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| タイトル： | 公開特許公報(A)_ヒドロペルオキシドの精製方法、およびヒドロペルオキシドの検出方法 |
| 出願番号： | 2004095755 |
| 年次： | 2005 |
| IPC分類： | 7,C07C409/04,C07C407/00,C07F7/08,C07F9/10 |
特許情報キャッシュ
宮澤 陽夫 仲川 清隆 指宿 大悟 増田 祐一 JP 2005281170 公開特許公報(A) 20051013 2004095755 20040329 ヒドロペルオキシドの精製方法、およびヒドロペルオキシドの検出方法 宮澤 陽夫 000161666 平木 祐輔 100091096 石井 貞次 100096183 藤田 節 100118773 島村 直己 100101904 宮澤 陽夫 仲川 清隆 指宿 大悟 増田 祐一 7C07C409/04C07C407/00C07F7/08C07F9/10 JPC07C409/04C07C407/00C07F7/08 ZC07F9/10 Z 7 ＯＬ 20 特許法第３０条第１項適用申請有り ▲１▼発行者：社団法人日本農芸化学会 刊行物名：日本農芸化学会２００４年度（平成１６年度）大会講演要旨集 掲載頁：２１９頁（３Ａ２０ａ０５）、２３２頁（３Ａ２３ａ０２） 刊行物発行年月日：２００４年３月５日 ▲２▼発行者：社団法人日本農芸化学会東北支部 刊行物名：日本農芸化学会東北支部第１３８回大会プログラム・講演要旨集（２００３） 掲載頁：２９頁（Ｃ−１）、３０頁（Ｃ−２） 刊行物発行年月日：２００３年１０月３日 4H006 4H049 4H050 4H006AA02 4H006AD30 4H049VN01 4H049VP01 4H049VQ02 4H049VQ20 4H049VR23 4H049VR41 4H049VW04 4H050AA02 4H050AD30 本発明は、食品産業分野、有機化学分野、医学分野等において重要な意味を持つヒドロペルオキシドの精製方法および検出方法に関する。 ヒドロペルオキシドとは、官能基−ＯＯＨを持つ化合物の総称である。ヒドロペルオキシドは炭化水素類、特に脂質の酸化により生じる。ヒドロペルオキシドは酸化力に富み、食品の酸敗の主因である。生体では、酸化ストレスを受けると脂質ヒドロペルオキシドが生じ、様々な疾病の原因となる。ヒドロペルオキシドによって細胞障害が発生すると考えられるが、ヒドロペルオキシドが起こす細胞障害の機構は十分に明らかでない。 ヒドロペルオキシドと、食品の腐敗や細胞障害などとの関係を調査する上では、食品や生体中に生成・蓄積するヒドロペルオキシドを正確に定量分析する必要がある。 ヒドロペルオキシドの定量分析の際には、あらかじめヒドロペルオキシド標品を用いて標準曲線を作成しておき、標準曲線を用いてヒドロペルオキシド量を決定する方法が考えられる。しかし、標品として利用可能な濃度既知で高純度のヒドロペルオキシド試料が手に入らないため、現在においては測定者自身が標品を準備する必要がある。 標品として用いられるヒドロペルオキシドは、脂質などの化合物を光酸化または酵素的に過酸化して得られたヒドロペルオキシドを、液体クロマトグラフィーに供し、夾雑物である分解物（ヒドロキシド、アルデヒドなど）や未酸化物を除くことによって得られる。しかし、ヒドロキシドなど一部の夾雑物は、ヒドロペルオキシドと分子サイズや極性などが類似しているため、液体クロマトグラフィーなどで除去しきれずにヒドロペルオキシド標品に混入する。混入したヒドロペルオキシドは、ヒドロペルオキシドの定量分析において、測定誤差を招来してしまう。このため、夾雑物を含むヒドロペルオキシドを精製し、高純度のヒドロペルオキシドを得る技術の開発が所望されていた。 ところで、ヒドロペルオキシドを検出する方法としては、既に様々な方法が開発されている。代表的なものとして、ＰＯＶ測定法（ヨウ素を用いた滴定法；過酸化物価法）、カルボニル価測定法、ＴＢＡ（チオバルビツール酸）法、吸光度測定法、化学発光ＨＰＬＣ法などがある（例えば、非特許文献１参照）。しかし、ＰＯＶ測定法は感度が低い。また、カルボニル価測定法、ＴＢＡ法は、ヒドロペルオキシドの分解物を測定する方法であるため、ヒドロペルオキシド量を直接評価できない。吸光度測定法は、試料中に夾雑物が存在した場合に正確な値が得られない。化学発光ＨＰＬＣ法は、ヒドロペルオキシドに対し選択的かつ高感度であるが、測定者の高度な技術習得が必要とされる。以上のような状況から、ヒドロペルオキシドの検出方法の改良が求められていた。『生物化学実験法９ 脂質・酸化脂質分析法入門』 宮澤陽夫・藤野泰郎著 （学会出版センター） 本発明の目的は、夾雑物を含むヒドロペルオキシドを精製し、高純度のヒドロペルオキシドを得る方法を提供することである。 また、本発明の他の目的は、優れたヒドロペルオキシドの検出方法を提供することである。 本発明は、ヒドロペルオキシドの有するヒドロペルオキシド基に、ビニルエーテルを付加させて、ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物を合成する段階と、前記ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物を回収する段階と、回収された前記ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物から、ビニルエーテルを脱離させて、前記ヒドロペルオキシドを再生する段階とを含む、ヒドロペルオキシドの精製方法である。 また本発明は、ヒドロペルオキシドの有するヒドロペルオキシド基に、ビニルエーテルを付加させて、ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物を合成する段階と、前記ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物を検出する段階と含む、ヒドロペルオキシドの検出方法である。 本発明の精製方法を用いることによって、夾雑物を含むヒドロペルオキシドを精製し、高純度のヒドロペルオキシドを得ることが可能である。高純度のヒドロペルオキシドを用いることによって、生体試料および食品試料由来などのヒドロペルオキシドの正確な定量が可能になる。また、高純度のヒドロペルオキシドを用いて、細胞障害に関するヒドロペルオキシドの生理活性を正確に評価することが可能である。 また、本発明の検出方法は、簡便であり、感度、信頼性、選択性などにも優れる。このため、試料中に含まれるヒドロペルオキシドを簡便に検出し、試料に含まれるヒドロペルオキシド量を正確に測定することが可能である。 