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| タイトル： | 特許公報(B2)_試料溶液中のアルブミンの分析方法 |
| 出願番号： | 2007526947 |
| 年次： | 2012 |
| IPC分類： | G01N 30/88,G01N 30/26,G01N 30/06 |
特許情報キャッシュ
窪田 和幸 山田 尚之 竹鼻 健司 河上 麻美 中山 聡 JP 5024044 特許公報(B2) 20120629 2007526947 20060727 試料溶液中のアルブミンの分析方法 味の素株式会社 000000066 高島 一 100080791 窪田 和幸 山田 尚之 竹鼻 健司 河上 麻美 中山 聡 JP 2005217993 20050727 20120912 G01N 30/88 20060101AFI20120823BHJP G01N 30/26 20060101ALI20120823BHJP G01N 30/06 20060101ALI20120823BHJP JPG01N30/88 JG01N30/26 AG01N30/06 C G01N 30/88 G01N 30/06 G01N 30/26 JSTPlus(JDreamII) JST7580(JDreamII) 特開昭６１−１５５３９７（ＪＰ，Ａ） 特開２００３−１３９７５１（ＪＰ，Ａ） Y.Kato, K.Komiya, H.Sasaki, and T.Hashimoto，Separation of Human Serum Proteins by High-Speed Gel Filtration on TSK-GEL G3000SWG，Journal of High Resolution Chromatography & Chromatography Communications，１９８０年 ３月，Vol.45, No.3，P.145 Catherine H.Botting，The use of the slow crystallisation method to improve matrix-assisted laser desorption/ionisation time-of-flight signals for larger proteins，Rapid Communications in Mass Spectrometry，２０００年，Vol.14, No.21，P.2030-2033 Masaru Sogami, Seiichi Era, Shunji Nagaoka, Kazuo Kuwata, Kimihiro Kida, and Jun Shigemi，High-Performance Liquid Chromatographic Studies On Non-Mercapt ⇔ Mercapt Conversion of Human Serum Albumin II，Journal of Chromatography，１９８５年 ９月２０日，Vol.332，P.19-27 H.L.Wang, H.F.Zou, and Y.K.Zhang，Determination of Drug-Protein Interactions by Combined Microdialysis and High-Performance Liquid Chromatography，Chromatographia，１９９７年，Vol.44, No.3/4，P.205-208 Hailin Wang, Hanfa Zou, and Yukui Zhang，Multi-Site Binding of Fenoprofen to Human Serum Albumin Studied by a Combined Technique of Microdialysis with High Perfirmance Liquid Chromatography，Biomedical Chromatography，１９９８年，Vol.12, No.1，P.4-7 Joaquin Cabrera-Crespo, Viviane Maimoni Goncalves, Elizabeth A.L. Martins, Sheyla Grellet, Alexandre Paulo yague Lopes, and Isaias Raw，Albumin purification from human placenta，Biotechnology and Applied Biochemistry，２０００年 ４月，Vol.31, Part.2，P.101-106 叶 社房，市村 薫，松崎 茂，小屋佐久次，酸化ストレスにより誘導される内分泌機能変化に対する松寿仙の影響，Dokkyo Journal of Medical Sciences，２００４年 ３月２５日，Vol.31，No.1，P.91-97 4 JP2006315358 20060727 WO2007013679 20070201 24 20090513 河野 隆一朗 本発明は、質量分析又は液体クロマトグラフィーを用いて試料溶液中のアルブミンを分析する方法に関する。より詳細には、本発明は、質量分析又は液体クロマトグラフィーに供する前の試料溶液の前処理方法に特徴を有する試料溶液中のアルブミンの分析方法、試料溶液中の酸化型アルブミンと還元型アルブミンの存在量及びそれらの存在比率を精度よく安定に分析する方法、並びに、アルブミン定量分析の精度管理用のアルブミン標準試料に関する。 アルブミンは、生体内に最も多量にかつ広く分布して存在しているタンパク質である。ヒトアルブミンは、アミノ酸５８５個からなり、分子量６６ｋＤａで、分子内に１７個のジスルフィド結合と１つの遊離システイン残基を持つ単純タンパク質である。アルブミンは肝臓で作られ、血液中に分泌される。アルブミンは、全血漿中に存在するタンパク質のおよそ６０％を占め、その生理機能としては、（１）血漿浸透圧の調節・維持、（２）ビリルビン、アミノ酸、脂肪酸、ホルモン、金属イオン、薬物などの輸送、（３）栄養不良時のアミノ酸供給源、（４）酸化・還元緩衝能などが知られている。特に、薬物とアルブミンの結合は、薬物の薬効発現に大きく関与している。このようにアルブミンは多様な機能を持つタンパク質である。 生体内のアルブミンについては、還元型及び酸化型アルブミン、糖化アルブミンなどの不均一性の存在が知られている。特に、糖尿病では一般にアルブミンの糖化が進行すると報告されており（Ｓｕｚｕｋｉ Ｅ．，Ｄｉａｂｅｔｅｓ Ｒｅｓ．１８（３），１５３−１５８，１９９２）、糖が結合して生成する糖化アルブミンは、ヘモグロビンＡ１ｃと同様に血糖状態をモニターするマーカーとして、糖尿病臨床の場で注目されている。 一方、生体内における還元型アルブミン（Ａｌｂ（ｒｅｄ））及び酸化型アルブミン（Ａｌｂ（ｏｘ））の存在についても生体の疾患と関連があることが知られ、最近注目されている。Ｎ末端から３４番目のシステインのＳＨ基が遊離であるＡｌｂ（ｒｅｄ）に対し、３４番目のシステインのＳＨ基にシステインなどの含硫生体内化合物がジスルフィド結合で付加したＡｌｂ（ｏｘ）が血中に存在していることが知られている（Ｅｒａ Ｓ， Ｉｎｔ． Ｊ． Ｐｅｐｔｉｄｅ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｒｅｓ． ３１， ４３５−４２２， １９８８）。 ジスルフィド結合は、短時間で可逆的に結合・解離することができるため、Ａｌｂ（ｒｅｄ）とＡｌｂ（ｏｘ）は、生体内で動的な平衡状態を保っていることになる。従って、血漿内のＡｌｂ（ｒｅｄ）とＡｌｂ（ｏｘ）の存在比は、血中の酸化還元状態を反映していることになる。つまり、何らかの酸化ストレスを受けた場合、Ａｌｂ（ｏｘ）の存在比が増加する。具体的には、高齢者、ネフローゼ症候群、人工透析、肝疾患などの患者でＡｌｂ（ｏｘ）が増加していることが知られている（Ｓｏｇａｍｉ Ｍ．， Ｊ． Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒ．， ３３２，１９−２７， １９８５； 渡辺明治， Ｐｈａｍａ Ｍｅｄｉｃａ， １９， １９５−２０４， ２００１； Ｓｕｚｕｋｉ Ｅ， Ｄｉａｂｅｔｅｓ Ｒｅｓ Ｃｌｉｎ Ｐｒａｃｔ， １８， １５３−１５８， １９９２）。また、糖尿病では、血中酸化産物の増加や抗酸化酵素活性の低下、微少血管障害に関するフリーラジカルの生成から考えて、患者は酸化ストレス状態にあると考えられる（Ｏｂｅｒｌｅｙ ＬＷ， Ｆｒｅｅ Ｒａｄｉｃａｌ Ｂｉｏｌ． Ｍｅｄ．， ５， １１３−１２４， １９８８）。 酸化ストレス状態は、生体の酸化反応と抗酸化反応のバランスが崩れ、酸化反応に傾いた生体に好ましくない状態である。酸化ストレスにより、細胞のＤＮＡ、細胞膜上のリン酸脂質、蛋白、糖質が傷害を受け、血管傷害が進行し、健康状態が悪化すると言われている。このように酸化ストレスは、老化や様々な病気を引き起こすと言われており、ポリフェノールなどの抗酸化作用をもつ物質が健康に良いことが知られている。従って、生体内の酸化状態を簡便にモニターできるようになれば、健康状態のモニターや、薬物や健康素材のスクリーニングが可能となる。 