生命科学関連特許情報
| タイトル： | 公開特許公報(A)_ウイルス不活化剤およびウイルス不活化方法、該不活化剤を備えたフィルター、並びに該フィルターを具備する空気調和機 |
| 出願番号： | 2003348670 |
| 年次： | 2005 |
| IPC分類： | 7,C12N7/04,A01N41/02,A01N47/28,A01N63/00,A61L9/01,B01D39/14,F24F1/00,F24F11/02,F24F13/28 |
特許情報キャッシュ
中嶋 祐二 田中 大輔 橋爪 克浩 JP 2005095112 公開特許公報(A) 20050414 2003348670 20031007 ウイルス不活化剤およびウイルス不活化方法、該不活化剤を備えたフィルター、並びに該フィルターを具備する空気調和機 三菱重工業株式会社 000006208 鈴江 武彦 100058479 河野 哲 100091351 村松 貞男 100084618 橋本 良郎 100092196 風間 鉄也 100100952 中嶋 祐二 田中 大輔 橋爪 克浩 JP 2003207883 20030819 7C12N7/04A01N41/02A01N47/28A01N63/00A61L9/01B01D39/14F24F1/00F24F11/02F24F13/28 JPC12N7/04A01N41/02A01N47/28 AA01N63/00 DA61L9/01 PB01D39/14 GF24F1/00 361CF24F11/02 MF24F11/02 102DF24F1/00 371A 21 ＯＬ 37 3L050 3L051 3L060 4B065 4C080 4D019 4H011 3L050BD05 3L051BB01 3L051BB05 3L051BC04 3L060AA07 3L060CC02 3L060DD07 3L060EE10 4B065AA95X 4B065AA98X 4B065AC20 4B065BD22 4B065BD26 4B065BD45 4B065CA44 4B065CA60 4C080AA03 4C080BB05 4C080HH09 4C080JJ06 4C080KK08 4C080LL02 4C080LL04 4C080MM17 4C080MM18 4C080MM40 4C080QQ17 4D019AA01 4D019BA13 4D019BB03 4D019BC06 4D019CB04 4D019CB06 4H011AA02 4H011AA03 4H011AA04 4H011BA01 4H011BA06 4H011BB07 4H011BB14 4H011BB21 4H011BB22 4H011BC19 4H011DA07 4H011DD05 4H011DF04 4H011DH02 4H011DH04 4H011DH06 本発明はウイルスを不活化するウイルス不活化剤およびウイルス不活化方法に関し、さらに、該不活化剤を備えたウイルス不活化フィルターおよび該フィルターを具備する空気調和機に関する。 ウイルスが原因となる感染症は現在でも依然として問題になっており、例えばインフルエンザの大流行などは毎年マスメディアを賑わしている。インフルエンザなどについては、医薬品開発による対処が既に行われており、ワクチンを流行前に接種することで感染を防げる可能性が高い。しかし、ごく最近に騒動になったＳＡＲＳウイルスのように、これまでに発見されていない未知のウイルスが突如出現した場合、そのウイルスに対応するワクチンの開発が間に合わず、多数の感染者を出すに至る。また、例えば天然痘のように既に撲滅されたとされるウイルスなども、バイオテロや感染の進入などによって人為的に感染が拡大されないとも限らない。そうした場合、例えば種痘未接種者などのように、免疫を持たない人間が死の危険性に曝されることになる。このような未知のウイルス、或いは人の記憶から忘れ去られたウイルスに対して我々人類が取れる対応としては、（１）感染の可能性がある地域に近寄らない、（２）感染の可能性がある人物と接触しない、などがあるが、社会全体の生産性が低下するなど現実的な対処法とはいえない。 一般的に、ウイルスを不活化するにはアルコールやアルカリ、次亜塩素酸などを噴霧することが有効である。