらの遺伝子を組み合わせて欠損させたマウスを使用している。しかし、Ｖａｖ遺伝子と眼疾患との関係、特にＶａｖ２遺伝子及び／又はＶａｖ３遺伝子の欠損がマウスに眼疾患症状をもたらすことについては、何ら記載されていない。 驚くべきことに、Ｖａｖ２／３ｋｏでは、生後数週齢で眼圧の上昇が始まり、６週齢以降はコントロールマウスに比べて４０％以上も高い眼圧を呈する様になる。さらに解剖学的観察では、隅角線維柱帯（Ｔｒａｂｅｃｕｌａｒ Ｍｅｓｈｗｏｒｋ）の形成阻害、及びシュレム管（Ｓｃｈｌｅｍｍ’ｓ ｃａｎａｌ）の狭窄が確認される。 さらに、網膜の萎縮変性、水晶体の変性、角膜の肥厚、角膜における血管新生、視神経における血管拡張、硝子体の好酸球浸潤なども観察される。この様な角膜、隅角、水晶体、硝子体、網膜、視神経の変性は、臨床的には視力低下、視野狭窄、視野欠損、網膜剥離、失明などの症状を裏付ける所見である。Ｖａｖ２／３ｋｏではこのような組織変化が出世後、漸次に病態が進行するため、緑内障や網膜症などにかかわらず、いわゆる加齢性の眼疾患の評価にも広く用いることができる。 この様に、Ｖａｖ２／３ｋｏにおいては、Ｖａｖ２遺伝子及び／又はＶａｖ３遺伝子の機能を欠くことに起因して、自然発生的に眼疾患症状、特に顕著な高眼圧及び／又は網膜変性が発症する。一般に、高眼圧及び／又は網膜変性は、何らかの眼疾患を伴っている場合が多いとされる。高眼圧及び／又は網膜変性をもたらす疾患としては、眼底疾患、視野傷害、開放隅角緑内障、原発閉塞隅角緑内障、原発開放隅角緑内障、単性緑内障、高眼圧症、低眼圧症、先天性緑内障、外傷性緑内障、出血性緑内障、新生血管緑内障、ポスナー・シュロスマン症候群、ステロイド緑内障、スタージ・ウェーバー症候群、プラトー虹彩悪性緑内障、本能性虹彩萎縮症による閉塞隅角緑内障、チャンドラー症候群、絶対緑内症（硝子体の疾患）、生理的飛蚊症、後部硝子体剥離、光視症、糖尿病網膜症 、網膜動脈閉塞症、網膜静脈閉塞症、黄斑変性症、黄斑浮腫、未熟児網膜症等が知られている。 従って、本発明にかかるＶａｖ２−３ＫＯマウスに化合物を投与する工程、及び該化合物の眼疾患に対する治療作用を確認する工程を含む、眼疾患治療作用を有する化合物のスクリーニング方法は、上記何れかの疾患に対する治療薬の評価、あるいは探索を可能にする。治療薬の評価或いは探索は、好ましくはＶａｖ２−３ＫＯマウスに化合物を投与し、その化合物が同マウスの眼圧を低下させるか、あるいは網膜変性の発症を抑制するか、によって行うことができる。眼圧の測定は、市販されている眼圧測定機器、例えばＴｏｎｏｌａｂ ｒｅｂｏｕｎｄ ｔｏｎｏｍｅｔｅｒ（フィンランド、Ｔｉｏｌａｔ社製）、電子電圧計その他の装置を利用することで簡便に行うことができる。また網膜変性の発症抑制は、モデル非ヒト動物の眼球に対する組織病理学的観察によって確認することができる。あるいは、眼疾患それぞれに特徴的な外観やマーカー蛋白質或いは遺伝子の発現を確認することによっても、スクリーニングを行うことができる。 後に詳しく説明する実施例に示されるようにＶａｖ２／３ｋｏとＶａｖ２ｋｏでは、ヒトに対して緑内障治療薬として眼圧を下げるために用いられている公知の薬物に反応し、眼圧の降下が確認される。従って、上記マウスを用いることによって、ヒトに対して有効な眼圧降下作用を有する物質を直接的に探索、あるいは評価することができる。 