酸化型アルブミンが増加する代表的な疾患としては、肝硬変が知られている。肝硬変患者は、肝臓でのアルブミン生産能が低下することにより、血中のアルブミン量が低下する。この低アルブミン血症の治療として、ヒト血漿アルブミン製剤や分岐鎖アミノ酸製剤が使われる。肝硬変などの肝疾患においては、アルブミン量の低下と共に、酸化型アルブミンが増加する（Ｗａｔａｎａｂｅ Ａ， Ｎｅｔｒｉｔｉｏｎ ２０， ３５１−３５７， ２００４）。 また、腎機能障害（Ｔｅｒａｗａｋｉ Ｈ．， Ｋｉｄｎｅｙ Ｉｎｔ． ６５（５）， １９８８−１９９３， ２００４）、糖尿病（Ｓｕｚｕｋｉ Ｅ．， Ｄｉａｂｅｔｅｓ Ｒｅｓ． １８（３），１５３−１５８，１９９２）、リウマチ（Ｎａｒａｚａｋｉ Ｒ．， Ａｒｃｈ． Ｔｏｘｉｃｏｌ． １４， ３５１−３５３， １９９８）あるいは加齢（Ｅｒａ Ｓ．， Ｂｉｏｃｈｉｍ． Ｂｉｏｐｈｙｓ． Ａｃｔａ．， １２４７（１）， １２−１６， １９９５）などによっても酸化ストレスによる酸化・還元バランスの変動が生じる。 このようにアルブミンは、自ら還元体・酸化体を形成することにより、生体の酸化・還元の緩衝能を果たしている。従って、酸化型アルブミンと還元型アルブミンの存在比は生体の酸化・還元状態を反映していると考えることができるため、生体内血中の還元型・酸化型アルブミン比を正確に求めることができれば、酸化ストレスに起因する疾患の進行状況や治療効果、あるいは健康状態を鋭敏にモニターすることが可能となる。すなわち、生体内血中の酸化型／還元型アルブミン比を容易に求めることができれば、疾患の進行度や治療効果、健康状態を容易に判定することができる。 Ａｌｂ（ｒｅｄ）とＡｌｂ（ｏｘ）の比を求める方法には、いくつかの方法がある。一つ目は、アルブミンの定量法である色素結合法を応用したものである。色素結合法に使われる色素には、ブロムクレゾールグリーン（ＢＣＧ）とブロムクレゾールパープル（ＢＣＰ）の二種類が用いられている。ＢＣＰ法は、Ａｌｂ（ｒｅｄ）とＡｌｂ（ｏｘ）に対する反応性が異なるため、ＢＣＰ法とＢＣＧ法で求めたアルブミン定量値の差は、Ａｌｂ（ｏｘ）の存在比を反映していると考えられる。しかしながら、本方法は著しく定量性に乏しい。 また、エルマン試薬などの遊離ＳＨ基定量試薬を用いて、Ａｌｂ（ｒｅｄ）由来のＳＨ基を定量する方法もある（Ｓｏｇａｍｉ Ｍ， Ｉｎｔ． Ｐｅｐｔ． Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｒｅｓ．， ２４（２）， ９６−１０３， １９８４）。しかし、この方法は、アルブミン以外のＳＨ基を有する物質と区別することはできない。 現在最も優れた方法は、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）を用いる方法である（Ｓｏｇａｍｉ Ｍ．， Ｊ． Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒ．， ３３２， １９−２７， １９８５；特開昭６１−１５５３９７；特公平２−４８６３）。ＨＰＬＣによる血清アルブミンの分析では、還元型アルブミン（Ａｌｂ（ｒｅｄ））と酸化型アルブミン（Ａｌｂ（ｏｘ））とを分離して検出することができる。分離したクロマトグラム上におけるピーク面積比から、Ａｌｂ（ｒｅｄ）とＡｌｂ（ｏｘ）の総量に対するＡｌｂ（ｒｅｄ）量の比率（Ａｌｂ（ｒｅｄ）％＝Ａｌｂ（ｒｅｄ）のピーク面積／（Ａｌｂ（ｒｅｄ）のピーク面積＋Ａｌｂ（ｏｘ）のピーク面積）×１００）を求めることができる。 しかしながら、現状のＨＰＬＣ法にはいくつかの問題点がある。一つ目の問題点は、試料の安定性である。血漿中の還元型アルブミンは非常に不安定であり、−２０℃の保存状態であっても自然酸化により酸化型アルブミンが増加し、Ａｌｂ（ｒｅｄ）％値が低下してしまう。この反応は温度の上昇に比例している。従って、血漿の保存は少なくとも−７０℃以下でなくてはならないと言われている（村本良三， 医学の歩み， １９８（１３）， ９７２−９７６， ２００１）。ＨＰＬＣ法での測定では、−７０℃以下で保存した血漿を、融解後直ちにＨＰＬＣ測定に供さなくてはならない。二つ目の問題点は、Ａｌｂ（ｒｅｄ）とＡｌｂ（ｏｘ）の分離が不十分なことである。Ａｌｂ（ｒｅｄ）とＡｌｂ（ｏｘ）の構造上の差異は非常に小さいため、ＨＰＬＣでこれらを完全に分離することは非常に困難であり、クロマトグラム上でベースライン分離することができない（安川恵子， 臨床検査， ４４（８）， ９０７−９１０， ２０００）。三つ目の問題点は、酸化型アルブミンの構造情報が乏しいことである。Ａｌｂ（ｏｘ）は、アルブミンのＮ末端から３４残基目のシステインに、ジスルフィド結合により、システインやグルタチオンなどの含硫化合物が結合したものであるが、ＨＰＬＣ法で検出されるＡｌｂ（ｏｘ）がどのような構造であるかは、ＨＰＬＣ法では具体的に知ることができない。 上記二つ目と三つ目の問題点を解決する可能性のある方法として、質量分析計を用いたアルブミンの分析方法が最近報告された（安川恵子， 臨床検査， ４４（８）， ９０７−９１０， ２０００）。近年の質量分析法の進歩は目覚しく、分子量の大きなタンパク質でも精度良く、高い質量分解能で測定できるようになってきた。Ａｌｂ（ｏｘ）は、付加した化合物（例えばシステイン）の質量分、Ａｌｂ（ｒｅｄ）よりも重くなる。従って、十分な質量分解能を有する質量分析計で測定することにより、Ａｌｂ（ｒｅｄ）とＡｌｂ（ｏｘ）を分離して検出することが可能となる。上記文献において、安川らは、健常者と糖尿病患者のアルブミンをエレクトロスプレーイオン化法質量分析計（ＥＳＩ−ＭＳ）で測定し、Ａｌｂ（ｒｅｄ）とＡｌｂ（ｏｘ）の検出、さらには糖化アルブミンの検出を行っている。 しかしながら、上記一つ目の問題点はＥＳＩ−ＭＳ法においても依然同様に深刻な問題である。−７０℃以下でないと血漿中の酸化型アルブミンの割合は保存中に増加してしまうため、サンプルの保存管理が厳しい。また、凍結保存した血漿を溶解し、測定に至るまでに、酸化型アルブミンの割合は刻々と増加してしまうため、測定値の変動を引き起こしてしまう。従って、従来の方法では、−７０℃以下で保存した血漿を融解後、直ちにＨＰＬＣ測定あるいはＥＳＩ−ＭＳ測定に供しなくてはならない。測定までの時間や室温が、Ａｌｂ（ｒｅｄ）％値のバラつきを引き起こしてしまう。また、分析の精度を高めるための標準物質を安定に保存することもできないため、分析精度を管理することが極めて困難である。さらには、オートインジェクターを用いた自動分析や測定の自動化・省力化が困難である。このため、還元型アルブミンと酸化型アルブミンの存在比の測定は、未だ一般には普及しておらず、特定の研究機関でのみ実施されているのが現状である。さらに、現在用いられている血清アルブミン定量法は、主に色素結合法であるが、酸化型と還元型アルブミンの反応差があるために正確な定量ができないことが問題となっている（村本良三， 臨床検査， ４８（５）， ５３７−５４４， ２００４）。 また、標準試料は、分析全般において、分析の精度と確度を保証するために重要である。酸化型アルブミンは、システインやグルタチオンなどのチオール基を有する化合物と反応させることにより、試験管内で作成する方法が知られている（Ｇａｂａｌｄｏｎ Ｍ．， Ａｒｃｈ． Ｂｉｏｃｈｅｍ． Ｂｉｏｐｈｙｓ． ４３１， １７８−１８８， ２００４）。しかしながら、上記の通り、この反応は可逆的であることから、酸化型アルブミンが還元型アルブミンに容易に変換するという問題点を有している。このようなことから、精度の高い分析を行うために常に、酸化型と還元型アルブミン比が長期間一定である標準試料が望まれていた。 本発明者らは鋭意検討した結果、試料溶液のｐＨを特定範囲に調整し、好ましくは試料を特定範囲の割合で希釈した希釈溶液とするかあるいはアフィニティークロマトグラフィー又はゲルろ過クロマトグラフィーなどのクロマトグラフィー手段や限外ろ過などにより低分子物質を除去することによりアルブミンが安定化され、試料溶液中の還元型アルブミンの酸化を著しく抑制することができることを見出し、この安定化された溶液を直接、又は、ろ過後に質量分析にかけるか、あるいは液体クロマトグラフィーにかけることによって、従来の方法に比べてはるかに安定で分析精度の高いアルブミン測定を可能とし、本発明を完成するに至った。 本発明の要旨は以下のとおりである。〔１〕 試料溶液をｐＨ４〜９に調整して質量分析又は液体クロマトグラフィーに供することを特徴とする、試料中のアルブミンを分析する方法。〔２〕 ｐＨの調整が緩衝液によるものである、上記〔１〕に記載の方法。〔３〕 試料溶液が、試料を緩衝液によって５０〜１０００００倍に希釈したものである、上記〔１〕に記載の方法。〔４〕 試料溶液を０〜１００時間インキュベートした後に、ｐＨ調整し、希釈した試料溶液を質量分析又は液体クロマトグラフィーに供することを特徴とする、上記〔３〕に記載の方法。〔５〕 緩衝液が、リン酸緩衝液、トリス塩酸緩衝液、ホウ酸緩衝液、クエン酸緩衝液、酢酸緩衝液、炭酸緩衝液、ヘペス緩衝液及びコハク酸緩衝液からなる群から選ばれる少なくとも１種である、上記〔２〕〜〔４〕のいずれかに記載の方法。