本発明の第１は、ヒドロペルオキシドの精製方法に関し、ヒドロペルオキシドにビニルエーテルを付加することで分子のサイズ・構造・極性・特定部位の電荷等を変化させ、生じたヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物を液体クロマトグラフィー等で精製し、付加したビニルエーテルを脱離させ、ヒドロペルオキシドを再生させる（下記スキーム参照）。具体的には、本発明の第１は、ヒドロペルオキシドの有するヒドロペルオキシド基に、ビニルエーテルを付加させて、ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物を合成する段階と、前記ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物を回収する段階と、回収された前記ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物から、ビニルエーテルを脱離させて、前記ヒドロペルオキシドを再生する段階とを含む、ヒドロペルオキシドの精製方法である。 ヒドロペルオキシドにビニルエーテルを加えることによって、ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加生成物（以下、「パーケタール類」とも記載する）が生成し、極性など分子の物性が大幅に変化する。なお、この反応を酸性触媒の存在下で進行させると、極めて短時間かつ高い収率でヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加生成物が得られる。 そして、ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加生成物を、液体クロマトグラフィーを用いて分取、吸着性の粒子に吸着させて回収、または吸着性の粒子への夾雑物の吸着をすることによって、容易に、組成物中の夾雑物を除去することが可能である。 夾雑物から分離されたペルオキシドのビニルエーテルを、ビニルエーテルを脱離させることによって、元のヒドロペルオキシドに再生する。再生したヒドロペルオキシドは、液体クロマトグラフィーを用いて分取、吸着性の粒子に吸着させて回収、または吸着性の粒子への夾雑物の吸着をすることによって、高純度のヒドロペルオキシドを得ることが可能である。再生したヒドロペルオキシドを精製する際には、既にヒドロペルオキシドと分子サイズや極性などが類似する分子が除去されている。このため、液体クロマトグラフィーや吸着性の粒子を用いて、高純度のヒドロペルオキシドを得ることが可能である。 以下、本発明の精製方法について、工程順に詳細に説明する。 まず、ヒドロペルオキシドの有するヒドロペルオキシド基に、ビニルエーテルを付加させて、ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物を合成する。 ヒドロペルオキシドとは、官能基−ＯＯＨを持つ化合物の総称である。官能基−ＯＯＨを有していれば、ヒドロペルオキシドの構造については特に限定されない。ヒドロペルオキシドは、化学式１で表される構造を有する。 式中、Ｒ１は、置換基を有していてもよい炭化水素基、または置換基を有していてもよいシリル基である。置換基としては、メチル基、エチル基、ｎ−プロピル基、イソプロピル基、ｎ−ブチル基、ｉｓｏ−ブチル基、ｓｅｃ−ブチル基、ｔｅｒｔ−ブチル基、ペンチル基、ヘキシル基、シクロヘキシル基、オクチル基、ノニル基、デシル以上の長鎖アルキル基、などが挙げられる。Ｒ１の具体例としては、ホスファジルコリン、ホスファチジルエタノールアミン、ホスファチジルセリン、ホスファチジルイノシトール、ホスファチジン酸、脂肪酸、脂肪酸エステル、コレステロール、コレステロールエステル、モノグリセリド、ジグリセリド、トリグリセリド、カルジオリピン、プロスタグランジン、シリル、ジメチルシリル、トリメチルシリル、ジメチルフェニルシリル、メチルジフェニルシリル、トリフェニルシリル、ジメチルエチルシリル、メチルメトキシフェニルシリル、メチルエチルフェノキシシリル等が挙げられる。 化学式１で表されるヒドロペルオキシドの具体例としては、脂肪酸ヒドロペルオキシド、脂肪酸エステルヒドロペルオキシド、コレステロールヒドロペルオキシド、コレステロールエステルヒドロペルオキシド、リン脂質ヒドロペルオキシド、モノグリセリドヒドロペルオキシド、ジグリセリドヒドロペルオキシド、トリグリセリドヒドロペルオキシドなどの、脂質由来のヒドロペルオキシドが挙げられる。 ビニルエーテルとは、エーテル結合を構成する酸素原子に、−Ｃ＝Ｃ構造が結合している化合物である。本発明において用いられるビニルエーテルの具体例としては、化学式２で表される構造を有するビニルエーテルが挙げられる。 Ｒ２は、置換基を有していてもよい炭化水素の二価の基、または置換基を有していてもよいシリル基である。炭化水素の二価の基としては、一般式、＝ＣＲ５Ｒ６で表される基が挙げられる。ここで、Ｒ５およびＲ６は、同一であっても異なっていてもよく、置換基を有していてもよいアルキル基である。Ｒ５およびＲ６を構成するアルキル基は、直鎖であっても、分岐であっても、環状であってもよく、メチル基、エチル基、ｎ−プロピル基、イソプロピル基、ｎ−ブチル基、ｉｓｏ−ブチル基、ｓｅｃ−ブチル基、ｔｅｒｔ−ブチル基、ペンチル基、ヘキシル基、シクロヘキシル基、オクチル基、ノニル基などが挙げられる。Ｒ２の具体例としては、＝ＣＨ２、＝ＣＨＣＨ３、＝Ｃ（ＣＨ３）２、＝ＣＨ（ＣＨ２ＣＨ３）、＝ＣＨ（ＣＨ２ＣＨ２ＣＨ３）、＝ＣＨ（ＣＨ３）（ＣＨ３）などが挙げられる。シリル基としては、シリル、ジメチルシリル、トリメチルシリル、ジメチルフェニルシリル、メチルジフェニルシリル、トリフェニルシリル、ジメチルエチルシリル、メチルメトキシフェニルシリル、メチルエチルフェノキシシリル等が挙げられる。 Ｒ３は、置換基を有していてもよいアルキル基、または置換基を有していてもよいシリル基である。アルキル基は、直鎖であっても、分岐であっても、環状であってもよく、メチル基、エチル基、ｎ−プロピル基、イソプロピル基、ｎ−ブチル基、ｉｓｏ−ブチル基、ｓｅｃ−ブチル基、ｔｅｒｔ−ブチル基、ペンチル基、ヘキシル基、シクロヘキシル基、オクチル基、ノニル基、フェニル基、ナフチル基、アントラセニル基、ピレニル基などが挙げられる。シリル基としては、シリル、ジメチルシリル、トリメチルシリル、ジメチルフェニルシリル、メチルジフェニルシリル、トリフェニルシリル、ジメチルエチルシリル、メチルメトキシフェニルシリル、メチルエチルフェノキシシリル等が挙げられる。 Ｒ４は、水素原子、金属原子、ハロゲン原子、置換基を有していてもよいアルキル基、または置換基を有していてもよいシリル基である。金属原子としては、遷移金属、例えば、Ｆｅ、Ｎｉ、Ｃｏ、Ｃｕ、Ｃｒ、Ｍｎ、Ｐｄ、Ａｇ、Ａｕ、Ｐｔ、キレート形成する金属、例えば、Ｆｅ、Ａｌ、Ｃｕなどが挙げられる。