しかしながら、これらの方法はウイルスを一時的に不活化するのみである。また、酸・アルカリなどの薬品は、人間を始めとした生物にとって危険性が高く、迂闊に取り扱えないなどの問題がある。 もしウイルスを持続的に不活化する方法が開発されれば、例えば空気調和機に使用できるような効率の良いウイルス不活化システムを開発することも可能である。そのような空調設備を完備することによって、ウイルス蔓延の危険性が生じた場合でも、閉鎖空間を安全に維持することが可能であるなどの利点が考えられる。特許文献１には、酵素を固定化した空気浄化フィルターが開示されている。しかしながら、特許文献１の空気浄化フィルターは微生物を殺菌するためのものであり、さらに酵素のみを使用していることから、ウイルスを除去する能力に乏しいと考えられる。国際公開第９８／０４３３４号パンフレット このような状況に鑑み、本発明は、空気調和機などに応用することが可能であり、効果的且つ持続的にウイルスを不活化するウイルス不活化剤およびウイルス不活化方法を提供することを目的とする。さらに本発明は、該不活化剤を具備するウイルス不活化フィルター、および該フィルターを具備する空気調和機を提供することを目的とする。 上記目的を達成するために、本発明では、その一つの側面において、タンパク質変性剤およびタンパク質分解酵素から成る群から選択された一つ以上の活性成分を含み、液相においてウイルスを不活化することを特徴とするウイルス不活化剤を提供する。 また、本発明のもう一つの側面に従えば、タンパク質変性剤およびタンパク質分解酵素の両方を含み、液相においてウイルスを不活化することを特徴とするウイルス不活化剤を提供する。 前記タンパク質変性剤は尿素であり、また、前記酵素はプロテアーゼであることが好ましく、特に、pfu protease Sであることが好ましい。 好ましくは、前記ウイルスはエンベロープを有するウイルスであるかまたはエンベロープを有さないウイルスである。 前記不活化剤は、殺菌作用および殺真菌作用を有する また、本発明はもう一つの側面に従って、上記のウイルス不活化剤が存在する溶液にウイルスを接触させることを特徴とする、ウイルスを不活化する方法を提供する。 また、本発明はもう一つの側面に従って、ウイルス不活化フィルターであって、ウイルスをトラップするフィルターと、このフィルターに付着された上記のウイルス不活化剤を具備することを特徴とするウイルス不活化フィルターを提供する。 また、本発明はもう一つの側面に従って、室内の空気を取り入れるための吸込口と、該吸込口から取り入れた空気と冷媒とを熱交換させて冷却または加熱するための室内熱交換器と、該室内熱交換器で熱交換された空気を室内に戻すための吹出口と、前記吸込口から取り入れて熱交換した空気を前記吹出口から室内に吹き出すための室内送風手段と、前記空気が流れる内部空間に配設されたウイルス不活化剤を担持するウイルス不活化フィルターと、前記内部空間を前記ウイルス不活化剤が活性化する雰囲気に維持する不活化剤活性化手段と、を具備してなることを特徴とする空調用室内ユニットを提供する。 好ましくは、前記空調用室内ユニットには、前記内部空間に連通する開口部の一部または全部を閉じて、前記内部空間を半密閉状態または密閉状態に保持する開閉手段が設けられる。 好ましくは、前記空調用室内ユニットは、前記内部空間を密閉状態に保持し、前記室内送風手段を運転させて密閉空間内で前記ウイルス不活化剤が活性化する雰囲気とされた空気を撹拌する。 好ましくは、前記不活化剤活性化手段は、前記室内熱交換器の冷却運転により生成された凝縮水を、前記冷却運転の後に行われる前記室内熱交換器の加熱運転により加熱して気化する。 好ましくは、前記不活化剤活性化手段は、前記室内熱交換器の冷却運転により生成されてドレン受けに貯留された凝縮水を加熱手段により加熱して気化する。 好ましくは、前記空調用室内ユニットは、前記内部空間を前記不活化剤活性化手段により高温多湿に維持した後、前記不活化剤担持体から水分を除去する劣化防止運転を行う。 好ましくは、前記空調用室内ユニットは、前記不活化剤担持体の前記ウイルス不活化剤を活性化する前に、前記内部空間に室内の空気を取り入れて前記不活化剤担持体を通過させて流すウイルス捕集運転を行う。 