〔６〕 試料が被検体から採取した血液又は血漿である、上記〔１〕〜〔５〕のいずれかに記載の方法。〔７〕 インキュベート温度が４〜６０℃である、上記〔４〕に記載の方法。〔８〕 質量分析又は液体クロマトグラフィーの前に限外ろ過処理を行う、上記〔１〕〜〔７〕のいずれかに記載の方法。〔９〕 質量分析又は液体クロマトグラフィーの前にクロマトグラフィー精製を含む、上記〔１〕〜〔８〕のいずれかに記載の方法。〔１０〕 クロマトグラフィーが、高速液体クロマトグラフィー、逆相クロマトグラフィー、順相クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、ゲルろ過クロマトグラフィー及び疎水クロマトグラフィーからなる群から選ばれる少なくとも１種である、上記〔９〕に記載の方法。〔１１〕 質量分析が、エレクトロスプレーイオン化−飛行時間型質量分析計、四重極型質量分析計、イオントラップ型質量分析計、フーリエ変換イオンサイクロトロン型質量分析計、マトリックス支援レーザー脱離イオン化−飛行時間型質量分析計、磁場型質量分析計及びタンデム型四重極型質量分析計からなる群から選ばれる少なくとも１種の装置によって行われる、上記〔１〕〜〔１０〕のいずれかに記載の方法。〔１２〕 試料中の還元型アルブミンと酸化型アルブミンの存在量及び／又は還元型アルブミンと酸化型アルブミンの存在比を分析するものである、上記〔１〕〜〔１１〕のいずれかに記載の方法。〔１３〕 試料が、肝疾患、腎疾患、糖尿病、リウマチ、脳疾患、疲労、加齢、酸化ストレス、心疾患及び肺疾患からなる群から選択される少なくとも１種の状態にあるか該状態にあることが危惧される被検体から採取したものである、上記〔１２〕に記載の方法。〔１４〕 肝疾患、腎疾患、糖尿病、リウマチ、脳疾患、疲労、加齢、酸化ストレス、心疾患及び肺疾患からなる群から選択される少なくとも１種の状態にあるか該状態にあることが危惧される被検体から採取した血液又は血漿中の還元型アルブミンと酸化型アルブミンの存在量及び／又は還元型アルブミンと酸化型アルブミンの存在比を上記〔１〕〜〔１１〕のいずれかに記載の方法により分析することを含む、肝疾患、腎疾患、糖尿病、リウマチ、脳疾患、疲労、加齢、酸化ストレス、心疾患及び肺疾患からなる群から選択される少なくとも１種の状態にあるか該状態にあることが危惧される被検体から採取した血液又は血漿の分析方法。〔１５〕 被験物質投与時と非投与時のそれぞれにおける被検体試料中の還元型アルブミンと酸化型アルブミンの存在量及び／又は還元型アルブミンと酸化型アルブミンの存在比を上記〔１〕〜〔１１〕のいずれかに記載の方法により測定すること、 被験物質投与時に得られた該存在量及び／又は存在比と、被験物質非投与時に得られた該存在量及び／又は存在比とを比較すること、並びに 被験物質非投与時に比べ被験物質投与時の還元型アルブミンの存在量及び／又は存在比が大きくなったものを選択することを含む、被験物質のスクリーニング方法。〔１６〕 被験物質が抗酸化物質である、上記〔１５〕に記載の方法。〔１７〕 精製により低分子物質を除去し、ｐＨを調整することを含む、アルブミン定量分析の精度管理用の還元型又は酸化型アルブミン標準試料の作製方法。〔１８〕 アルブミン定量分析が、分析試料中に含まれる還元型アルブミンと酸化型アルブミンの存在量又は存在比の分析である、上記〔１７〕に記載の方法。〔１９〕 ｐＨを４〜９に調製する、上記〔１７〕又は〔１８〕に記載の方法。〔２０〕 ｐＨの調整が、リン酸緩衝液、トリス塩酸緩衝液、ホウ酸緩衝液、クエン酸緩衝液、酢酸緩衝液、炭酸緩衝液、ヘペス緩衝液及びコハク酸緩衝液からなる群から選ばれる少なくとも１種の緩衝液を用いて行われる、上記〔１７〕〜〔１９〕のいずれかに記載の方法。〔２１〕 精製が限外ろ過又はクロマトグラフィーによるものである、上記〔１７〕又は〔１８〕に記載の方法。〔２２〕 システイン又はホモシステインを付加させた後、限外ろ過又はクロマトグラフィー精製により低分子物質を除去し、ｐＨを調整することを含む、アルブミン定量分析の精度管理用の酸化型アルブミン標準試料の作製方法。〔２３〕 アルブミン定量分析が、分析試料中に含まれる還元型アルブミンと酸化型アルブミンの存在量又は存在比の分析である、上記〔２２〕に記載の方法。〔２４〕 ｐＨを４〜９に調製する、上記〔２２〕又は〔２３〕に記載の方法。〔２５〕 ｐＨの調整が、リン酸緩衝液、トリス塩酸緩衝液、ホウ酸緩衝液、クエン酸緩衝液、酢酸緩衝液、炭酸緩衝液、ヘペス緩衝液及びコハク酸緩衝液からなる群から選ばれる少なくとも１種の緩衝液を用いて行われる、上記〔２２〕〜〔２４〕のいずれかに記載の方法。〔２６〕 上記〔１７〕〜〔２１〕のいずれかに記載の方法によって得られた、アルブミン定量分析の精度管理用の還元型又は酸化型アルブミン標準試料。〔２７〕 上記〔２２〕〜〔２５〕のいずれかに記載の方法によって得られた、アルブミン定量分析の精度管理用の酸化型アルブミン標準試料。〔２８〕 Ｎ末端より３４番目の遊離システイン残基が修飾を受けていないアルブミンと、アルブミン以外のチオール化合物がＮ末端より３４番目の遊離システイン残基にジスルフィド結合を介して結合したアルブミンとを含む、分析試料中に含まれる還元型アルブミンと酸化型アルブミンの存在比の測定用標準試料。〔２９〕 チオール化合物が、システイン、ホモシステイン又はグルタチオンである、上記〔２８〕に記載の標準試料。〔３０〕 血液より調製されたアルブミンを用いて作製された、上記〔２８〕に記載の標準試料。〔３１〕 遺伝子組み換え技術により調製されたアルブミンを用いて作製された、上記〔２８〕に記載の標準試料。〔３２〕 ｐＨが４〜９に調整された、上記〔２８〕に記載の標準試料。〔３３〕 リン酸緩衝液、トリス塩酸緩衝液、ホウ酸緩衝液、クエン酸緩衝液、酢酸緩衝液、炭酸緩衝液、ヘペス緩衝液及びコハク酸緩衝液からなる群から選ばれる少なくとも１種の緩衝液に溶解された溶液である、上記〔２８〕に記載の標準試料。〔３４〕 Ｎ末端より３４番目の遊離システイン残基が修飾を受けていないアルブミン以外のチオール化合物が含まれていない、上記〔２８〕に記載の標準試料。 図１は、実施例１のＡｌｂ（ｒｅｄ）％値の算出法を示す図である。 図２は、ラット由来の試料溶液をｐＨ６に調整した場合のＡｌｂ（ｒｅｄ）％値の時間推移を示すグラフである（実施例１）。 図３は、ヒト由来の試料溶液を様々なｐＨに調整した場合のＡｌｂ（ｒｅｄ）％値の時間推移を示すグラフである（実施例１）。 図４は、ラット由来の試料溶液の希釈率が異なる場合のＡｌｂ（ｒｅｄ）％値の時間推移を示すグラフである（実施例１）。 図５は、ヒト由来の試料溶液の希釈率が異なる場合のＡｌｂ（ｒｅｄ）％値の時間推移を示すグラフである（実施例１）。 図６は、実施例２の結果を示すグラフである。 図７は、実施例３の結果を示すクロマトグラムである。 図８は、実施例４の結果を示すマススペクトルである。上から順に、糖尿病モデルマウスの血漿を凍結融解後３７℃で２時間インキュベートした場合に得られたデータ、糖尿病モデルマウスの血漿を凍結融解後インキュベートしない場合に得られたデータ、正常モデルマウスの血漿を凍結融解後３７℃で２時間インキュベートした場合に得られたデータ、正常モデルマウスの血漿を凍結融解後インキュベートしない場合に得られたデータを示している。Ａｌｂ−Ｃｙｓはシステイン付加酸化型アルブミン、Ａｌｂ−ＧＳＨはグルタチオン付加酸化型アルブミン、Ａｌｂ−ｇｌｃは糖化アルブミンのピークを示している。 図９は、実施例５の結果を示すグラフである。 図１０は、実施例６の結果を示すグラフである。 図１１は、実施例８の結果を示すグラフである。 図１２は、実施例９のＨＰＬＣ−ＥＳＩ−ＴＯＦＭＳ測定の結果を示すチャートである。 発明の詳細な説明 本発明のアルブミンの分析方法は、質量分析又は液体クロマトグラフィーに試料溶液を供する前に、試料溶液をｐＨ４〜９に調整することを特徴とする。ｐＨを５．８〜６．２に調整するのがさらに好ましい。試料溶液のｐＨが４より小さいか又は９より大きい場合には、試料溶液の作製中にも還元型アルブミンから酸化型アルブミンへの酸化が促進されてしまうため、アルブミンを安定に分析することが困難となる。 ｐＨの調整方法としては、例えば、緩衝液への溶解、弱酸溶液あるいは弱塩基溶液の添加などが挙げられる。 なかでも、後述する希釈を同時に行うことができることから緩衝液を用いてｐＨを調整するのが好ましい。用いられうる緩衝液としては、リン酸緩衝液、トリス塩酸緩衝液、ホウ酸緩衝液、クエン酸緩衝液、酢酸緩衝液、炭酸緩衝液、ヘペス塩酸緩衝液、コハク酸緩衝液などの慣用の緩衝液が挙げられるが、特にクエン酸緩衝液及びリン酸緩衝液が好ましい。 本発明は、特に、被検体から採取した血液又は血漿試料の分析に適している。 本発明においては、試料中の酸化還元バランスをモニターする際には、ｐＨ調整や希釈の前、さらには限外ろ過又はクロマトグラフィー処理する際にはその前に、血液又は血漿試料を、０〜１００時間、好ましくは２〜１２時間インキュベートし、還元型アルブミンの酸化反応を促進させることが好ましい。