ハロゲン原子としては、フッ素、塩素、臭素、ヨウ素が挙げられる。アルキル基は、直鎖であっても、分岐であっても、環状であってもよく、メチル基、エチル基、ｎ−プロピル基、イソプロピル基、ｎ−ブチル基、ｉｓｏ−ブチル基、ｓｅｃ−ブチル基、ｔｅｒｔ−ブチル基、ペンチル基、ヘキシル基、シクロヘキシル基、オクチル基、ノニル基、フェニルメチル基、ナフタレンメチル基、アントラセンメチル基、ピレンメチル基などが挙げられる。シリル基としては、シリル、ジメチルシリル、トリメチルシリル、ジメチルフェニルシリル、メチルジフェニルシリル、トリフェニルシリル、ジメチルエチルシリル、メチルメトキシフェニルシリル、メチルエチルフェノキシシリル等が挙げられる。 Ｒ２〜Ｒ４において、アルキル基およびシリル基を置換しうる置換基としては、メチル基、エチル基、ｎ−プロピル基、イソプロピル基、ｎ−ブチル基、ｉｓｏ−ブチル基、ｓｅｃ−ブチル基、ｔｅｒｔ−ブチル基、ペンチル基、ヘキシル基、シクロヘキシル基、オクチル基、ノニル基、デシル以上の長鎖アルキル基、などが挙げられる。 ヒドロペルオキシドへの付加反応に用いるビニルエーテルの構造や分子量および量は、特に制限されない。本発明においては、反応性の観点から、分子量が５０〜１０００程度のもの、例えば２−メトキシプロペンを、ヒドロペルオキシドの物質量に対して過剰に用いることが好ましい。 反応においては、好ましくは触媒が用いられる。触媒は、酸性を示し有機溶媒に溶けるものであれば、特に制限されない。本発明においては、反応性の観点から、ピリジニウム―ｐ―トルエンスルホン酸を用いることが好ましい。 上記反応で使用する溶媒は、特に制限されないが、弱い極性を持つ有機溶媒が好ましい。本発明においては、反応性の観点から、低級アルコール、クロロホルム、ジクロロメタン、アセトニトリルを溶媒として用いるのが好ましい。 反応温度および時間は、用いるヒドロペルオキシド、ビニルエーテル、触媒、溶媒の種類および量により異なる。本発明においては、反応速度および生成物の安定性の観点から、通常−３０℃から６０℃程度で数秒から数十時間、好ましくは０℃から１０℃程度で１分から１時間である。 ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物（パーケタール類）を合成した後、パーケタール類を回収する。ここで、「パーケタール類を回収する」とは、ヒドロキシドなど、ヒドロペルオキシドと物性が類似しているためヒドロペルオキシドと分離しにくい化合物から、パーケタール類を分離することを意味する。パーケタール類を回収する手段は、パーケタール類を選択的に吸着して回収、またはパーケタール類以外の分子を吸着除去する方法などが用いられ、特に制限されない。本発明においては、利便性および回収率の観点から、液体クロマトグラフィーを使用することが好ましい。 上記クロマトグラフィーで使用する固定相は、生成したパーケタール類の分子のサイズ・構造・極性・特定部位の電荷等により溶出時間が変化するものであれば、特に制限されない。例えば、順相クロマトグラフィーで用いる無機系シリカ、逆相クロマトグラフィーで用いるオクタデシルシリル基が挙げられ、本発明においては、操作の簡便性及び分解能の観点から、オクタデシルシリル基を結合させた担体を固定相として用いるのが好ましい。 担体としては、クロマトグラフィーにおいて通常用いられるものを使用でき、例えば、無機系シリカ、有機高分子系樹脂（例えば、親水性ビニルポリマー）等が挙げられる。本発明においては、担体の耐性の観点から、無機系シリカを使用するのが好ましい。 具体的には、本発明のクロマトグラフィーにおける分離カラムとしては、例えば、オクタデシルシリル基を無機系シリカ担体に結合させたＣＡＰＣＥＬＬ ＰＡＫ Ｃ１８ ＳＧ１２０（資生堂社製）、ＣＯＳＭＯＳＩＬ ５Ｃ１８−ＭＳ−ＩＩ（ナカライテスク社製）等を使用することができ、特に、ＣＯＳＭＯＳＩＬ ５Ｃ１８−ＭＳ−ＩＩ（ナカライテスク社製）を使用するのが好ましい。 本発明におけるクロマトグラフィーでは、移動相として、各種のヒドロペルオキシド由来のパーケタール類が溶解するような、水及び有機溶媒、又はその混合溶液を使用する。例えば、逆相クロマトグラフィーの場合、水と混和できる有機溶媒であれば特に制限されず、例えば、メタノール、エタノール、イソプロピルアルコールなどの低級アルコールや、アセトニトリル、テトラヒドロフラン等が挙げられる。また、順相クロマトグラフィーの場合は、ヘキサンなどの炭化水素や、イソプロピルアルコール、クロロホルム等が挙げられる。また、溶出ピークのテーリングを防止するため、酢酸等の酸や、アルカリ、酢酸アンモニウム等の塩を加える場合もある。本発明においては、例えば生体膜の主要構成分であるホスファチジルコリンのヒドロペルオキシドに２−メトキシプロペンを加えてパーケタール化し、逆相クロマトグラフィーで分取する場合は、移動相として、水とメタノールに揮発性のアンモニウム塩である酢酸アンモニウムを加えた混合溶液を使用するのが好ましく、このときのメタノールと水の混合比率は、通常、１０００：１０〜１０００：２００、好ましくは、１０００：２５〜１０００：５０であり、酢酸アンモニウムを１〜１０ｍＭになるように加えたものである。 酢酸等の酸や、アルカリ、酢酸アンモニウム等の塩を、溶出ピークのテーリング防止のための補助剤として移動相に加えた場合には、クロマトグラフィーによる分取後、リサイクル分取系や各種の吸着剤等を用いて、これらの補助剤を除去することが好ましい。 クロマトグラフィーにおける移動相の流速は、カラムの用途に合わせて適宜選択することができ、通常、０．１〜１００．０ｍｌ／分である。例えば、オクタデシルシリル基を持つセミ分取カラム（直径２０ｍｍ程度）を用いる場合は、５〜２０ｍｌ／分、好ましくは１０〜２０ｍｌ／分である。分離カラムの温度は、分取の対象となるパーケタール類の安定性および分離能に影響を及ぼさない範囲であれば特に制限されず、通常、２０〜４０℃、好ましくは３０〜４０℃である。 クロマトグラフィーにおける検出器は、生成したパーケタール類に合わせて適宜選択することができ、通常ＵＶ検出器を用いる。例えば生体膜の主要構成成分であるホスファチジルコリンのヒドロペルオキシドをパーケタール化し、逆相クロマトグラフィーで分取する場合は、検出波長を２０５〜２７０ｎｍ、好ましくは２１０ｎｍあるいは２３４ｎｍ付近とし、得られた信号に応じて分取することが好ましい。 上記のような液体クロマトグラフィーにより、生成したパーケタール類を十分にカラムに保持させ、又はパーケタール類のみを溶出させ、試料中の他の夾雑物質から効果的に分離精製することが可能である。 続いて、回収されたヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物（パーケタール類）から、ビニルエーテルを脱離させて、ヒドロペルオキシドを再生する。 