また、本発明で使用されるＶａｖ２−３ＫＯマウスは、Ｖａｖ２遺伝子及び／又はＶａｖ３遺伝子の機能を欠くことで高眼圧や網膜症等の眼疾患症状を呈することから、Ｖａｖ２−３ＫＯマウスの眼疾患モデル動物の使用は、Ｖａｖ２遺伝子及び／又はＶａｖ３遺伝子と関連して発現が亢進或いは抑制される眼疾患関連遺伝子又は蛋白質の探索、同定を可能にする。例えば、コントロールマウスと比較してＶａｖ２−３ＫＯマウス内で発現が亢進あるいは抑制されている遺伝子又は蛋白質を、ディファレンシャルディスプレイ法やＤＮＡマイクロアレイ、電気泳動、質量分析等の種々の方法を利用して、眼疾患関連遺伝子あるいは蛋白質として探索、同定することができる。この様にして同定された眼疾患関連遺伝子又は蛋白質、あるいはこれらを通じて解明された眼疾患の発症メカニズムは、当該疾患に対するさらなる治療の可能性を広げるものとなる。従って、Ｖａｖ２−３ＫＯマウスの眼疾患モデル動物としての使用は、産業的にも多大な貢献をなし得るものである。 なお、前記Ｆｕｊｉｋａｗａ Ｋ．らに開示されているＶａｖ２遺伝子及び／又はＶａｖ３遺伝子の機能を欠損させたノックアウトマウスは、本発明にいうＶａｖ２遺伝子及び／又はＶａｖ３遺伝子の機能を欠損させた非ヒト動物の代表例であるが、本発明で使用される非ヒト動物はこの具体的な代表例には限定されない。例えば、Ｆｕｊｉｋａｗａ Ｋ．らによって作製されたマウスはＣ５７ＢＬ／６マウス系統のマウスであるが、かかる系統とは異なる他の系統マウスも利用可能である。かかる他の系統マウスからのＶａｖ２遺伝子及び／又はＶａｖ３遺伝子の機能を欠損させたマウスの作製は、Ｖａｖ２ｋｏに関する前記Ｄｏｏｄｙ Ｇ． Ｍ．ら（Ｎａｔｕｒｅ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、２００１年）、Ｖａｖ３欠損マウスに関する前記Ｆｕｊｉｋａｗａ Ｋ．ら（Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．、２００３年）、さらにはＶａｖ１欠損マウスに関する前記Ｔａｒａｋｈｏｖｓｋｙら（Ｎａｔｕｒｅ、１９９５年）にそれぞれ記載されている方法を参考に行うことができる。また、異なるマウス系統あるいはマウス以外の非ヒト動物のＶａｖ２遺伝子又はＶａｖ３遺伝子が、前記Ｆｕｊｉｋａｗａ Ｋ．らが利用したＶａｖ２遺伝子及びＶａｖ３遺伝子とは異なる塩基配列からなる場合もあり得るが、この様な場合も前記Ｆｕｊｉｋａｗａ Ｋ．ら（Ｊ．Ｅｘｐ． Ｍｅｄ．、２００３年）、さらにはＶａｖ１及びＶａｖ２欠損マウスに関する前記前記Ｄｏｏｄｙ Ｇ． Ｍ．ら（Ｎａｔｕｒｅ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、２００１年）にそれぞれ記載されている方法を参考に、各非ヒト動物においてＶａｖ２遺伝子及び／又はＶａｖ３遺伝子の機能を欠損させることは、当業者にとって通常の技術能力の範囲内の作業である。この様な遺伝子の機能の欠損は、公知のノックアウト動物の作製方法、例えばジーンターゲッティング法により達成することができる。 以下、非限定的な実施例を示して本発明をさらに詳細に説明する。