このインキュベートにより試料中の還元型アルブミンと酸化型アルブミンの存在量及び／又は存在比の差異がより明確になるため、試料中の酸化還元バランスをより簡便にモニターすることができる。 インキュベート温度としては、４〜６０℃、好ましくは２５〜４０℃が挙げられる。 試料を希釈溶媒によって５０〜１０００００倍に希釈したものを試料溶液として使用するのが好ましい。５０倍よりも希釈度が小さい場合には、低分子物質と還元型アルブミンの接触頻度が高いことから、還元型アルブミンから酸化型アルブミンへの変換率が高くなる。また、この場合に緩衝液を希釈液として用いた場合には、緩衝液のｐＨ緩衝能が失われてしまう。一方、１０００００倍よりも希釈度が大きい場合には、アルブミン濃度が装置の検出感度以下になりうるが、この場合には、希釈率を大きくしてもその分試料注入量を増大することで検出可能となる。 希釈溶媒としては、緩衝液、水、アセトニトリル、メタノール、ギ酸溶液などが挙げられるが、上述のように、ｐＨの調整も同時に行えることから緩衝液が好ましい。緩衝液としてはｐＨの調製で例示したものが挙げられるが、なかでも、リン酸緩衝液が特に好ましい。 アルブミンの酸化反応を抑制するためには、試料に含まれうる低分子物質を除去することが好ましい。 低分子物質を除去する手段としては、限外ろ過処理、あるいは、高速液体クロマトグラフィー、逆相クロマトグラフィー、順相クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、ゲルろ過クロマトグラフィー、疎水クロマトグラフィーなどのクロマトグラフィー精製が挙げられる。 なかでも、アルブミン吸着能の高いアフィニティーカラムを用いたアフィニティークロマトグラフィーによる精製が好ましい。試料をアフィニティーカラムに付し、試料中のアルブミンをカラム樹脂に吸着させる。リン酸緩衝液でアルブミンを保持させた条件でカラム内を洗浄し、低分子物質を除去する。洗浄終了後、塩濃度が高いリン酸緩衝液をアルブミン溶出溶液としてカラムに流すと、アルブミンは樹脂から剥離し、低分子物質が除去された試料が得られる。 ここで、低分子物質とは、分子量２０００以下、好ましくは１０００以下、より好ましくは５００以下の物質を意味する。そのような物質としては、例えば、上記分子量以下のアミノ酸、有機酸、糖類、脂肪酸、脂質、核酸、ヌクレオチド、ヌクレオシド、金属イオン、ステロイド化合物、ペプチドなどが挙げられ、より具体的にはシステイン、シスチン、ホモシステイン、ホモシスチン、還元型グルタチオン、酸化型グルタチオンが挙げられる。 限外ろ過を用いる場合は、ろ過フィルターの孔径は、通常、分子量カット１０００Ｄａ〜６００００Ｄａであり、１００００Ｄａ〜３００００Ｄａの孔径のフィルターを使用するのが好ましい。 低分子物質の除去は、通常、質量分析又は液体クロマトグラフィーの直前に実施するが、血液や血漿などの試料採取時に、ゲルを内封した採取具やｐＨ調整用希釈溶媒を内封した採取具を使用するなどして、前もって処理することも可能である。例えば、プラスミノーゲンアクティベーターアッセイ用のＢｉｏｐｏｏｌ社の採血管（米国特許第５１７５０８７号）は、クエン酸緩衝液を使用していることから、これを用いることにより、採血時にｐＨ調整ができ、アルブミンを安定化することができる。 また、アルブミン以外の夾雑成分によるピークの発生を防止するために、質量分析の前にクロマトグラフィー精製を行うか、ＬＣ−ＭＳを用いるのが好ましい。 クロマトグラフィーとしては、上述の低分子物質の除去で例示したものが挙げられるが、なかでも、ＬＣ−ＭＳとして質量分析との接続が容易な逆相高速液体クロマトグラフィーが好ましい。 血液や血漿中の還元型アルブミンは非常に不安定であるので、通常、試料溶液が血液（全血）である場合には、凍結により赤血球が破壊され赤血球中のヘモグロビンが測定に影響を及ぼすため凍結処理を行うのは好ましくない。従って、採血後直ちにｐＨ調整又は希釈を行い、好ましくはその後限外ろ過処理を行い、測定装置に付すのがよい。ｐＨ調整用希釈溶媒を内封した採取管などのｐＨが調製できる採血管を用いるのがさらに好ましい。また、試料溶液が血漿である場合には、採血後に血漿分離を行った後、液体窒素を用いた迅速凍結後、−７０℃以下にて冷凍保存してもよい。 上記ｐＨ調整、希釈、限外ろ過、クロマトグラフィーは、血漿試料を冷凍保存する前に行ってもよいし、保存前には行わず、冷凍保存されていた血漿試料を凍結融解した後に行ってもよい。冷凍保存の前、あるいは採血時に、ゲルを内封した採取具やｐＨ調整用希釈溶媒を内封した採取具を使用するなどして、前もって処理することも可能である。これにより、より高い保存温度でも安定に長期間保存できるようになる。 本発明で使用されうる質量分析装置としては、エレクトロスプレーイオン化−飛行時間型質量分析計（ＥＳＩ−ＴＯＦＭＳ）、四重極型質量分析計、イオントラップ型質量分析計、フーリエ変換イオンサイクロトロン型質量分析計、マトリックス支援レーザー脱離イオン化−飛行時間型質量分析計（ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦＭＳ）、磁場型質量分析計、タンデム型四重極型質量分析計などが挙げられる。なかでも、簡易性、質量高分解能、高感度の点から、ＥＳＩ−ＴＯＦＭＳが好ましい。 本発明のアルブミンの分析方法によれば、試料溶液中の還元型アルブミンと酸化型アルブミンの存在量及び／又は還元型アルブミンと酸化型アルブミンの存在比、糖化アルブミンの存否、数種類存在する酸化型アルブミンの同定などの分析を行うことができる。 本発明において、還元型アルブミンとは、Ｎ末端より３４番目の遊離システイン残基が修飾を受けていないアルブミンを意味する。 本発明において、酸化型アルブミンとは、Ｎ末端より３４番目の遊離システイン残基にアルブミン以外の生体内のチオール化合物がジスルフィド結合を介して結合したアルブミンを意味する。 肝疾患、腎疾患、糖尿病、リウマチ、脳疾患、疲労、加齢、酸化ストレス、心疾患及び肺疾患からなる群から選択される少なくとも１種の状態にあるか該状態にあることが危惧される被検体から採取した血液又は血漿中の還元型アルブミンと酸化型アルブミンの存在量及び／又は還元型アルブミンと酸化型アルブミンの存在比を本発明のアルブミンの分析方法により分析することにより、肝疾患、腎疾患、糖尿病、リウマチ、脳疾患、疲労、加齢、酸化ストレス、心疾患及び肺疾患からなる群から選択される状態に被検体があるかどうかを判定することもできる。 血液又は血漿試料を採取しうる被検体としては、哺乳動物（例えば、マウス、ラット、ハムスター、ウサギ、ネコ、イヌ、ウシ、ヒツジ、サル、ヒトなど）が挙げられる。 肝疾患、腎疾患、糖尿病、リウマチ、脳疾患、疲労、加齢、酸化ストレス、心疾患、肺疾患などの状態は、酸化ストレスを生じることが公知の状態であり、被検体の酸化還元バランスに乱れを生じさせる疾患である。すなわち、被検体はこれらの状態になると被検体中の酸化型アルブミンと還元型アルブミンの総量に対する酸化型アルブミンの割合が大きくなる。従って、この状態を分析することにより、被検体がこれらの状態になっていないかどうかの判定をすることができる。 肝疾患としては、例えば、Ｃ型肝炎、Ｂ型肝炎、肝硬変、肝性悩症、原発性胆汁性肝硬変、肝癌などが挙げられる。 腎疾患としては、例えば、腎不全、糸球体腎炎、ネフローゼ症候群、腎盂腎炎、痛風腎が挙げられる。 脳疾患としては、例えば、脳卒中、脳梗塞、肝性脳症、クモ膜下出血などが挙げられる。 心疾患としては、例えば、狭心症、心筋梗塞、不整脈、先天性心疾患などが挙げられる。 肺疾患としては、例えば、肺炎、肺気腫、ぜんそく、気管支炎などが挙げられる。 本発明のアルブミンの分析方法を用いれば、還元型アルブミンと酸化型アルブミンの存在量及び／又は還元型アルブミンと酸化型アルブミンの存在比を指標とした、被験物質のスクリーニングも可能である。該スクリーニングは、被験物質投与時と非投与時の被検体内の還元型アルブミンと酸化型アルブミンの存在量及び／又は還元型アルブミンと酸化型アルブミンの存在比を本発明のアルブミンの分析方法により測定すること；被験物質投与時に得られた該存在量及び／又は存在比と、被験物質非投与時に得られた該存在量及び／又は存在比とを比較すること；及び、被験物質非投与時に比べ被験物質投与時の還元型アルブミンの存在量及び／又は存在比が大きくなったものを選択することを含む。 被験物質としては、抗酸化物質、アルブミンと結合性の物質など、各種薬物や健康素材などが挙げられる。ここでいう健康素材とは、健康維持・向上に効果がある食品素材及びこれを含む食品を意味する。薬物としては、肝疾患、腎疾患（特に、ネフローゼ症候群）、糖尿病、心疾患、老化の予防・治療薬などが挙げられる。また、健康素材としては、抗酸化物質、ビタミン、アミノ酸、ミネラル、炭水化物、脂肪酸、酵素などの栄養源／栄養補助剤などが挙げられる。 被験物質非投与時に比べ、被験物質投与時に、還元型アルブミンの存在量が０．１ｍｇ／ｍＬ程度、好ましくは０．２ｍｇ／ｍＬ程度大きくなったものが、薬物及び健康素材として有用な候補物質となりうる。