本発明において、パーケタール類からビニルエーテルを脱離させる反応の溶媒は、通常は水を含有する有機溶媒が用いられる。本発明においては、反応性の観点から、低級アルコール、アセトニトリルを用いるのが好ましい。 また、触媒として、酸性で有機溶媒に溶けるもの、例えばピリジニウム―ｐ―トルエンスルホン酸を、パーケタール類の物質量に対して数％〜数千％用いることが好ましい。 反応温度および時間は、用いるパーケタール類・触媒・溶媒の種類および量により異なる。本発明においては、反応速度および生成物の安定性の観点から、−３０℃から６０℃程度において数分〜半日程度放置することが好ましい。 パーケタール類からビニルエーテルを脱離させることによって、ヒドロペルオキシドを含む液体が得られる。その液中には、本発明における目的物であるヒドロペルオキシドに加えて、脱離したビニルエーテルなどが含まれるが、ヒドロペルオキシドとビニルエーテルとは物性が異なるため、ビニルエーテルなどを通常の精製手段によって容易に分離し、高純度のヒドロペルオキシドを精製することが可能である。 本発明においては、再生したヒドロペルオキシドを精製する方法は、ヒドロペルオキシドを選択的に吸着して回収、あるいはヒドロペルオキシド以外の分子を吸着除去する方法であれば、特に制限されない。本発明においては、利便性および回収率の観点から、液体クロマトグラフィーを使用することが好ましい。 上記の精製に用いるクロマトグラフィーで使用する固定相は、分子のサイズ・構造・極性・特定部位の電荷等により溶出時間が変化するものであれば、特に制限されない。例えば、順層クロマトグラフィーで用いる無機系シリカ、逆相クロマトグラフィーで用いるオクタデシルシリル基が挙げられ、本発明においては、操作の簡便性、及び生成物の安定性・分離能の観点から、オクタデシルシリル基を結合させた担体を固定相として用いるのが好ましい。 担体としては、クロマトグラフィーにおいて通常用いられるものを使用でき、例えば、無機系シリカ、有機高分子系樹脂（例えば、親水性ビニルポリマー）等が挙げられる。本発明においては、無機系シリカを使用するのが好ましい。 具体的には、本発明のクロマトグラフィーにおける分離カラムとしては、例えば、オクタデシルシリル基を無機系シリカ担体に結合させたＣＡＰＣＥＬＬ ＰＡＫ Ｃ１８ ＳＧ１２０（資生堂社製）、ＣＯＳＭＯＳＩＬ ５Ｃ１８−ＭＳ−ＩＩ（ナカライテスク社製）等を使用することができ、特に、ＣＯＳＭＯＳＩＬ ５Ｃ１８−ＭＳ−ＩＩ（ナカライテスク社製）を使用するのが好ましい。 本発明におけるクロマトグラフィーでは、移動相として、各種のヒドロペルオキシドが溶解するような、水及び有機溶媒、又はその混合溶液を使用する。例えば、逆相クロマトグラフィーの場合、水と混和できる有機溶媒であれば特に制限されず、例えば、メタノール、エタノール、イソプロピルアルコールなどの低級アルコール、アセトニトリル、テトラヒドロフラン、等が挙げられる。また、順層クロマトグラフィーの場合は、ヘキサンなどの炭化水素、イソプロピルアルコール、クロロホルム、等が挙げられる。また、溶出ピークのテーリングを防止するため、酢酸等の酸や、アルカリ、酢酸アンモニウム等の塩を加える場合もある。本発明においては、例えば生体膜の主要構成成分であるホスファチジルコリンのヒドロペルオキシドの場合、逆相クロマトグラフィーで分取する場合は、移動相として、水とメタノールに揮発性のアンモニウム塩である酢酸アンモニウムを加えた混合溶液を使用するのが好ましく、このときのメタノールと水の混合比率は、通常、１０００：１０〜１０００：２５０、好ましくは、１０００：２５〜１０００：１００であり、酢酸アンモニウムを１〜１０ｍＭになるように加えたものである。 クロマトグラフィーにおける移動相の流速は、カラムの用途に合わせて適宜選択することができ、通常、０．１〜１００．０ｍｌ／分である。例えば、ＯＤＳのセミ分取カラム（直径２０ｍｍ程度）を用いる場合は、５〜２０ｍｌ／分、好ましくは１０〜２０ｍｌ／分である。分離カラムの温度は、分取の対象となるヒドロペルオキシドの安定性および分離能に影響を及ぼさない範囲であれば特に制限されず、通常、２０〜４０℃、好ましくは３０〜４０℃である。 クロマトグラフィーにおける検出器は、ヒドロペルオキシドに合わせて適宜選択することができ、通常ＵＶ検出器を用いる。例えば生体膜の主要構成成分であるホスファチジルコリンのヒドロペルオキシドを、逆相クロマトグラフィーで分取する場合は、検出波長を２０５〜２７０ｎｍ、好ましくは２１０ｎｍあるいは２３４ｎｍ付近とし、得られた信号に応じて分取することが好ましい。 上記のような液体クロマトグラフィーにより、最終的に精製したヒドロペルオキシドを十分にカラムに保持させ、又はヒドロペルオキシドのみを溶出させ、試料中の他の夾雑物質から効果的に分離精製することが可能である。 本発明の精製方法は、ヒドロペルオキシド基をもつ脂質を含み得る食品、生体試料等におけるヒドロペルオキシドから、少なくとも一種のヒドロペルオキシドを分離精製するためにも、好適に使用できる。 本発明の第２は、ヒドロペルオキシドの検出方法に関する。本発明の第２においては、検出されるヒドロペルオキシドにビニルエーテルを付加することによって、ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物（パーケタール類）を合成し、パーケタール類を検出することによって、ヒドロペルオキシドの存在を検出する。好ましくは、ビニルエーテルは、検出に有用な特性を備えている。例えば、ビニルエーテルが有する、官能基、分子構造、原子、放射性同位元素などを利用して、パーケタール類が検出可能である。パーケタール類は、パーケタール類の蛍光、燐光、化学発光、酸化還元力、特定波長の吸光度、放射線量、および他の試薬との反応性、生成した分子の分子量、光散乱度、抗体との結合性、酵素等との結合性などによっても検出可能である。本発明の検出方法を用いれば、高感度、選択的かつ容易にヒドロペルオキシドを検出し、必要であれば、ヒドロペルオキシドの存在量を定量できる。 具体的には、本発明の第２は、ヒドロペルオキシドの有するヒドロペルオキシド基に、ビニルエーテルを付加させて、ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物を合成する段階と、前記ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物を検出する段階とを含む、ヒドロペルオキシドの検出方法である。 本発明の第２においては、まず、ヒドロペルオキシドの有するヒドロペルオキシド基に、ビニルエーテルを付加させて、ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物を合成する。この反応については、基本的に本発明の第１における反応と同様であるため、ここでは簡単に説明する。 