さらに、本発明の一つの側面に従って上記の空調用室内ユニットと、冷媒を圧縮するための圧縮機、及び冷媒と室内の空気との熱交換を行わせるための室外熱交換器を有する空調用室外ユニットと、これら空調用室内ユニット及び空調用室外ユニットを連結するとともに、冷媒をこれら空調用室内ユニット及び空調用室内ユニットの間で循環させるための冷媒配管と、を備えていることを特徴とする空気調和機が提供される。 本発明に従うと、人体に害を与えずにウイルスを効果的および持続的に不活化するウイルス不活化剤が提供される。 また、該不活化剤を具備し、室内のウイルス量を低減させることが可能な空調用室内ユニットおよび空気調和機が提供される。 １．ウイルス不活化剤 ウイルスは、一般にタンパク質および核酸を基本組成とする感染性物質である。本発明は、本発明者らが、活性成分としてタンパク質変性剤またはタンパク質分解酵素を用いることによってウイルスを不活化できることに加えて、人体に害を与えず、且つ、長期間効果が持続し、さらに、経済的に優れたウイルス不活化が可能であることを明らかにしたことに基づく。また、本発明のウイルス不活化剤は、例えば空気調和機などの機械に組み込むことも容易であり、実用化に優れたウイルス不活化剤である。 さらに、本発明のウイルス不活化剤は、ウイルスのみならず、微生物、特に細菌の殺菌作用を有し、また、カビ等の真菌の殺真菌作用を有する。 本発明で用いられるタンパク質変性剤は、ウイルスのタンパク質を変性させ、これによってウイルスを不活化させるものである。タンパク質変性剤には尿素、塩酸グアニジン、およびドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）のような界面活性剤などを用いることができる。 タンパク質分解酵素とは、タンパク質およびペプチドを分解する性質を有する酵素を総括的に示す。本発明で用いられるタンパク質分解酵素は、ウイルスのタンパク質を分解し、これによってウイルスを不活化させるものであり、特にプロテアーゼが用いられる。プロテアーゼは周知の酸性、中性および塩基性の何れのプロテアーゼであってよい。例えば、トリプシンなどのセリンプロテアーゼ、パパイン、カルパイン、カテプシンＢおよびカテプシンＬなどのシステインプロテアーゼ、ペプシン、レニンおよびカテプシンＤなどのアスパラギン酸プロテアーゼおよびメタロプロテアーゼなどのプロテアーゼであってよい。しかしながら特に好ましいプロテアーゼは、タカラバイオ社から販売されているpfu protease Sである。このプロテアーゼは、耐熱性が高く、また、尿素やＳＤＳのような変性剤と共存しても耐久性が高いことを特徴とする。 プロテアーゼによりウイルスを不活化する場合、使用されるプロテアーゼの至適条件を考慮して、温度および補酵素などの条件を実施者が任意に選択してよい。 本発明においてウイルスの不活化とは、ウイルスの感染力が失われることを意味する。上記の変性剤や酵素のような活性成分によってウイルスのタンパク質を変性あるいは分解することによって、ウイルスの感染力を失わせることができる。また、殺菌作用、殺真菌作用とは、細菌または真菌を死滅させ、或いはその生育を阻害することを意味する。 酵素や変性剤による反応は、液相において行われることが好ましい。従って本発明のウイルス不活化剤も、溶液中およびそれに準じた液相において用いられることが好ましい。 さらに本発明は、一つの側面において、ウイルスの不活化にタンパク質分解酵素とタンパク質変性剤を併用して使用するというユニークで且つ新しい発想を基に達成された。従って、本発明のこの側面において重要な点の１つは、それらの濃度および処理時間などの詳細な条件ではなく、タンパク質分解酵素とタンパク質変性剤の併用処理を利用してウイルスを不活化すること自体にある。言い換えれば、タンパク質分解酵素の種類および濃度、タンパク質変性剤の種類および濃度などの条件は、可能な組み合わせの全てが本発明に含まれるものである。 ウイルスには、本発明で用いたタンパク質分解酵素と類似した効果を持つ溶菌酵素を有するものもある。そのようなウイルスは当然ながらそれらの酵素に対して耐性を持っているため、本発明のタンパク質分解酵素によっても不活化することが困難である。