また、存在比の場合には、被験物質非投与時に比べ、被験物質投与後に、全アルブミン中に占める還元型アルブミンの存在比が投与前と比較して２％以上、好ましくは３％以上、より好ましくは５％以上、増加したものが、薬剤及び健康素材として有用な候補物質となりうる。 本発明のアルブミンの分析方法で用いている試料溶液の前処理方法は、ｐＨ調整と、好ましくは希釈及び／又は限外ろ過やクロマトグラフィーによる低分子物質の除去により、血液や血漿中のアルブミンの酸化反応を著しく抑制することができる。これにより、試料溶液の保存管理及び輸送管理が著しく容易になる。また、本前処理方法を利用した本発明のアルブミンの分析方法は、従来のＨＰＬＣ法よりも、アルブミン自然酸化による測定結果への影響を極力抑えて、安定したＡｌｂ（ｒｅｄ）％値が得られる。さらに、本発明のアルブミンの分析方法を用いれば、従来の血清アルブミン定量法とは異なり、正確なアルブミンの定量が実現できる。 本発明においては、質量分析又は液体クロマトグラフィーを分析手法として用いるが、特に、ＬＣ−ＭＳによる分析が、感度、分離能及び検出法の点でより効果的である。質量分析を用いる場合には、１回の測定に消費される試料が従来のＨＰＬＣ法では１０μＬであるのに対して、最小０．２ｎＬ程度の試料から測定が可能である。また、液体クロマトグラフィーに比べて質量分析の方が一般的に高感度であるため、試料溶液の十分な希釈が可能となり、ｐＨが特定範囲に設定しやすい上、希釈率を高くできるなど、試料溶液中でＡｌｂ（ｒｅｄ）と反応し得る化合物との接触を軽減できる。ここで、分離能とはＡｌｂ（ｒｅｄ）とＡｌｂ（ｏｘ）の分離能であるが、質量分析を用いた場合には、液体クロマトグラフィーを用いた場合よりも分離能が高いこともあり、Ａｌｂ（ｒｅｄ）とＡｌｂ（ｏｘ）に関してベースライン分離が達成できる。さらに、質量分析を用いた場合には、ｍ／ｚ値によって検出されるため、得られたマススペクトル上のピークからＡｌｂ（ｒｅｄ）％値に加えて、必要に応じ、構造情報を得ることができる。 アルブミンは非常に不安定で、インキュベーション時間に伴い、自然酸化により酸化型アルブミンが増加する。実際に、血漿を一定時間インキュベートした後に、ｐＨ調整、希釈した試料溶液を質量分析又は液体クロマトグラフィーに供した場合、Ａｌｂ（ｒｅｄ）％は試料に応じて変化速度が異なる。すなわちアルブミンが血漿中の酸化還元状態を反映するプローブの役割を担うことを示す。 一方、創薬手法のアプローチのひとつに、大規模なコンビナトリアル合成を中心とする探索研究がある。本発明の方法は、非常に簡便であること、測定時間が１検体あたり３５分という迅速測定であること、試料を凍結融解後すぐに分析に供さなくてもよいためオートインジェクターによる自動分析が可能であることから、薬物効果のスクリーニングを簡便にかつ迅速に行うことができる。 本発明はさらに、精製により低分子物質を除去し、ｐＨを調整することを含む、アルブミン定量分析の精度管理用の還元型又は酸化型アルブミン標準試料の作製方法を提供する。 本発明において、アルブミン標準試料とは、還元型アルブミンと酸化型アルブミンの存在比が安定なアルブミン溶液を意味する。アルブミン標準試料のうち、溶液中に、酸化型アルブミンに対して還元型アルブミンが多く存在するもの（還元型アルブミンと酸化型アルブミンを合わせた全体の好ましくは５０％超、より好ましくは７０％以上が還元型アルブミンであるもの）を還元型アルブミン標準試料といい、還元型アルブミンに対して酸化型アルブミンが多く存在するもの（還元型アルブミンと酸化型アルブミンを合わせた全体の好ましくは５０％超、より好ましくは７０％以上が酸化型アルブミンであるもの）を酸化型アルブミン標準試料という。 本発明はまた、システイン、ホモシステイン又はグルタチオンを付加させた後、限外ろ過又はクロマトグラフィー精製により低分子物質を除去し、ｐＨを調整することを含む、アルブミン定量分析の精度管理用の酸化型アルブミン標準試料の作製方法を提供する。 これらのアルブミン標準試料の作製方法を用いて得られた安定なアルブミン標準試料も本発明の範囲に包含される。特に、上記アルブミン標準試料はＡｌｂ（ｒｅｄ）％の測定における精度を管理するのに適している。 ｐＨの調整や低分子物質の除去に関しては、本発明のアルブミンの分析方法に関して上述したとおりである。 本発明はまた、Ｎ末端より３４番目の遊離システイン残基が修飾を受けていないアルブミン（還元型アルブミン）と、アルブミン以外のチオール化合物がＮ末端より３４番目の遊離システイン残基にジスルフィド結合を介して結合した酸化型アルブミンとを含む、分析試料中に含まれる還元型アルブミンと酸化型アルブミンの存在比の測定用標準試料を提供する。ここで、アルブミン以外のチオール化合物の具体例としては、システイン、ホモシステイン及びグルタチオンが挙げられる。 上記標準試料は、血液より調製されるか、又は、遺伝子組み換え技術により調製されたアルブミンを用いて作製することが好ましい。 血液からアルブミンを調製する方法は、特に限定されず、血液からアルブミンを調製するのに当該分野で通常使用されている方法を適宜用いることができるが、例えば、採血した試料をクロマトグラフィーに供し、アルブミンを分離・精製する方法が挙げられる。この場合、標準試料の溶液中のアルブミン（還元型アルブミン＋酸化型アルブミン）濃度は、０．１〜５０ｍｇ／ｍｌが好ましい。 遺伝子組み換え技術によりアルブミンを調製する方法も、特に限定されず、遺伝子組み換えによりアルブミンを調製するのに当該分野で通常使用されている方法を適宜用いることができる。酵母を発現系として産生した遺伝子組み換えヒト血清アルブミンが報告されており（Ｆｌｅｅｒ Ｒ． ｅｔ ａｌ， Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ （ＮＹ）． １９９１ Ｏｃｔ；９（１０）：９６８−７５）、例えば、この文献に記載の方法を用いることができる。 上記標準試料のｐＨは、還元型及び酸化型アルブミンの安定性の点から、４〜９に調整することが好ましい。 上記標準試料が、リン酸緩衝液、トリス塩酸緩衝液、ホウ酸緩衝液、クエン酸緩衝液、酢酸緩衝液、炭酸緩衝液、ヘペス緩衝液及びコハク酸緩衝液からなる群から選ばれる少なくとも１種の緩衝液に溶解された溶液であることが好ましい。 さらに、上記標準試料には、還元型アルブミン以外のチオール化合物が含まれていないことが好ましい。 本発明によれば、試料溶液中の還元型アルブミンと酸化型アルブミンの存在量及び／又は存在比を簡便に精度よく測定することができるので、被検体の酸化還元バランスをモニターすることができる。これにより、酸化ストレス状態や、酸化型アルブミンが増加する肝疾患、腎疾患、糖尿病、リウマチ、脳疾患、疲労、加齢、心疾患、肺疾患などの状態に被検体がなっていないかどうかの判定が可能である。また、本発明によれば、肝疾患、腎疾患、糖尿病、リウマチ、脳疾患、疲労、加齢、酸化ストレス、心疾患、肺疾患などの状態の予防・治療用の薬物のスクリーニングを行うことができる。健康素材となる抗酸化物質のスクリーニングも可能である。さらに、薬物投与時の酸化ストレス状態をモニターすることにより、既存又は新規の薬物の適用疾患の探索も可能である。 以下、実施例を用いて本発明をより詳細に説明するが、これらの実施例は本発明を何ら限定するものではない。 ラット血漿試料は以下のように作製した。吸入麻酔剤としてジエチルエーテルを用いてラットを麻酔状態にし、採血を行った。得られた血液は直ちに、遠心処理によって血漿分離した。次いで、血漿画分を別容器に移し、液体窒素で血漿を凍結し、使用時まで−８０℃で凍結保存した。 −８０℃に凍結保存した上記正常ラット血漿試料を氷浴上で融解後、５０ｍＭ ＮａＨ２ＰＯ４／Ｎａ２ＨＰＯ４（ｐＨ６．０）を用いて試料を１００倍希釈した。次いで、ＨＰＬＣ−ＥＳＩ−ＴＯＦＭＳで分析を行った。 ヒト血漿試料は以下のように作製した。ヒト被検体からヘパリン入り真空採血管に採血し、ポリプロピレン製遠心用チューブに移した。これを４℃、３０００ｒｐｍ、２０分間遠心処理し、上清画分を血漿成分とした。 ＨＰＬＣ−ＥＳＩ−ＴＯＦＭＳは、高速液体クロマトグラフィー装置（ＨＰＬＣ：Ｕｌｔｉｍａｔｅ Ｐｌｕｓ Ｃａｐｉｌｌａｒｙ／Ｎａｎｏ ＬＣ Ｓｙｓｔｅｍ、Ｄｉｏｎｅｘ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ、ＵＳＡ）とエレクトロイオンスプレー式−飛行時間型質量分析計（ＥＳＩ−ＴＯＦＭＳ：ｍｉｃｒｏＴＯＦＴＭ、ＢＲＵＫＥＲ Ｄａｌｔｏｎｉｃｓ Ｉｎｃ．、ＵＳＡ）を連結したシステムで行った。ＨＰＬＣ装置は、マイクロオートインジェクター（ＦＡＭＯＳ）とスプリット方式マイクロ流量ポンプ（Ｕｌｔｉｍａｔｅ）及びスイッチングバルブ搭載ポンプ（Ｓｗｉｔｃｈｏｓ）の３つのモジュールから構成される。 試料中のアルブミンの分離・濃縮は、トラップカラム（ＭｏｎｏＣａｐ濃縮カラム：ＧＬ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｉｎｃ．，内径０．２ｍｍ、長さ１５０ｍｍ）と分離カラム（ＭｏｎｏＣａｐ ｆｏｒ Ｆａｓｔ−ｆｌｏｗ：内径０．２ｍｍ、長さ５０ｍｍ）を用いて行った。 