ヒドロペルオキシドは、官能基−ＯＯＨを有していれば、構造については特に限定されない。ヒドロペルオキシドは、化学式１で表される構造を有する。 Ｒ１は、前述の通りであるため、ここでは説明を省略する。また、化学式１で表されるヒドロペルオキシドの具体例についても、前述の通りである。 ビニルエーテルは、エーテル結合を構成する酸素原子に、−Ｃ＝Ｃ構造が結合している化合物である。本発明において用いられるビニルエーテルの具体例としては、化学式２で表される構造を有するビニルエーテルが挙げられる。 Ｒ２〜Ｒ４についても、前述の通りであるが、好ましくは、検出に有用なビニルエーテルが用いられる。例えば、蛍光、燐光、化学発光、酸化還元力、吸光度、放射線量、試薬との反応性、生成した分子の分子量、光散乱度、抗体との結合性、酵素等との結合性などを利用して検出できるように、ビニルエーテルが選択される。例えば、ビニルエーテルとして蛍光性のナフタレン環を有する１−（２−メトキシ−２−プロペニル）−ナフタレンが用いられる。放射性同位元素を有するビニルエーテルが用いられてもよい。 本発明においては、反応性の観点から、分子量が５０〜１０００程度のビニルエーテルを、ヒドロペルオキシドの物質量に対して過剰に用いることが好ましい。 反応に用いられる触媒、溶媒、反応温度、および時間は、本発明の第１と同様であるため、ここでは説明を省略する。 ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物（パーケタール類）を合成した後、ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物を検出する。検出方法は、パーケタール類に応じて選択されればよい。例えば、ビニルエーテルとして蛍光性のナフタレン環を有する１−（２−メトキシ−２−プロペニル）−ナフタレンが用いられた場合には、蛍光検出器が用いられる。 反応により生じたパーケタール類と、未反応のビニルエーテルまたはその他の夾雑物とが同一の検出シグナルを与える場合は、これらを分離してから検出すればよい。または、反応により生じたパーケタール類、未反応のビニルエーテル、およびその他の夾雑物のいずれかの検出シグナルを与える部位を改変させて、生じたパーケタール類と他の物質とのシグナルを区別できるようにした上で、検出してもよい。 以下、実施例に基づき本発明を詳細に説明するが、本発明はこれらに制限されるものではない。 〔実施例１〕 ホスファチジルコリン（１−パルミトイル−２−リノレイル−３−ｓｎ−グリセロホスホコリン、シグマ−アルドリッチ社製）を４ｍＭになるようにメタノールに溶かし、同量のローズベンガル（食用赤色１０５号）のメタノール溶液（０．４ｍｇ／ｍｌ）を加え、ふた付き試験管に移し、酸素を１０秒間吹き込み、密栓してよく振り混ぜた。ふた付き試験管を氷上に置き、１００Ｗ白熱電球を１０ｃｍの距離になるように設置し、白熱電灯光に６時間曝露させた。この試料を、予めメタノールで洗浄しておいた陰イオン交換ミニカラム（ＳｅｐＰａｋ（Ｒ） Ｐｌｕｓ ＱＭＡ、ウォーターズ社製）に通してローズベンガルを除去し、ホスファチジルコリンヒドロペルオキシドの未純化試料溶液とした。 この試料を、ＨＰＬＣ―ＵＶ−ＭＳ−ＣＬ分析装置で分析した。 ＨＰＬＣ（高速液体クロマトグラフ）は、ポンプ（ＰＵ−９８０、日本分光社製）、カラム恒温槽（ＣＯ−９６５、日本分光社製）、インジェクター（７１２５、レオダイン社製）、データ処理装置（Ｃｈｒｏｍａｔｏｃｏｄｅｒ ２１Ｊ、ＳＩＣ社製）を使用した。分離カラムは、分析用逆相ＯＤＳカラム（ＣＡＰＣＥＬＬ ＰＡＫ Ｃ１８ ＳＧ１２０、４．６×５０ｍｍ＋４．６×２５０ｍｍ、資生堂社製）を使用した。また検出器は、ＵＶ ＶＩＳ検出器（ＵＶ−９７０、日本分光社製）、ＥＳＩ ＴＯＦ型質量分析計（Ｍａｒｉｎｅｒ、Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社製）を使用した。また、ヒドロペルオキシドの検出に化学発光検出器（８２５−ＣＬ、日本分光社製）、化学発光試薬用のポンプ（ＰＵ−９８０）を用いた。カラム温度を４０℃に設定し、移動相はメタノール／水＝１０００／５０の溶液（５ｍＭ酢酸アンモニウム（和光純薬社製）を含む）を使用し、流速１ｍｌ／分で、アイソクラティック条件で溶出した。ＵＶ ＶＩＳ検出器は、検出波長を２１０ｎｍに設定した。移動相は質量分析計に導入する分が０．０５ｍｌ／分、化学発光検出器に導入する分が０．９５ｍｌ／分になるように分岐させた。質量分析（ＭＳ）計は、ポジティブモード、スプレー電圧３３００Ｖ、ノズル電圧１００Ｖ、ノズル温度１４０度、窒素噴霧ガス３ｍｌ／分に設定し、質量分析計データは、分子量６００〜９００の範囲で３秒ごとにスキャンし、データの取り込みを行った。また、化学発光試薬を０．５ｍｌ／分で移動相に混ぜ、化学発光（ＣＬ）検出を行った。 ＨＰＬＣ分析の結果、図１に示した通り、１０分付近にピークが出現した。この１０分付近のピークは、２１０ｎｍの吸収を持ち、化学発光検出においてもヒドロペルオキシド類に特有のシグナルを与え、また図２のように主要な検出イオンの分子量（ｍ／ｚ ７９０）から、ホスファチジルコリンヒドロペルオキシドであることが示唆された。また、図２に示した通り、ＭＳスペクトルより、このピークにはホスファチジルコリンヒドロペルオキシド以外の夾雑物が含まれることが示唆された。 次に、ホスファチジルコリンヒドロペルオキシドの未純化試料溶液をふた付き試験管にとり、溶媒を留去し、ホスファチジルコリン換算で４ｍＭになるようにアセトニトリル：ジエチルエーテル（１：１）溶液とし、ビニルエーテル化合物である２−メトキシプロペン（和光純薬社製）を８．３Ｍ、および酸性触媒であるピリジニウム−ｐ−トルエンスルホン酸（シグマ−アルドリッチ社製）を８．７ｍＭとなるように付加し、常温で１時間放置し、ホスファチジルコリンヒドロペルオキシド−２−メトキシプロペン付加生成物を含むと推察される試料のアセトニトリル：ジエチルエーテル（１：１）溶液を得た。この溶液を上記と同様のＨＰＬＣ分析条件で分析した。 ホスファチジルコリンヒドロペルオキシドと２−メトキシプロペンは高い収率で反応して付加生成物を与え、図３の通り溶出時間が１６分付近に延長された。 この溶液をリサイクル分取ＨＰＬＣに供した。 カラムはセミ分取用逆相ＯＤＳカラム（ＣＯＳＭＯＳＩＬ ５Ｃ１８−ＭＳ−II、１０×２０ｍｍ＋２０×２５０ｍｍ、ナカライテスク社製）、インジェクターはセミ分取に対応したもの（７７５２ｉ、レオダイン社製）を使用し、カラム温度を４０℃に設定し、移動相はメタノール／水＝１０００／５０の溶液（５ｍＭ酢酸アンモニウムを含む）を使用し、流速１０ｍｌ／分で、アイソクラティック条件で溶出した。ＵＶ ＶＩＳ検出器は、検出波長を２３４ｎｍに設定した。