＜実施例１＞ ワシントン大学のＳｗａｔ Ｗ．博士の研究室から分与されたＶａｖ２ｋｏ、米国マサチューセッツ州ハーバード大学のＦｒｅｄｅｒｉｃｋ Ｗ．Ａｌｔ博士の研究室から分与されたＶａｖ３ｋｏをそれぞれＣ５７ＢＬ／６マウスにバッククロスした後、Ｖａｖ２ｋｏとＶａｖ３ｋｏをかけ合わせてＶａｖ２／３ｋｏを得た。Ｖａｖ２ｋｏ、Ｖａｖ３ｋｏ及びＶａｖ２／３ｋｏ各４匹を、北海道大学医学研究科でのＳＰＦレベルでのバリアフリーという条件下で動物委員会の指針に沿い通常に飼育した。Ｔｏｎｏｌａｂ ｒｅｂｏｕｎｄ ｔｏｎｏｍｅｔｅｒ（フィンランド、Ｔｉｏｌａｔ社製）を用い、マニュアルに推奨された条件下で午前１０時から１２時の間に眼圧を週齡別に測定した。この実験を別々のマウスを用いて４回繰り返し、各種計１６匹について行った。得られたデータをｔｗｏ−ｔａｉｌｅｄ Ｓｔｕｄｅｎｔ’ｓ ｔ−ｔｅｓｔ検定を用いて解析して標準偏差を算出した（Ｐ＜０．０１）。またコントロールとしてＣ５７ＢＬ／６マウスを用意し、眼圧を同時に測定した。この結果を図１（Ｖａｖ２ｋｏ）、図２（Ｖａｖ３ｋｏ）及び図３に（Ｖａｖ２／３ｋｏ）にそれぞれ示す。 Ｖａｖ２ｋｏ及びＶａｖ３ｋｏにおいて、コントロールに対して約５〜２０％程度の眼圧上昇が確認された。また、Ｖａｖ２／３ｋｏでは眼圧の上昇は著しく、６週齢のＶａｖ２／３ｋｏにおける眼圧は、コントロールマウスに対して約４０％上昇していた。＜実施例２＞ コントロールマウス（Ｂ６マウス）２２例（表１）、及びＶａｖ２／３ｋｏ１８例（表２）から左右の眼球を取り出し、包埋、薄切の後、ヘマトキシンーエオシン（ＨＥ）染色（Ｓｉｇｍａ）を施した病理組織標本を作製した。標本を光学顕微鏡により検査した。観察結果を下記のグレーディングによりまとめた。 その結果、コントロールマウスでは１６日群の４眼中の１眼に軽微な所見がみられたが、その他の４週例群の８眼、９週例群の４眼、１１週例群の２眼及び２１週例群の４眼に異常はみられなかった。コントロールマウス（２１週齢）の顕微鏡観察写真（図４）をその代表例として示す。一方、Ｖａｖ２／３ｋｏマウスでは、２０日群及び４週例群には軽微、軽度又は中等度の強膜静脈洞の狭窄と線維柱帯の退縮が認められ、９週例群〜２６週例群の中には高度の強膜静脈洞の狭窄と線維柱帯の退縮が認められた。前記中等度の強膜静脈洞の狭窄と線維柱帯の退縮（図５）、強度の強膜静脈洞の狭窄と線維柱帯の退縮（図６）を、それぞれ代表例として示す。 また、水晶体の変性（図７）、角膜の肥厚と血管新生（図８）、視神経の血管拡張（図９）、硝子体の好酸球浸潤（図１０）、網膜の萎縮変性（図１１）を呈するＶａｖ２／３ｋｏもそれぞれ確認された。これらは臨床的に視力低下、視野狭窄、視野欠損、網膜剥離、失明などの症状を裏付ける所見であり、角膜、隅角、水晶体、硝子体、網膜、視神経の変性などの組織学的変化が顕著に生じていることが確認された。 さらに、Ｔｏｎｏｍｅｔｅｒを用いた眼圧測定を６回行って眼圧が有意に高かった７週齢のＶａｖ２／３ｋｏ６匹の眼球を、６回目の眼圧測定後すぐに摘出し、１０％ホルマリンを含む脱イオン化中和メタノール溶液にて希釈した電顕用２．５％グルタルアルデヒド（ＴＡＡＢ社）にて固定し、組織切片を作製して隅角を観察したところ、６匹中２匹において開放性の隅角が観察された（図１２）。