ＨＰＬＣ用溶離液は、アセトニトリル／水（Ｍｉｌｌｉ−Ｑ）（２５：７５ ｖ／ｖ）混合液１Ｌにギ酸を１ｍＬ加えたものを（Ａ）液、アセトニトリル／水（Ｍｉｌｌｉ−Ｑ）（９０：１０ ｖ／ｖ）混合液１Ｌにギ酸を１ｍＬ加えたものを（Ｂ）液とした。オートインジェクターのサンプルトレイは４℃に設定し、サンプルバイアルは常に冷却される状態にした。 トラップカラムは（Ａ）液を流速０．０５ｍＬ／ｍｉｎ、分離カラムは（Ｂ）液を流速１５μＬ／ｍｉｎ（ポンプ設定流速０．１２５ｍＬ／ｍｉｎ、スプリット流路により実流速１５μＬ／ｍｉｎ）送液することで、それぞれ平衡化した。 上記希釈及びろ過処理をした溶液をバイアルに移し、サンプルトレイにセットした後、測定を開始した。試料注入量は２μＬとし、測定開始０分から１０分までは、Ｓｗｉｃｈｏｓから（Ａ）液を０．０５ｍＬ／ｍｉｎで送液した。この間、試料中の塩や夾雑成分はトラップカラムを素通りし、アルブミンはトラップカラムに吸着されることで、脱塩・濃縮が達成された。測定開始１０分から１５分までは、スイッチングバルブにより流路を切替えてトラップカラムと分離カラムが連結される流路とした。このときＵｌｔｉｍａｔｅから（Ｂ）液を流速１５μＬ／ｍｉｎ送液することで、トラップカラムに吸着されたアルブミンは分離カラムに移行し、分離カラムに保持された。測定開始１５分から３５分までは、再び流路を切替えてトラップカラムと分離カラムを別流路とした。この間、Ｕｌｔｉｍａｔｅから（Ｂ）液が流速１５μＬ／ｍｉｎで送液され、アルブミンを含む他の夾雑成分を粗分離した。一方、測定開始１５分から２５分まではＳｗｉｔｃｈｏｓから（Ｂ）液を流速０．０７μＬ／ｍｉｎ送液することで、トラップカラムに保持された残存試料を溶出した。測定開始２５分から３５分までは、Ｓｗｉｔｃｈｏｓから（Ａ）液を流速０．０７μＬ／ｍｉｎ送液することで、トラップカラムを（Ａ）液で初期化した。 分離カラムから溶出したアルブミンは、高速液体クロマトグラフィーと質量分析装置のインターフェースとなるエレクトロスプレーイオンソース部でイオン化後、質量分析装置によって検出した。全てのマススペクトルはイオン化及びイオン検出パラメーターを最適化したメソッドを適用した。質量分析装置の検出質量範囲はｍ／ｚ ５０〜３０００とし、ポジティブイオンに多価帯電したアルブミンを検出した。イオン化パラメーター条件は下記の値を設定した。Ｅｎｄ Ｐｌａｔｅ Ｏｆｆｓｅｔ：−５００Ｖ、Ｃａｐｉｌｌａｒｙ：−５０００Ｖ、Ｎｅｂｌｉｚｅｒ Ｇａｓ：０．４Ｂａｒ、Ｄｒｙ Ｇａｓ：５．０Ｌ／ｍｉｎ、Ｄｒｙ Ｔｅｍｐ：２００℃。 質量分析計制御ソフトウェア：ｍｉｃｒｏＴＯＦ Ｃｏｎｔｒｏｌによりイオン化したアルブミンを検出した。最適化した条件は、Ｃａｐｉｌｌａｒｙ Ｅｘｉｔ：１５０乃至２５０Ｖ、Ｓｋｉｍｍｅｒ １：５０乃至１００Ｖ、Ｈｅｘａｐｏｌｅ １：２４乃至３６Ｖ、Ｓｋｉｍｍｅｒ ２：２５乃至３５Ｖ、Ｈｅｘａｐｏｌｅ ２：１８乃至２４Ｖ、Ｈｅｘａｐｏｌｅ ＲＦ：５００乃至８００Ｖ、Ｔｒａｎｓｆｅｒ Ｔｉｍｅ：３０乃至５０μｓ、Ｐｒｅ Ｐｕｌｓ Ｓｔｏｒａｇｅ：２０乃至４０μｓ、Ｌｅｎｓ １ Ｓｔｏｒａｇｅ：３０乃至６０Ｖ、Ｌｅｎｓ １ Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ：１８乃至２４Ｖ、Ｌｅｎｓ ２：−１５乃至＋１５Ｖ、Ｌｅｎｓ ３：−７０乃至−１０Ｖ、Ｌｅｎｓ ４：−１５乃至＋１５Ｖ、Ｌｅｎｓ ５：−６０乃至＋２０Ｖ、Ｄｅｔｅｃｔｏｒ：１４００乃至１６００Ｖ、Ｒｏｌｌｉｎｇ Ａｖｅｒａｇｅ：３、Ｓｕｍｍａｔｉｏｎ：２００００、Ｐｕｌｓｅｒ Ｐｕｓｈ／Ｐｕｌｌ：３８０乃至４００Ｖ、Ｃｏｒｒｅｃｔｏｒ Ｆｉｌｌ：４０乃至５０Ｖ、Ｃｏｒｒｅｃｔｏｒ Ｅｘｔｒａｃｔ：８００乃至１０００Ｖ、Ｆｌｉｇｈｔ Ｔｕｂｅ：９０００Ｖ、Ｒｅｆｌｅｃｔｏｒ：１３００Ｖ、ＴＯＦ Ｄｅｔｅｃｔｏｒ：１８００乃至２０００Ｖとした。 データ解析は質量分析計データ解析ソフトウェアｍｉｃｒｏＴＯＦ Ｄａｔａａｎａｌｙｓｉｓを用いた。エレクトロスプレーイオン化法によりイオン化されたアルブミンは多価イオンを形成し、複数のピークとして検出された（図１（１））。マススペクトルはスムージング処理（Ｇａｕｓｓアルゴリズム：ｍ／ｚ幅＝０．１、Ｃｙｃｌｅ＝１）、ベースライン処理を行った後、Ｄｅｃｏｎｖｏｌｕｔｉｏｎ機能から同じ価数を示すピークを決定した。同価数を示すピークは各々２つ検出され、ｍ／ｚの小さいものをＡｌｂ（ｒｅｄ）、大きいものをＡｌｂ（ｏｘ）とみなした（図１（２））。ｍ／ｚ １２２０乃至１４１０の範囲に検出されるピークは４６価乃至５３価に多価チャージしたアルブミンに由来する。各価数のピーク強度（高さ）から、Ａｌｂ（ｒｅｄ）％＝｛Ａｌｂ（ｒｅｄ）のピーク強度（高さ）／（Ａｌｂ（ｒｅｄ）ピーク強度（高さ）＋Ａｌｂ（ｏｘ）のピーク強度（高さ））｝×１００を求め、平均値を算出した。 試料中では自然酸化反応によってＡｌｂ（ｒｅｄ）が占める割合は減少するためＡｌｂ（ｒｅｄ）％値は時間とともに減少する傾向がある。そこで、緩衝液を用いて血漿試料を１００倍に希釈・ろ過し、試料のｐＨ制御を行った。 ラット血漿については、５０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ６．０）を希釈溶液に用いた場合、若干減少傾向はあるものの、処理後２４時間でも安定したＡｌｂ（ｒｅｄ）％値が得られた（図２）。 また、ヒト血漿についてｐＨ範囲を拡大してＡｌｂ（ｒｅｄ）の安定性試験を行った。希釈用緩衝液は、５０ｍＭ 酢酸緩衝液（ｐＨ３．０、ｐＨ４．０及びｐＨ５．０）、５０ｍＭ リン酸緩衝液（ｐＨ６．０、ｐＨ７．０及びｐＨ８．０）、０．１Ｍ 炭酸緩衝液（ｐＨ９．０及びｐＨ１０．０）を用いた。酸性側のｐＨ適用範囲を確認した結果、ｐＨ３．０ではマススペクトル上でアルブミン由来のシグナルが観測されなかったが、ｐＨ４．０からｐＨ７．０の範囲では、サンプルトレイ上での放置後４８時間経過しても安定したＡｌｂ（ｒｅｄ）％値が得られた（図３（１））。同様にアルカリ性側の適用範囲を確認した結果、ｐＨ６．０からｐＨ９．０の範囲ではサンプルトレイ上での放置後２４時間経過しても安定したＡｌｂ（ｒｅｄ）％値が得られた。しかし、ｐＨ１０．０では放置時間の経過とともにＡｌｂ（ｒｅｄ）％値の増加傾向が確認された（図３（２））。このようにヒト血漿はｐＨ４．０乃至ｐＨ９．０の希釈用緩衝液を適用することにより安定したＡｌｂ（ｒｅｄ）％測定が可能である。 このように、本発明の方法により処理した試料溶液は、サンプルトレイ上に２４時間放置してもＡｌｂ（ｒｅｄ）％値が安定であるため、オートインジェクターによる測定の自動化が可能となる。 また、５０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ６．０）により、希釈率を１０倍、２０倍、５０倍、１００倍と変化させた場合の希釈率がＡｌｂ（ｒｅｄ）％に与える影響も検討した。 ラット血漿の場合、希釈率１００倍処理したところ、希釈・ろ過処理後２４時間経過後にも安定したＡｌｂ（ｒｅｄ）％値が得られた。しかしながら、希釈率１０倍、２０倍及び５０倍の場合には、サンプルトレイ上の放置２時間でＡｌｂ（ｒｅｄ）％値に減少が確認され、傾向は時間経過とともに進行した（図４）。 ヒト血漿の場合、希釈率５０倍又は１００倍処理したところ、希釈・ろ過処理後２４時間経過後にも安定したＡｌｂ（ｒｅｄ）％値が得られた。しかしながら、希釈率１０倍又は２０倍の場合には、サンプルトレイ上での放置後３時間でＡｌｂ（ｒｅｄ）％値に減少が確認され、その後さらに低下し、６時間以降はほぼ一定値となった（図５） 四塩化炭素反復投与による肝疾患モデルラットの血漿サンプルの測定を行った。 ＳＤ系ラットに週２回、四塩化炭素（ＣＣｌ４）とオリーブオイルを当量混合したものを１ｍＬ／ｋｇ皮下投与し、肝疾患を誘発させたモデルラットを作成した。ＣＣｌ４投与開始より、１ヶ月おきにエーテル麻酔下、鎖骨下大静脈より１ｍＬ採血した。同時にコントロール群として正常ラットの採血を行った。採血した血液は、直ちに氷浴し、１時間以内に遠心分離することにより血漿分離を行った。分離した血漿は、直ちに液体窒素で凍結し、−８０℃で保存した。保存した試料は測定前に融解し、下記（１）又は（２）の処理を施し、正常ラット及び肝疾患モデルラット（ＣＣｌ４投与開始後２２週）の血漿サンプルについてそれぞれのＡｌｂ（ｒｅｄ）％値を求めた。（１）凍結融解後、直ちに５０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ６．０）により１００倍希釈した。次いで、その溶液をバイアルに移し設定温度４℃のオートサンプラーにセットし、ＨＰＬＣ−ＥＳＩ−ＴＯＦＭＳで分析した。（２）凍結融解後、血漿を３７℃、２時間インキュベーションした。インキュベーション終了後は、（１）の凍結融解後に行った処理と同様の処理を行った。 ＨＰＬＣ−ＥＳＩ−ＴＯＦＭＳとＡｌｂ（ｒｅｄ）％値の算出は実施例１と同様に行った。 処理（１）の場合、Ａｌｂ（ｒｅｄ）％値はそれぞれ正常ラット（８０．８±１．１）、肝疾患モデルラット（８２．８±２．３）を示した。一方、処理（２）の場合、Ａｌｂ（ｒｅｄ）％値はそれぞれ正常ラット（６５．２±３．