なお、ホスファチジルコリンヒドロペルオキシド−２−メトキシプロペン付加生成物が検出されると同時に、リサイクル弁ＨＰＶ−Ｒｃ（ジーエルサイエンス社製）をリサイクル側へ回転させ、検出が終了するとともにリサイクル弁を通常側へ回転させ、同時に移動相をメタノールに転換し、未反応のホスファチジルコリンおよび他の夾雑物を除去した。 ホスファチジルコリンヒドロペルオキシド−２−メトキシプロペン付加生成物をリサイクル分取し、ホスファチジルコリンヒドロペルオキシド−２−メトキシプロペン付加生成物のメタノール溶液を得た。この溶液を上記と同様のＨＰＬＣ分析条件で分析した。 図４のとおり単一のピークのみが得られ、ＭＳ分析より、この溶液がホスファチジルコリンヒドロペルオキシド−２−メトキシプロペン付加生成物のみを含んでいることが確認された。 ふた付き試験管にホスファチジルコリンヒドロペルオキシド−２−メトキシプロペン付加生成物のメタノール溶液をとり、窒素で乾固し、およそ１ｍＭになるようにメタノールに再溶解させた。そこに２ｍＭ相当量のピリジニウム−ｐ−トルエンスルホン酸を加え、常温で２４時間放置した。この溶液を上記と同様のＨＰＬＣ分析条件で分析した。 図５のとおり、ホスファチジルコリンヒドロペルオキシド−２−メトキシプロペン付加生成物のピークは見られず、ホスファチジルコリンヒドロペルオキシドのピークのみが得られた。従って、２−メトキシプロペンが完全に脱離し、ホスファチジルコリンヒドロペルオキシドが再生されたことが確認された。 この溶液を上記の条件のとおり分取ＨＰＬＣに供し、ホスファチジルコリンヒドロペルオキシドをリサイクル分取し、ホスファチジルコリンヒドロペルオキシドのメタノール溶液を得た。 この溶液を、上記の分析ＨＰＬＣで分析した。 図６に示したＴＩＣ（トータルイオンクロマトグラム）のとおり、他の夾雑物のピークが見られず、同様にＵＶ ２１０ｎｍ吸収の検出においても他のピークは見られなかった。また、図７に示した溶出時間１０分付近のピークのＭＳスペクトルにおいても、他の夾雑物のピークが見られなかった。従って、本発明の精製方法により得られたホスファチジルコリンヒドロペルオキシド標品の純度が極めて高いことが確認された。〔実施例２〕 乾燥し内部をアルゴン置換した三口フラスコに、１−ナフタレン酸メチル（東京化成社製）をおよそ４００ｍｇとり、無水トルエン３ｍｌ、無水テトラヒドロフラン１ｍｌ、無水ピリジン１０μｌを加えてよく混ぜた。これを−４０℃に冷却し、Ｔｅｂｂｅ試薬（μ−クロロビス（η５−シクロペンタジエニル）（ジメチルアルミニウム）−μ−メチレンチタニウム）０．５Ｍトルエン溶液（東京化成社製）６ｍｌを滴下し、穏やかに攪拌しながら−４０℃を３０分保った後、９０分かけて室温まで上昇させた。さらに−１０℃に冷却し、１５％水酸化ナトリウム水溶液を０．９ｍｌ滴下し、ガス発生が終了するまで放置し、室温まで上昇させた。 この溶液にヘキサンおよび水を加え、ヘキサン相を予めヘキサンで洗浄しておいたシリカゲルミニカラム（ＳｅｐＰａｋ（Ｒ） Ｐｌｕｓ ＳＩＬＩＣＡ、ウォーターズ社製）に通し、さらに水で数回洗浄し、ナフタレン環をもつビニルエーテル化合物である１−（２−メトキシ−２−プロペニル）−ナフタレンを含む溶液を得た。この溶液をリサイクル分取ＨＰＬＣに供した。カラムはセミ分取用逆相ＯＤＳカラム（ＣＯＳＭＯＳＩＬ ５Ｃ１８−ＭＳ−II、１０×２０ｍｍ＋２０×２５０ｍｍ、ナカライテスク社製）、インジェクターはセミ分取に対応したもの（７７５２ｉ、レオダイン社製）を使用し、カラム温度を４０℃に設定し、移動相はメタノール／水＝１０００／１００の溶液を使用し、流速１０ｍｌ／分で、アイソクラティック条件で溶出した。ＵＶ ＶＩＳ検出器は、検出波長を２８３ｎｍに設定した。 なお、１−（２−メトキシ−２−プロペニル）−ナフタレンが検出されると同時に、リサイクル弁ＨＰＶ−Ｒｃ（ジーエルサイエンス社製）をリサイクル側へ回転させ、検出が終了するとともにリサイクル弁を通常側へ回転させ、同時に移動相をメタノールに転換し、未反応の１−ナフタレン酸メチルおよび他の夾雑物を除去した。１−（２−メトキシ−２−プロペニル）−ナフタレンをリサイクル分取し、１−（２−メトキシ−２−プロペニル）−ナフタレンのメタノール溶液を得た。この溶液の溶媒を留去し、１−（２−メトキシ−２−プロペニル）−ナフタレンが２００ｍＭになるようにクロロホルムを加えて溶かし、ナフタレン環をもつビニルエーテル化合物の試験溶液とした。 ふた付き試験管にリノール酸メチル（シグマ−アルドリッチ社製）をおよそ３００ｍｇ取り、酸素を１０秒間吹き込み、密栓した。ふた付き試験管を紫外線殺菌灯（ＧＬ１５、東芝社製）から２０ｃｍの距離になるように設置し、紫外線に６時間曝露させた。この試料を、リノール酸メチル換算で１０ｍＭになるようにクロロホルムに溶かし、リノール酸メチルヒドロペルオキシドの未純化試料溶液とした。この溶液に、ビニルエーテル化合物である２−メトキシプロペンを８．３Ｍ、および酸性触媒であるピリジニウム−ｐ−トルエンスルホン酸を８．７ｍＭとなるように付加し、常温で３０分間放置し、リノール酸メチルヒドロペルオキシド−２−メトキシプロペン付加生成物を含む試料のクロロホルム溶液を得た。この溶液をリサイクル分取ＨＰＬＣに供した。 カラムはセミ分取用逆相ＯＤＳカラム（ＣＯＳＭＯＳＩＬ ５Ｃ１８−ＭＳ−II、１０×２０ｍｍ＋２０×２５０ｍｍ、ナカライテスク社製）、インジェクターはセミ分取に対応したもの（７７５２ｉ、レオダイン社製）を使用し、カラム温度を４０℃に設定し、移動相はメタノール／水＝１０００／２００の溶液を使用し、流速１０ｍｌ／分で、アイソクラティック条件で溶出した。ＵＶ ＶＩＳ検出器は、検出波長を２１０ｎｍに設定した。 なお、リノール酸メチルヒドロペルオキシド−２−メトキシプロペン付加生成物は４種の構造異性体であるが、そのうち１番目に溶出される１３−ＥＺ−ＯＯＨ、および２番目に溶出される９−ＥＺ−ＯＯＨ（併せてリノール酸メチルヒドロペルオキシド−２−メトキシプロペン付加生成物のシス−トランス体と呼称する）が検出されると同時に、リサイクル弁ＨＰＶ−Ｒｃ（ジーエルサイエンス社製）をリサイクル側へ回転させ、検出が終了するとともにリサイクル弁を通常側へ回転させ、同時に移動相をメタノールに転換し、未反応のリノール酸メチルおよび他の夾雑物を除去した。リノール酸メチルヒドロペルオキシド−２−メトキシプロペン付加生成物のシス−トランス体をリサイクル分取し、リノール酸メチルヒドロペルオキシド−２−メトキシプロペン付加生成物のシス−トランス体のメタノール溶液を得た。 この溶液の溶媒を留去し、窒素で乾固し、およそ１ｍＭになるようにメタノールに再溶解させた。そこに２ｍＭ相当量のピリジニウム−ｐ−トルエンスルホン酸を加え、常温で２４時間放置し、リノール酸メチルヒドロペルオキシドのシス−トランス体を再生させた。