＜実施例３＞ 本発明に係るＶａｖ２／３ｋｏとそのバックグランドであるＣ５７ＢＬ／６野生型（コントロール）の２種類のマウスを実施例１と同条件で３週、１０週、１５週、３０週まで飼育した。各マウスをペントバルビタールナトリウム溶液にて深麻酔した後、眼球を素早く摘出し、前眼房組織の観察用に、１０％ホルマリンを含む脱イオン化中和メタノール溶液にて希釈した電顕用２．５％グルタルアルデヒド（ＴＡＡＢ社）にて一方の眼球を固定した。もう一方の眼球は、網膜の観察用に、デビットソン溶液を用いて１２時間固定した。固定後の組織をパラフィン包埋し、ミクロトームにて矢状断に５μｍの切片とした。その後脱パラフィン化し、脱水処理した後、切片をＨＥ染色した。このＨＥ染色の結果を図１３及び図１４に示す。 図１３に示されるように、生後３週齢では、Ｖａｖ２／３ｋｏの視神経乳頭は野生型に比べて組織学的に見て異常はなく、視神経節細胞の減少などの異常も認められなかったが、Ｖａｖ２／３ｋｏで、生後７週齢を過ぎて眼圧の上昇が認められてきたあとでは、図１４で示すように、１０週齢のＶａｖ２／３ｋｏにて、視神経乳頭の陥凹所見と網膜視神経節細胞数の減少が観察された。その上、１５週齢、３０週齢のＶａｖ２／３ｋｏの網膜では、視神経層構造までもが破壊されていることが確認された。＜実施例４＞ ８〜９週齢のＶａｖ２／３ｋｏ（１２例）について、午前１０〜１２時にＴｏｎｏｍｅｔｅｒを用いて眼圧を測定した後、緑内障治療薬であるプロスタグランジン誘導体のラタノプラスト（Ｌａｔａｎｏｐｌａｓｔ、Ｃａｙｍａｎ Ｃｈｅｍｉｃａｌ社、０．０１%／ＰＢＳ）３μＬを点眼し、３時間後に再び眼圧を測定した。コントロールとしてＰＢＳのみを投与した群を同時に用意し、Ｓｔｕｄｅｎｔ’ｓ ｔ−ｔｅｓｔで検定を行った（Ｐ＜０．０５）。その結果、Ｌａｔａｎｏｐｒｏｓｔ投与によるＶａｖ２／３ｋｏの眼圧の低下が認められた（図１５）。すなわち、該マウスが緑内障治療薬の有用な評価モデルとなることが確認された。＜実施例５＞ ７週齢のＶａｖ２／３ｋｏとＶａｖ２ｋｏ各２０例対して、午前１０〜１２時にＴｏｎｏｍｅｔｅｒを用いて眼圧を測定した後、０．０２％塩化ベンザルコニウム、０．５％ＮａＨ２ＰＯ４、０．６％Ｎａ２ＨＰＯ４、０．４％塩化ナトリウム、及び０．００５％ラタノプロスト（Ｃａｙｍａｎ Ｃｈｅｍｉｃａｌ社）を含む溶液３μＬ、又はラタノプラストを含まない上記組成のコントロール溶液を、盲検定方法にて点眼投与し、３時間後に再び眼圧を測定した。また、Ｖａｖ２／３ｋｏに対しては、ラタノプロストとは眼圧降下作用機序が異なるとされているマレイン酸チモロール点眼液（商品名チモプトール、米メルク社、０．５％溶液）３μＬ又は塩酸ドルゾラミド点眼液（商品名トルソプト、米メルク社、１％溶液）３μＬを、上記ラタノプロストを含む溶液に代えて点眼投与し、点眼から２時間後の眼圧変化を測定した。 ラタノプロストは、図１６に示されるように、Ｖａｖ２／３ｋｏの眼圧を２６．３±５．０ｍｍＨｇから１５．８±５．１ｍｍＨｇへと著明に降下させた（Ｐ＜０．０１）。また、ラタノプロスト点眼投与２４時間後に再び眼圧を測定したところ、眼圧はラタノプロスト投与前の高い値に戻っていた。同様に、ラタノプラストは、図１７に示されるように、Ｖａｖ２ｋｏの眼圧を１７．４± ｍｍＨｇから１４．