７）、肝疾患モデルラット（５４．２±５．６）を示した（表１及び図６）。 処理（１）の場合には正常群−肝疾患モデル群の間に有意差は認められなかったが、処理（２）を行うことで、正常ラット群と肝疾患モデルラット群の間に有意差が生じ（ｐ＜０．０５）、Ａｌｂ（ｒｅｄ）％により肝疾患の病態を簡便にモニターできた。 これまでの実施例では、Ａｌｂ（ｒｅｄ）％を液体クロマトグラフィー−質量分析装置（ＬＣ−ＥＳＩ−ＴＯＦＭＳ）によって分析してきたが、本実施例では分析装置として高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）装置のみを用いた。 高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）装置は、ＡＫＴＡｅｘｐｌｏｒｅｒ １０Ｓ（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ（ｆｏｒｍｅｒｌｙ Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ ＡＢ）， Ｓｗｅｄｅｎ）システムを用いた。ＨＰＬＣ用溶離液は、０．１５Ｍ 硫酸ナトリウムを含む３０ｍＭ リン酸緩衝液（ｐＨ６．８５）を流速０．８ｍＬ／ｍｉｎで使用した。分離カラムはＳｈｏｄｅｘ Ａｓａｈｉｐａｋ ＧＳ−５２０ ７Ｅを用いた。測定シグナルはＵＶ検出（検出波長２８０ｎｍ）でモニターした。 −８０℃に凍結保存した正常ラット血漿試料を氷浴上で融解後、５０ｍＭ リン酸緩衝液（ｐＨ６．０）を用いて試料を５倍希釈した。５倍希釈した試料を、直ちにＨＰＬＣ装置に付した場合と、室温で２時間のプレインキュベーション処理を行った場合について分析を行った。その結果、クロマトグラム上で１０．５分付近に還元型アルブミン由来のピークが観測された。プレインキュベーション処理の前後でもクロマトグラムパターンの変化がみられないことから、ラット血漿中のアルブミンはｐＨ６．０の緩衝液を用いることで安定していることが確認された（図７）。 ＫＫ−Ａｙマウスは、肥満遺伝子Ａｙが導入され、ＫＫマウスより早期かつ重度に肥満・高血糖を発現する＜２型糖尿病モデル＞として改良されてきた。ＫＫ−Ａｙマウスは、ＫＫマウスにＡｙ遺伝子を導入した＜合併モデル＞で、ＫＫマウスより早期（７〜８週齢）かつ重度な肥満・高血糖を発現する特徴を持つ。本マウス（日本クレア株式会社）を、遺伝性自然発症糖尿病モデルマウスとして用い、血漿サンプルの測定を行った。正常マウス又は糖尿病モデルマウスから採血した血液を、直ちに氷浴し、１時間以内に遠心分離することにより、血漿サンプルを得た。血漿サンプルは、直ちに液体窒素で凍結し、−８０℃で保存した。保存した試料は、下記（１）又は（２）の処理を施し、正常マウス及び糖尿病マウスの血漿サンプルについてそれぞれのＡｌｂ（ｒｅｄ）％値を求めた。（１）凍結融解後、直ちに５０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ６．０）により１００倍希釈した。次いで、その溶液をバイアルに移し設定温度４℃のオートサンプラーにセットし、ＨＰＬＣ−ＥＳＩ−ＴＯＦＭＳで分析した。（２）凍結融解後、血漿を３７℃、２時間インキュベーションした。インキュベーション終了後は、（１）の凍結融解後に行った処理と同様の処理を行った。 ＨＰＬＣ−ＥＳＩ−ＴＯＦＭＳとＡｌｂ（ｒｅｄ）％値の算出は実施例１と同様に行った。 処理（１）の場合、Ａｌｂ（ｒｅｄ）％はそれぞれ、正常マウス（８０．３％）、糖尿病モデルマウス（８０．１％）を示した。一方、処理（２）の場合、Ａｌｂ（ｒｅｄ）％値はそれぞれ、正常マウス（７２．４±０．８）、糖尿病モデルマウス（６８．９±１．７）を示した。このように、プレインキュベーション処理によりサンプル間のＡｌｂ（ｒｅｄ）％の差が顕著になった。 また、還元型アルブミン及び酸化型アルブミンに加えて、糖化アルブミンのピークが確認された（図８）。全アルブミン中に糖化アルブミンが占める割合は、正常マウスが９．９％、糖尿病マウスが１３．９％であり、糖尿病マウスにより多くの糖化アルブミンが認められた。 野生型ラット（Ｓｐａｒａｇｕｅ−Ｄａｗｌｅｙ系又はＦ３４４系ラット、雄、日本クレア株式会社）の血漿を、５０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ６．０）を用いて希釈した。この溶液を０．４５μｍ孔径のろ過処理後、５０ｍＭ リン酸緩衝液により平衡状態に達したアフィニティークロマトグラフィーＢｌｕｅ ＨＰカラムに付した。血漿中のアルブミンはカラム樹脂に保持され、その他夾雑成分はカラムを素通りあるいは洗浄除去される。最後に１．５Ｍ 塩化カリウムを含んだ５０ｍＭ リン酸緩衝液（ｐＨ６．０）を用いてカラムに吸着したアルブミンを溶出させた。次いで、３７℃でインキュベーション処理を２時間行った。このときのＡｌｂ（ｒｅｄ）％変化を実施例１と同様にして測定し、Ｂｌｕｅ ＨＰカラム処理試料と未処理試料との間で比較した（図９）。その結果、Ｂｌｕｅ ＨＰカラム処理をした試料の方がＡｌｂ（ｒｅｄ）％の変化が小さいことが示された。このように、アフィニティークロマトグラフィーを用いることで試料中の夾雑成分が除去されるため、Ａｌｂ（ｒｅｄ）の安定化を達成できた。 これまでのデータは、血漿分離後の安定性に関するデータであったが、本実施例はより臨床検査に適した状況として、採血した血液中のＡｌｂ（ｒｅｄ）の安定性を調べた。〈サンプル処理〉 健常人より血液（Ｎ＝３）を採取し、１）ヘパリンを添加、２）０．５Ｍ クエン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ４．３）を血液の１／９量添加、３）７５ｍＭ リン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ６）を血液の９倍量添加、のいずれかの方法で処理を行い、冷蔵（４℃）保管した。 処理直後、３、６、２４、３０、４８時間後に、各処理血液から一定量を分取し、遠心分離して血漿成分を得た。血漿は、採取直後に液体窒素で凍結し、測定まで、冷凍庫（−８０℃）で保管した。〈測定方法〉 処理血液１）、２）については、希釈液（５０ｍＭ リン酸ナトリウム緩衝液、ｐＨ６．０）にて１００倍、処理血液３）については、同希釈液にて１０倍希釈した後、実施例１記載のＨＰＬＣ−ＥＳＩ−ＴＯＦＭＳに従って、酸化型アルブミン比率及び還元型アルブミン比率を算出した。〈測定結果〉 還元型アルブミン比率（Ａｌｂ（ｒｅｄ）％）の残存率を算出したところ、処理血液１）については、保管時間の経過と共に残存率が低下し、４８時間後で９５％となった。一方、処理血液２）、３）については、保管４８時間後の残存率は１００〜１０１％であり、変動が見られなかった（図１０）。従って、ｐＨ調整又は希釈により、還元型アルブミン比率の変動を抑制できることがわかった。 ＨＰＬＣ法にて、実施例６と同様に採血から測定までの試料中の還元型アルブミンの安定性を確認した。〈サンプル処理〉 健常人より血液（Ｎ＝５、試料１〜５）を採取し、０．５Ｍ クエン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ４．３）を採取した血液の１／１０量添加して冷蔵（４℃）保管した。 処理直後、２４、７２時間後に、処理血液から一定量を分取し、遠心分離して血漿成分を得た。〈測定方法〉 血漿を５０ｍＭリン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ６．０）にて５０倍希釈し、ＨＰＬＣサンプルとした。ＨＰＬＣ条件カラム： ＥＳ−５０２Ｎ ７．６ｍｍ ｉ．ｄ． × １００ｍｍ ＤＥＡＥ−ｆｏｒｍ （Ｓｈｏｄｅｘ）カラム温度 ： ３５℃Ｓｏｌｖｅｎｔ Ａ： ５０ｍＭ 酢酸ナトリウム−４００ｍＭ 硫酸ナトリウム （ｐＨ ４．８５）Ｓｏｌｖｅｎｔ Ｂ： エタノールＧｒａｄｉｅｎｔ： Ａ／Ｂ ＝ １００／０ →５ｍｉｎ→ １００／０ →２５ｍｉｎ→ ９５／５ →５ｍｉｎ→ １００／０ →５ｍｉｎ→ １００／０Ｆｌｏｗ： １．０ｍＬ／ｍｉｎ検出： 蛍光 ｅｘ． ２８０ｎｍ ｅｍ．３４０ｎｍサンプル注入量： ２０μＬ〈測定結果〉保管７２時間後における還元型アルブミン比残存率は９９．４〜１００．４％であり、処理直後に比べて変動が見られなかった。この結果から、採血後７２時間までの還元型アルブミンの安定性を確認することができ、病院から分析機関までの分析試料の輸送が可能であることが保証された。 本実施例では、クロマトグラフィーとして固相抽出を用いて血漿中の低分子物質を除去した場合の試料の安定性を確認した。〈サンプル処理〉 健常人より血液（Ｎ＝３、Ａ〜Ｃ）を採取し、１）ヘパリンを添加、２）０．５Ｍ クエン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ４．３）を血液の１／９量添加、のいずれかの方法で処理を行い、遠心分離して血漿成分を得た。〈固相抽出〉１． 血漿２０μＬに対し、５０ｍＭリン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ６．