この溶液を上記の条件のとおり分取ＨＰＬＣに供し、リノール酸メチルヒドロペルオキシドのシス−トランス体をリサイクル分取し、リノール酸メチルヒドロペルオキシドのシス−トランス体のメタノール溶液を得た。この溶液の溶媒を留去し、リノール酸メチルヒドロペルオキシドのシス−トランス体の総量で２ｍＭになるようにメタノールを加えて溶かし、ヒドロペルオキシド類の試験溶液とした。 上記で作成したリノール酸メチルヒドロペルオキシドのシス−トランス体溶液（ヒドロペルオキシド類の試験溶液）をＨＰＬＣ―ＵＶ−ＭＳ−ＣＬ分析装置で分析した。 分離カラムは分析用逆相ＯＤＳカラム（ＣＡＰＣＥＬＬ ＰＡＫ Ｃ１８ ＳＧ１２０、４．６×５０ｍｍ＋４．６×２５０ｍｍ、資生堂社製）、インジェクター（７７５２ｉ、レオダイン社製）を使用した。また検出器は、ＵＶ ＶＩＳ検出器（ＵＶ−９７０、日本分光社製）、蛍光検出器（ＲＦ−１０ＡＸＬ、島津社製）、ＥＳＩ ＴＯＦ型質量分析計（Ｍａｒｉｎｅｒ、Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社製）を使用した。また、ヒドロペルオキシドの検出に化学発光検出器（８２５−ＣＬ、日本分光社製）、化学発光試薬用のポンプ（ＰＵ−９８０）を用いた。カラム温度を４０℃に設定し、移動相はメタノール／水＝１０００／１０００の溶液（５ｍＭ酢酸アンモニウム（和光純薬社製）を含む）を使用し、流速１ｍｌ／分で、アイソクラティック条件で溶出した。ＵＶ ＶＩＳ検出器は、検出波長を２３４ｎｍに設定した。蛍光検出器は、励起波長を２８３ｎｍ、検出波長を３３０ｎｍとし、ナフタレン環の検出に最適化した。移動相は質量分析計に導入する分が０．０５ｍｌ／分、化学発光検出器に導入する分が０．９５ｍｌ／分になるように分岐させた。質量分析（ＭＳ）計は、ポジティブモード、スプレー電圧３３００Ｖ、ノズル電圧１００Ｖ、ノズル温度１４０度、窒素噴霧ガス３ｍｌ／分に設定し、質量分析計データは、分子量２００〜６００の範囲で３秒ごとにスキャンし、データの取り込みを行った。また、化学発光試薬を０．５ｍｌ／分で移動相に混ぜ、化学発光（ＣＬ）検出を行った。 ＨＰＬＣ分析の結果、６分付近にピークが出現した。この６分付近のピークは、図８のように２３４ｎｍの吸収を持ち、図９のように励起波長２８３ｎｍ／検出波長３３０ｎｍにおいては蛍光性を持たず、化学発光検出においてもヒドロペルオキシド類に特有のシグナルを与え、図１０のように主要な検出イオンの分子量（ｍ／ｚ ３４９．２）から、リノール酸メチルヒドロペルオキシドであることが確認された。 次に、上記で作成したリノール酸メチルヒドロペルオキシドのシス−トランス体溶液１０μｌ（リノール酸メチルヒドロペルオキシドで２０ｎｍｏｌ相当）を３００μｌ容の珪酸ガラス製リアクションバイアルにとり、溶媒を留去し、上記で作成したナフタレン環をもつビニルエーテル化合物である１−（２−メトキシ−２−プロペニル）−ナフタレンの２００ｍＭクロロホルム溶液を１００μｌ、および酸性触媒であるピリジニウム−ｐ−トルエンスルホン酸（シグマ−アルドリッチ社製）を１ｍＭとなるように加え、４℃で３０分間放置し、リノール酸メチルヒドロペルオキシドのナフタレンラベル化物を含むと推察される試料のクロロホルム溶液を得た。この溶液を上記と同様のＨＰＬＣ分析条件で分析した。 図１３のようにＭＳのＳＩＣ（シングルイオンクロマトグラム）においてリノール酸メチルヒドロペルオキシドに相当する分子量（ｍ／ｚ ３４９．２±０．５）のピークは得られず、化学発光検出においてもヒドロペルオキシド類に特有のシグナルを得られなかった。一方、図１２の通り２９分付近に励起波長２８３ｎｍ／検出波長３３０ｎｍにおける蛍光検出のピークが出現し、図１４のようにリノール酸メチルヒドロペルオキシド−１−（２−メトキシ−２−プロペニル）−ナフタレン付加物（ナフタレンラベル化物）のナフタレン付加イオンに相当する分子量（ｍ／ｚ ５４７．３±０．５）におけるＳＩＣ（シングルイオンクロマトグラム）においても同位置に検出ピークを得たことから、このピークがリノール酸メチルヒドロペルオキシド−１−（２−メトキシ−２−プロペニル）−ナフタレン付加物（ナフタレンラベル化物）によるものであることが示唆された。図１５の通り、このピークに相当するＭＳスペクトルにおいても、ナトリウム付加イオンと併せてアンモニウム付加イオン（ｍ／ｚ ５４２．４）が検出されたことから、リノール酸メチルヒドロペルオキシド−１−（２−メトキシ−２−プロペニル）−ナフタレン付加物（ナフタレンラベル化物）が高収率で得られたことが確認された。 このピークは、反応収率１００％とした場合、リノール酸メチルヒドロペルオキシド−１−（２−メトキシ−２−プロペニル）−ナフタレン付加物（ナフタレンラベル化物）のおよそ１００ｐｍｏｌに相当するが、得られた蛍光検出ピークの面積は、予め測定しておいた１−ナフタレン酸メチル１００ｐｍｏｌの蛍光検出ピークの面積とよく一致したため、この検出方法における定量性が確認された。ホスファチジルコリンヒドロペルオキシドの未純化試料溶液をＵＶ−ＨＰＬＣに供し、２１０ｎｍ吸収の検出により得られたクロマトグラムである。横軸は保持時間（分）、縦軸は相対強度（％）で示す。ホスファチジルコリンヒドロペルオキシドの未純化試料溶液をＭＳ−ＨＰＬＣに供し、１０分付近に出現したピークのＭＳスペクトルである。横軸は分子量、縦軸は相対強度（％）で示す。ホスファチジルコリンヒドロペルオキシドの未純化試料に２−メトキシプロペンを反応させた溶液をＵＶ−ＨＰＬＣに供し、２１０ｎｍ吸収の検出により得られたクロマトグラムである。横軸は保持時間（分）、縦軸は相対強度（％）で示す。分取ＨＰＬＣにより得たホスファチジルコリンヒドロペルオキシド−２−メトキシプロペン付加生成物溶液をＵＶ−ＨＰＬＣに供し、２１０ｎｍ吸収の検出により得られたクロマトグラムである。横軸は保持時間（分）、縦軸は相対強度（％）で示す。ホスファチジルコリンヒドロペルオキシド−２−メトキシプロペン付加生成物に酸性触媒を反応させた溶液をＵＶ−ＨＰＬＣに供し、２１０ｎｍ吸収の検出により得られたクロマトグラムである。横軸は保持時間（分）、縦軸は相対強度（％）で示す。酸触媒により再生し、さらに分取ＨＰＬＣで精製したホスファチジルコリンヒドロペルオキシド溶液をＭＳ−ＨＰＬＣに供し、得られたＴＩＣ（トータルイオンクロマトグラム）である。横軸は保持時間（分）、縦軸は相対強度（％）で示す。酸触媒により再生し、さらに分取ＨＰＬＣで精製したホスファチジルコリンヒドロペルオキシド溶液をＭＳ−ＨＰＬＣに供し、１０分付近に出現したピークのＭＳスペクトルである。横軸は分子量、縦軸は相対強度（％）で示す。リノール酸メチルヒドロペルオキシドのシス−トランス体溶液をＵＶ−ＨＰＬＣに供し、２３４ｎｍ吸収の検出により得られたクロマトグラムである。横軸は保持時間（分）、縦軸は相対強度（％）で示す。