しかしながら、タンパク質変性剤がウイルスのタンパク質を変性することによって、酵素に耐性を有するウイルスにも分解酵素が作用しやすくなるなどの利点が考えられる。また、タンパク質変性剤およびタンパク質分解酵素の両方を併用することによって、分解酵素の使用濃度を低くすることができる。 このように、本発明の一つの側面によれば、タンパク質変性剤およびタンパク質分解酵素の両方を併用することによって、後述の実施例で示すように、より効率的にウイルスの不活化を行うことが可能である。 ウイルスの中には、タンパク質構造体の外側を取り巻く膜構造物を有するものもあり、これをエンベロープという。これは細胞膜同様、脂質二重膜であり、ウイルス特異的なタンパク質がその上に存在している。本発明は、エンベロープを有するウイルスおよび有さないウイルスの両方を対象とするものであり、それによって、広範囲にわたるウイルスに対して有効な不活化剤および不活化方法を提供するものである。 ２．ウイルス不活化方法 以下、タンパク質変性剤およびタンパク質分解酵素を用いてウイルスを不活化する方法に関して説明する。 本発明に従って、タンパク質変性剤を使用してウイルスを不活化する場合、例えば尿素を用いることができ、尿素は約９Ｍ程度の高濃度で用いることが好ましい。 また、本発明に従って、タンパク質分解酵素を使用してウイルスを不活化する場合、例えばプロテアーゼを用いることができ、その濃度は、例えばpfu プロテアーゼＳ（pfu protease S、タカラバイオ社販売）を用いた場合で最終濃度２％であることが好ましい。また、プロテアーゼを使用する場合、処理温度や処理時間などの諸条件によって得られる効果は変動する。従って、使用されるプロテアーゼの濃度は上記に限定されるものではなく、種々の条件で有効に使用することが可能である。 さらに、本発明に従ってウイルスを不活化する場合に、タンパク質変性剤およびタンパク質分解酵素を共存させることにより、効率的にウイルスを不活化させることができる。例えば、pfu プロテアーゼＳ（pfu protease S、タカラバイオ社販売）を用いた場合、単独では最終濃度が２％程度必要であるが、９Ｍの尿素を共存させた場合では０．２％程度の濃度で十分な不活化効果を得ることができる。 ３．空気調和機への利用 本発明のウイルス不活化方法は空気調和機に適用させることが可能である。即ち、その一つの側面に従えば、本発明はウイルス不活化フィルターを提供し、さらに、このウイルス不活化フィルターを空調用室内ユニットに具備する空気調和機を提供するものである。 （１）ウイルス不活化フィルター 本発明に従って提供されるウイルス不活化フィルターは、ウイルスをトラップするフィルターと、このフィルターに付着されたウイルス不活化剤を具備するものである。ウイルスをトラップするフィルターは、例えば不織布などで構成することができる。ウイルス不活化剤は、タンパク質変性剤およびタンパク質分解酵素から成る群から選択された一つ以上の活性成分を含む。このウイルス不活化剤を前述のフィルターに付着させることによって、ウイルスをトラップし不活化する。ウイルス不活化剤をフィルターに付着させる方法としては、ウイルス不活化剤をフィルターまたは粒子などの担体に後述の方法で担持させることができる。 本発明のウイルス不活化剤は液相においてウイルスを不活化するものであるが、フィルターの繊維または粒子などの担体に吸湿性を有する材質を用いることによって、繊維の表面または担体粒子の内部などに微小な液相を生じさせ、これによって不活化剤を活性化させることが可能である。 フィルターの材質としては、例えばポリエチレン（ＰＥ）、ポリプロピレン（ＰＰ）、ポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）、およびポリアミド（ＰＡ）などから成る繊維を使用することができる。また、担体の材質としては、例えばアクリル酸−ビニルアルコール共重合体、アクリル酸−ナトリウム重合体などの吸水性ポリマーを使用することができる。 フィルターを吸湿性繊維で構成する場合には、撥水性繊維を組み合わせて用いてもよい。撥水性繊維を組み込むことにより、フィルターに形状維持効果を与えることができ、フィルターが多量の湿気を吸収した場合でも型の崩れを防ぐことが可能である。