５± ｍｍＨｇへと有意に低下させた（Ｐ＜０．０１）。 さらに、図１８に示されるように、マレイン酸チモロールと塩酸ドルゾラミドのいずれも、Ｖａｖ２／３ｋｏに対して眼圧作用を示した。マレイン酸チモロールと塩酸ドルゾラミドの眼圧効果率は、それぞれ１５％及び２０％であった（ラタノプロストの眼圧効果率は約４０％）。＜試験例１＞ １０週齢のＣ５７ＢＬ／６マウスから眼球を摘出し、隅角線維柱帯（Ｔｒａｂｅｃｕｌａｒ Ｍｅｓｈｗｏｒｋ）、光彩、毛様体、角膜、網膜、レンズをそれぞれ分離回収した。各組織からＴＲＩｚｏｌ試薬（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を用いて全ＲＮＡを調製し、ＡＭＶ Ｒｅｖｅｒｓｅ Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔａｓｅ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を用い、ＡＢｉ７５００リアルタイムＰＣＲ装置（アプライドバイオシステム社）の推奨マニュアルに従って、リアルタイムＰＣＲを行った。Ｖａｖ２及びＶａｖ３に対するプローブはＡｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ ＩＮＣ．からＴａｑｍａｎ ｐｒｏｂｅ（Ｖａｖ２：Ｍｍ００４３７２８７、Ｖａｖ３：Ｍｍ００４４５０８２）として購入した。またコントロールとして、グリセロアルデヒド３リン酸脱水素酵素（ＧＡＰＤＨ、Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ ＩＮＣ．の製造番号：４３５２３３９Ｅ）のＴａｑｍａｎ ｐｒｏｂｅを用いた。 この結果、Ｖａｖ２、Ｖａｖ３のいずれも各組織において発現していることが確認された（図１９)。＜試験例２＞ 下記の塩基配列からなるプローブを化学合成し、［３３Ｐ］ｄＡＴＰを用いてラベリングした。 Ｖａｖ２検出用プローブ：5’−ＡＧＣＴＧＧＡＧＡＣＣＧＧＣＴＴＧＡＧＧＣＣＣＴＧＣＴＧＧＴＧＧＴＴＣＧＣＴＣＣＣＧＡＧＡ−３’ Ｖａｖ３検出用プローブ：５’-ＧＴＴＧＣＣＴＧＴＴＣＴＡＴＴＡＣＣＣＣＴＣＴＧＴＣＣＡＧＣＴＧＧＣＴＧＴＴＣＴＧＧＣＴＣ−３’ Ｖａｖ２検出用プローブは、ＧｅｎＢａｎｋにａｃｃｅｓｓｉｏｎ Ｎｏ．ＮＭ＿００９５００として登録されているＶａｖ２遺伝子の塩基配列のうち、２２７５−２３１９番目の塩基に相当する４５対の塩基配列である。またＶａｖ３検出用プローブは、ＧｅｎＢａｎｋにａｃｃｅｓｓｉｏｎ Ｎｏ．ＮＭ＿０２０５０５として登録されているＶａｖ３遺伝子の塩基配列のうち、２３４６−２３０２番目の塩基に相当する４５対の塩基配列である。 １０週齢のＣ５７ＢＬ／６マウスから摘出した眼球を凍結後、厚さ２０ｍｍの切片とし、３−アミノプロピルトリエトキシシランでコーティングしたスライドグラス上に置いた。Ｆｕｋａｙａらの方法（Ｅｕｒ．Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉｅｎｃｅ、２００５年、第２１巻、第１４３２−１４３６頁）に基づき、４％パラホルムアルデヒドを含む０．１Ｍリン酸ナトリウム緩衝液ｐＨ７．