０）１９８０ｕＬを添加した。２． 固相抽出カラム（Ｂｏｎｄ Ｅｌｕｔ−Ｃ１８ ＥＷＰ ２００ｍｇ／３ｃｃ）の活性化、平衡化を行った。活性化は０．１％ギ酸を含む９０％アセトニトリル ２ｍＬ、平衡化は水１ｍＬで行った。３． １のサンプルを２の固相抽出カラムにアプライした。４． ０．１％ギ酸を含む１０％アセトニトリル ２ｍＬで洗浄し、０．１％ギ酸を含む９０％アセトニトリル １ｍＬで溶出した。５． ４の溶出液をそのまま、測定サンプルとした。〈ＥＳＩ−ＴＯＦＭＳ測定条件〉溶離液：０．１％ギ酸を含む９０％アセトニトリルを流速１５μＬ／ｍｉｎで流し、オートサンプラーを用いて、測定サンプル１μＬをフローインジェクション法でＥＳＩ−ＴＯＦＭＳに注入した。ＭＳ条件については、実施例１記載のＨＰＬＣ−ＥＳＩ−ＴＯＦＭＳのＭＳ部分と同一条件で測定を行った。〈測定結果〉 上記に従って、ヒト血液を処理して調製した血漿を固相抽出して得られた試料について、ＥＳＩ−ＴＯＦＭＳ測定のオートサンプラー中での安定性をみた。初日、１日後及び２日後に測定をした時の還元型アルブミン比残存率（％）を以下の表に示した。 処理血液１）、２）いずれについても、オートサンプラー中では２日間安定であった。従って、どちらの採血法であっても、その後、クロマトグラフィーとして固相抽出することにより、分析に至るまでの２日間安定であった。この結果から、クロマトグラフィーにより、血漿中の低分子物質を除去することにより、酸化型アルブミンの生成が抑制され、安定した分析が可能となることがわかる。本実施例の結果は、本発明の分析方法の安定性を保証するものである。 さらに、病院などでの実際の採血を想定し、血漿保存安定性の確認を固相抽出法で行った。〈サンプル処理〉 健常人より血液（Ｎ＝３）を採取し、１）ヘパリンを添加、２）０．５Ｍ クエン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ４．３）を血液の１／９量添加、のいずれかの方法で処理を行い、遠心分離して血漿成分を得た。 得られた血漿を、血漿分離直後、冷蔵保管１日後、冷蔵保管２日後に、上記と同様にして、固相抽出した後にＥＳＩ−ＴＯＦＭＳ測定を行った。〈測定結果（図１１）〉 還元型アルブミン比率の残存率を算出したところ、処理血液１）については、保管時間の経過と共に残存率が低下し、２日後で９２〜９４％となった。一方、処理血液２）、３）については、保管２日後の残存率は１００〜１０１％であり、処理直後に比べて変動が見られなかった。この結果から、ｐＨ調整処理により、冷蔵で２日間は還元型アルブミンが安定に存在することが確認できた。また、固相抽出とＥＳＩ−ＭＳを組み合わせたフローインジェクション法では、ＭＳの測定時間が５分以下と、測定時間を大幅に短縮することができる。 本実施例では、還元型又は酸化型アルブミン標準試料の調製法を記載する。 健常人より血液を採取し、血漿分離したヒト血漿サンプルを、実施例５で示した手順に準じて、アフィニティークロマトグラフィーによるアルブミン精製に供した。精製した溶出液を、１．５Ｍ 塩化カリウムを含む５０ｍＭ リン酸緩衝液（ｐＨ６．０）で４ｍｇ／ｍＬに希釈した（これを還元型アルブミン標準試料とした）。この溶液に、チオール基含有低分子物質として、システインとその酸化体であるシスチン、ホモシステインとその酸化体であるホモシスチン、又は、還元型グルタチオンとその酸化体である酸化型グルタチオンのいずれかを添加して酸化型アルブミン標準試料の調製を行った。 生体内に存在する酸化型アルブミンとして、システイン付加型アルブミン、ホモシステイン付加型アルブミン及びグルタチオン付加型アルブミンの３種類を、以下のようにしてそれぞれ調製した。 システイン付加型アルブミン調製の場合、４ｍｇ／ｍＬ 精製アルブミン溶液１２０ｍＬに０．６ｍＭ システイン（シグマ社製）水溶液を１２ｍＬ及び０．６ｍＭ シスチン（シグマ社製）水溶液を１０８ｍＬ混合した。 ホモシステイン付加型アルブミン調製の場合、４ｍｇ／ｍＬ 精製アルブミン溶液１２０ｍＬに３ｍＭ ホモシステイン（シグマ社製）水溶液を８ｍＬ及び３ｍＭ ホモシスチン（シグマ社製）水溶液を７２ｍＬ混合した。 グルタチオン付加型アルブミン調製の場合、４ｍｇ／ｍＬ 精製アルブミン溶液１２０ｍＬに３ｍＭ 還元型グルタチオン（和光純薬社製）水溶液を８ｍＬ及び３ｍＭ 酸化型グルタチオン（和光純薬社製）水溶液を７２ｍＬ混合した。 調製したすべての溶液は、ファルコンチューブ（５０ｃｃサイズ）数本に分け、チューブ内にはアルゴンガスを充填した。チューブを３７℃インキュベーター内（横置き）に４８時間放置した。反応終了後、限外ろ過法により、マイクロコンＹＭ−３０（５００μＬサイズ：ＭＩＬＬＩＰＯＲＥ製）によって、過剰のチオール基含有低分子物質とその酸化体を除去し、溶液を濃縮した。２０００ｒｐｍの遠心処理を行い、０．９ｗ／ｖ％ 塩化ナトリウムを含む５０ｍＭ リン酸緩衝液（ｐＨ７．３）でバッファー交換を行った。（１）アルブミン溶液濃縮、（２）ろ過液除去、（３）０．９ｗ／ｖ％ 塩化ナトリウムを含む５０ｍＭ リン酸緩衝液（ｐＨ７．３）の充填という（１）から（３）までの工程を１５回以上繰り返すことにより、調製した溶液中のチオール基含有低分子物質とその酸化体の除去を達成した。 本調製法によって得られた酸化型アルブミン標準試料（３種類）の還元型又は酸化型アルブミン純度（％）（還元型アルブミンと酸化型アルブミンを合わせた全体に占める還元型又は酸化型アルブミンの割合）を実施例１記載のＨＰＬＣ−ＥＳＩ−ＴＯＦＭＳ測定によって確認した（図１２）。その結果、システイン付加型アルブミン（図１２の［Ｂ］）、ホモシステイン付加型アルブミン（図１２の［Ｃ］）、グルタチオン付加型アルブミン（図１２の［Ｄ］）の酸化型アルブミン純度はそれぞれ、９５％、９６％、６５％であった。一方、還元型アルブミン標準試料（図１２の［Ａ］）の還元型アルブミン純度は７８％であった。 上記の方法で調製した還元型アルブミン標準溶液及び各種酸化型アルブミン標準試料を、４℃、−２０℃及び−８０℃で保存した際の安定性の評価を行った。定期的にサンプリングを行い、実施例１記載のＨＰＬＣ−ＥＳＩ−ＴＯＦＭＳを用いて純度の変化率を測定した。 その結果、いずれの温度でも酸化型アルブミン標準試料の純度についてはほとんど変化がなく、酸化型アルブミン標準試料の保存安定性が示された。 また、調製した標準試料を用いて、実施例７に記載のＨＰＬＣ法に従いアルブミンの分析を行ったところ、分析によって得られた還元型アルブミン、システイン付加型アルブミン、グルタチオン付加型アルブミンの純度の分析値は、より分析精度の高いＥＳＩ−ＴＯＦＭＳで測定した値とよく一致した。このことから、本発明のアルブミン標準試料を用いて、ＨＰＬＣ法の分析精度を保証することができた。 本発明によれば、還元型・酸化型アルブミン及び糖化タンパク質成分の存在量や存在比率が簡便で高感度に測定できるので、生化学的研究、疾患の診断、薬剤のスクリーニングに有用な方法を提供することができる。特に、酸化型・還元型アルブミンの存在比及び糖化アルブミンの存在比を簡便で高感度に得ることができるので、肝疾患、腎疾患、糖尿病、リウマチ、脳疾患、疲労、加齢、酸化ストレス、心疾患、肺疾患などの酸化ストレスを生じる各種状態が好適に分析されうる。 以上、本発明の具体的な態様のいくつかを詳細に説明したが、当業者であれば示された特定の態様には、本発明の教示と利点から実質的に逸脱しない範囲で様々な修正と変更をなすことは可能である。従って、そのような修正及び変更も、すべて後述の請求の範囲で請求される本発明の精神と範囲内に含まれるものである。 本出願は、日本で出願された特願２００５−２１７９９３を基礎としており、それらの内容は本出願にすべて包含されるものである。 血液又は血漿試料中のアルブミンを分析する方法であって、被検体から採取した血液又は血漿をｐＨ４〜９に調整し、かつ緩衝液によって５０〜１０００００倍に希釈した試料溶液を、−７０℃より高い温度で保存した後、該試料溶液中の還元型アルブミンと酸化型アルブミンの存在量及び／又は還元型アルブミンと酸化型アルブミンの存在比を、質量分析又は液体クロマトグラフィーを用いて分析することを特徴とする、方法。 該血液又は血漿が、肝疾患、腎疾患、糖尿病、リウマチ、脳疾患、疲労、加齢、酸化ストレス、心疾患及び肺疾患からなる群から選択される少なくとも１種の状態にあるか該状態にあることが危惧される被検体から採取した血液又は血漿である、請求項１に記載の方法。 該分析前に血液又は血漿試料を４〜６０℃で０〜１００時間インキュベートすることをさらに含む、請求項１または２に記載の方法。 被験物質投与時と非投与時のそれぞれにおける被検体から採取した血液又は血漿中の還元型アルブミンと酸化型アルブミンの存在量及び／又は還元型アルブミンと酸化型アルブミンの存在比を請求項１〜３のいずれか１項に記載の方法により測定すること、 被験物質投与時に得られた該存在量及び／又は存在比と、被験物質非投与時に得られた該存在量及び／又は存在比とを比較すること、並びに 被験物質非投与時に比べ被験物質投与時の還元型アルブミンの存在量及び／又は存在比を大きくした被験物質を選択することを含む、被験物質のスクリーニング方法。