後述するように、フィルターの型としては種々の構成が可能であるが、例えばプリーツ型などを採用することもできる。撥水性繊維による形状維持効果は、特にプリーツ型のような構成を有するフィルターにおいて有効である。 撥水性繊維を組み合わせることにより、フィルターに不活化剤を付着させる際に、浸漬・吹きつけなどで多量の湿気が与えられる場合でも、フィルター型の構成を破損することなく維持することができる。従って、この撥水性繊維は、フィルターに不活化剤を付着させる前に吸湿性繊維と組み合わせることが重要である。 また、フィルター型の構成が維持されることによって、フィルターの単位面積あたりに担持される不活化剤の量も均一にすることができる。 さらに、後述するように空調機に備えられたフィルターには、風圧による外力が加わるが、撥水性繊維を加えることでフィルターの強度を増すことができ、フィルターの変形を防ぐことができる。 （２）空気調和機 本発明に従って提供される空気調和機は、上述したウイルス不活化フィルターを具備するものである。ウイルス不活化フィルターは、空調用室内ユニットに備えられ、空気調和機が作動した際に吸い込む空気がこのフィルターを通過する構成とする。このような構成のため、空気調和機を作動することによって室内のウイルスをフィルターに捕集し、不活化させることが可能である。 （実施例） 以下、実施例を参照して本発明を更に詳しく説明する。実施例では、実験室で操作可能なウイルスおよび細菌を用い、本発明によるウイルス不活化剤の効果を確認するための基礎試験を行った。また、不活化剤を備えたフィルターを用い、ウイルス、細菌およびカビの不活化試験を行った。 １．不活化剤および不活化方法（１）材料 実験室で扱えるウイルスの代表例として、細菌を宿主とするウイルス、即ちバクテリオファージを用いた。バクテリオファージと大腸菌による実験系は、例えばインフルエンザウイルスと人間におけるウイルスの感染および増殖のモデルと考えられる。このバクテリオファージを用いた試験を実施し、試験管内の液中においてバクテリオファージと酵素または変性剤を接触させることによるバクテリオファージの不活化を確認した。 バクテリオファージとして、λファージおよびＭ１３ファージを用いた。これらのファージは、分子生物学的に最もよく研究されており、現在でもｃＤＮＡライブラリーの構築、遺伝子の発現解析などに多用されているファージである。λファージはテンペレートファージであり、細菌細胞に感染した時、増殖して細胞を殺す場合（溶菌感染）と、溶原化してプロファージとなり、宿主菌と行動を共にする場合（溶原化）の二つの生活環をもつファージである。Ｍ１３ファージは繊維状の一本鎖ＤＮＡファージである。これは宿主内で増殖した後、宿主を溶菌することなく菌体外に放出される。それぞれ、大腸菌（E.coli）のＸＬ１−Ｂｌｕｅ株およびＪＭ１０９株を宿主とする。双方とも、宿主と同様の性質を保持しない菌株には感染しない。このように性質や宿主が異なるファージを用いて試験することにより、幅広いウイルスに対する適用可能性を評価することができる。なお、大腸菌はＬＢ培地（表１）によって培養し、三角フラスコで一晩、３７℃で振盪培養した。 （２）方法 ＜実施例１ λファージ液の作成＞ λＺＡＰII（登録商標） vector kit (undigested)およびGigapack（登録商標）III Packaging kit（共に東洋紡販売）を用い、添付マニュアルに従いλファージＤＮＡをパッケージングし、λファージを作成した。 宿主菌株としては大腸菌（E. coli ）XL1-Blue MRF’を用いた。予め培養しておいたXL1-Blue MRF’に作成したλファージを感染させ、さらに培養した。その後、培養液を遠心分離し、λファージ原液を得た。この原液を適度に希釈した溶液10μLをXL1-Blue MRF’（ＯＤ〜１にＳＭ緩衝液（表２）で洗浄済み）１００μLと混合し、ＬＢ培地を用いて３7℃で１５分間インキュベーションした。この培養液に、0.7%アガロース（agarose LO3、タカラバイオ社販売）を含むＬＢ培地（オートクレーブ滅菌後、恒温槽にて45℃に保持していたもの。