リノール酸メチルヒドロペルオキシドのシス−トランス体溶液をＦＬ−ＨＰＬＣに供し、励起波長２８３ｎｍ／検出波長３３０ｎｍにおける蛍光検出により得られたクロマトグラムである。横軸は保持時間（分）、縦軸は相対強度（％）で示す。リノール酸メチルヒドロペルオキシドのシス−トランス体溶液をＭＳ−ＨＰＬＣに供し、リノール酸メチルヒドロペルオキシドのナトリウム付加イオンに相当する分子量（ｍ／ｚ ３４９．２±０．５）におけるＳＩＣ（シングルイオンクロマトグラム）である。横軸は保持時間（分）、縦軸は検出イオン数（個）で示す。リノール酸メチルヒドロペルオキシドのシス−トランス体溶液をＭＳ−ＨＰＬＣに供し、リノール酸メチルヒドロペルオキシド−１−（２−メトキシ−２−プロペニル）−ナフタレン付加物（ナフタレンラベル化物）のナフタレン付加イオンに相当する分子量（ｍ／ｚ ５４７．３±０．５）におけるＳＩＣ（シングルイオンクロマトグラム）である。横軸は保持時間（分）、縦軸は検出イオン数（個）で示す。リノール酸メチルヒドロペルオキシドのシス−トランス体にナフタレン環をもつビニルエーテル化合物である１−（２−メトキシ−２−プロペニル）−ナフタレンを反応させた溶液をＦＬ−ＨＰＬＣに供し、励起波長２８３ｎｍ／検出波長３３０ｎｍにおける蛍光検出により得られたクロマトグラムである。横軸は保持時間（分）、縦軸は相対強度（％）で示す。リノール酸メチルヒドロペルオキシドのシス−トランス体にナフタレン環をもつビニルエーテル化合物である１−（２−メトキシ−２−プロペニル）−ナフタレンを反応させた溶液をＭＳ−ＨＰＬＣに供し、リノール酸メチルヒドロペルオキシドのナトリウム付加イオンに相当する分子量（ｍ／ｚ ３４９．２±０．５）におけるＳＩＣ（シングルイオンクロマトグラム）である。横軸は保持時間（分）、縦軸は検出イオン数（個）で示す。リノール酸メチルヒドロペルオキシドのシス−トランス体にナフタレン環をもつビニルエーテル化合物である１−（２−メトキシ−２−プロペニル）−ナフタレンを反応させた溶液をＭＳ−ＨＰＬＣに供し、リノール酸メチルヒドロペルオキシド−１−（２−メトキシ−２−プロペニル）−ナフタレン付加物（ナフタレンラベル化物）のナフタレン付加イオンに相当する分子量（ｍ／ｚ ３４９．２±０．５）におけるＳＩＣ（シングルイオンクロマトグラム）である。横軸は保持時間（分）、縦軸は検出イオン数（個）で示す。リノール酸メチルヒドロペルオキシドのシス−トランス体にナフタレン環をもつビニルエーテル化合物である１−（２−メトキシ−２−プロペニル）−ナフタレンを反応させた溶液をＭＳ−ＨＰＬＣに供し、１０分付近に出現したピークのＭＳスペクトルである。横軸は分子量、縦軸は相対強度（％）で示す。 ヒドロペルオキシドの有するヒドロペルオキシド基に、ビニルエーテルを付加させて、ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物を合成する段階と、 前記ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物を回収する段階と、 回収された前記ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物から、ビニルエーテルを脱離させて、前記ヒドロペルオキシドを再生する段階と、を含む、ヒドロペルオキシドの精製方法。 前記ヒドロペルオキシドは、化学式１で表される構造を有する、請求項１に記載のヒドロペルオキシドの精製方法。（式中、Ｒ１は、置換基を有していてもよい炭化水素基、または置換基を有していてもよいシリル基である） 前記ビニルエーテルは、化学式２で表される構造を有する、請求項１または２に記載のヒドロペルオキシドの精製方法。（式中、Ｒ２は、置換基を有していてもよい炭化水素の二価の基、または置換基を有していてもよいシリル基であり、Ｒ３は、置換基を有していてもよいアルキル基、または置換基を有していてもよいシリル基であり、Ｒ４は、水素原子、金属原子、ハロゲン原子、置換基を有していてもよいアルキル基、または置換基を有していてもよいシリル基である） ヒドロペルオキシドの有するヒドロペルオキシド基に、ビニルエーテルを付加させて、ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物を合成する段階と、 前記ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物を検出する段階と、を含む、ヒドロペルオキシドの検出方法。 前記ヒドロペルオキシドは、化学式１で表される構造を有する、請求項４に記載のヒドロペルオキシドの検出方法。（式中、Ｒ１は、置換基を有していてもよい炭化水素基、または置換基を有していてもよいシリル基である） 前記ビニルエーテルは、化学式２で表される構造を有する、請求項４または５に記載のヒドロペルオキシドの検出方法。（式中、Ｒ２は、置換基を有していてもよい炭化水素の二価の基、または置換基を有していてもよいシリル基であり、Ｒ３は、置換基を有していてもよいアルキル基、または置換基を有していてもよいシリル基であり、Ｒ４は、水素原子、金属原子、ハロゲン原子、置換基を有していてもよいアルキル基、または置換基を有していてもよいシリル基である） 前記ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物は、蛍光、燐光、化学発光、酸化還元力、吸光度、放射線量、試薬との反応性、生成した分子の分子量、光散乱度、抗体との結合性、および酵素との結合性からなる群より選択される１以上の特性を用いて検出される、請求項４〜６のいずれか１項に記載のヒドロペルオキシドの検出方法。 【課題】 夾雑物を含むヒドロペルオキシドを精製し、高純度のヒドロペルオキシドを得る方法を提供する。また、優れたヒドロペルオキシドの検出方法を提供する。【解決手段】 ヒドロペルオキシドの有するヒドロペルオキシド基に、ビニルエーテルを付加させて、ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物を合成する段階と、前記ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物を回収する段階と、回収された前記ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物から、ビニルエーテルを脱離させて、前記ヒドロペルオキシドを再生する段階とを含む、ヒドロペルオキシドの精製方法である。また、ヒドロペルオキシドの有するヒドロペルオキシド基に、ビニルエーテルを付加させて、ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物を合成する段階と、前記ヒドロペルオキシドのビニルエーテル付加物を検出する段階とを含む、ヒドロペルオキシドの検出方法である。【選択図】 なし