２で１０分及び２ｍｇ／ｍＬグリシン−リン酸緩衝化生理食塩水ｐＨ７．２で１０分固定化し、次に０．２５％無水酢酸を含む０．１Ｍトリエタノールアミン塩酸ｐＨ８．０でアセチル化し、さらに５０％ホルムアミド、５０ｍＭＴｒｉｓ塩酸緩衝液ｐＨ７．５）、０．０２％Ｆｉｃｏｌ、０．０２％ポリビニルピロリドン、０．０２％ＢＳＡ、０．６ＭＮａＣｌ、０．２５％ＳＤＳ、２００ｍｇ／ｍＬｔＲＮＡ、１ｍＭ ＥＤＴＡ及び１０％デキストラン硫酸を含む緩衝液で１時間プレハイブリダイゼーションを行なった。ここに［３３Ｐ］ｄＡＴＰを用いてラベリングされたオリゴヌクレオチド１００００ｃｐｍ／ｍＬを加え、４２℃で１２時間ハイブリダイズさせた。スライドに対して、０．１％サルコシンを含む０．１×ＳＳＣによる５５℃で４０分の洗浄を２回行った。スライドをＮｕｃｌｅａｒ Ｔｒａｃｋ ｅｍｕｌｓｉｏｎ（ＮＴＢ−２、コダック社）に５週間当て、メチルグリーンピロニンで染色した。 その結果、Ｖａｖ２及びＶａｖ３は、いずれも隅角線維柱帯（Ｔｒａｂｅｃｕｌａｒ Ｍｅｓｈｗｏｒｋ）において発現していることが確認された（図２０）。＜試験例３＞ ７週齢のＶａｖ２／３ｋｏ、Ｖａｖ２ｋｏ及びＶａｖ３ｋｏ各２０例に対して、午前１０〜１２時にＴｏｎｏｍｅｔｅｒを用いて眼圧を測定した後、眼房水の流出路に作用して眼圧降下作用をもつことが報告されている、Ｒｈｏ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄプロテインカイネース阻害剤であるＹ−２７６３２（カルビオケム社）の１ｍＭ／ＰＢＳ溶液３μＬ又はＰＢＳ溶液３μＬを点眼し、投与１時間後に再び眼圧を測定した。その結果、図２１で示すように、Ｖａｖ２／３ｋｏ、Ｖａｖ２ｋｏ及びＶａｖ３ｋｏのいずれに対しても、Ｙ−２７６３２は眼圧降下作用を示さなかった。 本発明に関するＶａｖ２遺伝子及び／又はＶａｖ３遺伝子の機能を欠損させた非ヒト動物は、特別な薬物の投与を必要とせずに、自然発症的に高眼圧、一部組織の退縮等の眼疾患症状を呈することから、当該非ヒト動物に試験化合物を投与することを含む眼疾患の治療効果を有する化合物の評価は、眼疾患を誘発するために投与される別の薬物の影響を受けないという利点を有する。また、当該眼疾患モデル用非ヒト動物は、眼疾患、特に網膜変性や視神経変性をもたらす緑内障、網膜症、黄斑変性症、黄斑浮腫などの眼疾患の原因又は発症メカニズムの解明に大きく貢献するものとなる。 Ｖａｖ２遺伝子及び／又はＶａｖ３遺伝子の機能を欠損させた非ヒト動物に化合物を投与する工程、及び該化合物の眼疾患に対する治療作用を確認する工程を含む、眼疾患治療作用を有する化合物のスクリーニング方法。 非ヒト動物がＶａｖ２遺伝子及びＶａｖ３遺伝子の機能を欠損させた非ヒト動物である、請求項１に記載のスクリーニング方法。 眼疾患が網膜変性を伴う疾患であり、眼圧を測定することで化合物の治療作用を確認する、請求項１又は２に記載のスクリーニング方法。 眼疾患が網膜変性を伴う疾患であり、眼組織の病理学的検査によって化合物の治療作用を確認する、請求項１又は２に記載のスクリーニング方法。 眼疾患が緑内障である、請求項１〜４の何れかに記載のスクリーニング方法。 眼疾患が網膜症、黄斑変性症、又は黄斑浮腫である、請求項１〜４の何れかに記載のスクリーニング方法。配列表