以降はトップアガーと称す。）を４mL加え、攪拌した後、あらかじめ用意しておいた1.5％寒天を含む固体ＬＢ培地上に注いだ。トップアガーが十分に冷えて固化したことを確認し、37℃で一晩インキュベーションした。 インキュベーション後の固体培地にプラークが出現していることを確認し、５mLのＳＭ緩衝液を加え、冷蔵庫にて１日間静置した。固体培地を冷蔵庫から取り出し、ＳＭ緩衝液を回収し、遠心分離機にかけた（6000×g、20分、２℃）。得られた上清をλファージ液として以降の不活化試験で用いた。なお、λファージ液は0.5mLずつ1.5mL容のエッペンドルフ社製チューブ（以降、１.５mL容チューブと称す。）に分注し、クロロフォルムを一滴加えた後、４℃で保存した。 ＜実施例２ λファージの活性試験＞ 以降の試験に使用するλファージの実験系が確立していることを証明するために、λファージの活性試験を行い、回収率を算出した。 上記の実施例１で作成したλファージ液40μLに、360μLの生理食塩リン酸緩衝液（ＰＢＳ）＋10mM MgSO4・7H2O液を添加した。試験中に起こり得るｐＨの変動を抑えるためにＰＢＳを用い、不活化剤に起因しないλファージの感染力低下を最小限にするために10ｍＭ ＭｇＳＯ4を共存させた。 溶液は1.5mL容チューブに入れ、さらに600μLのＰＥＧ液（20% PEG6000、2.5M NaCl）を加え、氷中で３時間静置した。その後、15,000rpmで20分間遠心分離し、上清を捨てた。得られた沈殿物（λファージ・ＰＥＧ複合物）にＳＭ緩衝液を200μL加え、沈殿物をよく懸濁した。ＰＥＧ液で処理したこのλファージ溶液を、ＰＥＧ沈殿処理液とした。 ＰＥＧ沈殿処理液をＳＭ緩衝液で希釈した液10μLと、XL1-Blue MRF’のＳＭ懸濁液(100μL)を混合し、37℃で１５分間インキュベーションした。インキュベーション終了後、トップアガーを３mL加えて攪拌し、あらかじめ用意しておいた1.5％寒天を含む固体ＬＢ培地上に注いだ。37℃で５時間インキュベーションした後、出現したプラーク数を計数した。得られたプラーク数から、pfu（プラーク形成単位、pfu/mL）を求めた。 比較対照として、実施例１で作成したλファージ液をＰＥＧ沈殿処理を行わずにXL1-Blue MRF’に感染させ、プラーク数を計数してpfuを求めた。結果を表３に示した。 ＰＥＧ沈殿処理液は、ＰＥＧ沈殿処理を行った際にＳＭ緩衝液へ懸濁したことにより、実施例１で作成したλファージ液の1／５濃度になっている。よって、表３から、ＰＥＧ沈殿処理後のλファージの回収率は（1.9×10８×5）/（9.2×10８）×100＝103％であった。この結果より、ＰＥＧ沈殿処理をしてもλファージがほぼ回収されることが確認された。さらに、ＰＢＳおよびＭｇＳＯ4を使用してもλファージの安定性に影響を及ぼさないことが確認された。 ＜実施例３ λファージの不活化試験１＞ 変性剤または酵素によるλファージの不活化を試験した。変性剤は尿素を用い、酵素はpfu プロテアーゼＳ（pfu protease S、タカラバイオ社販売）を用いた。 実施例１で作成したλファージ液40μLに、ＰＢＳ＋10mM MgSO4・7H2O液を352μL添加し、さらにpfu プロテアーゼＳを８μL添加した（最終濃度２％）。これを１.5mL容チューブに入れ、プロテアーゼ処理液とした。 また、λファージ液40μLに、９Ｍ尿素を含むＰＢＳ＋10mM MgSO4・7H2O液を360μL添加し、１.5mL容チューブに入れた。これを尿素処理液とした。 また、ファージ液40μLに、９Ｍ尿素を含むＰＢＳ＋10mM MgSO4・7H2O液を352μL添加し、さらにpfu プロテアーゼＳを８μL添加した（最終濃度２％）。これを１.5mL容チューブに入れ、尿素・プロテアーゼ処理液とした。 対照として、λファージ液40μLにＰＢＳ＋10mM MgSO4・7H2O液を360μL添加した。これを無処理液とした。 各処理液を、37℃で１時間インキュベーションした。インキュベーション終了後、600μLのＰＥＧ液（20% PEG6000、2.5M NaCl）を加え、氷中で３時間静置した。その後、15,000rpmで20分間、遠心分離し、上清を捨てた。得られた沈殿物にＳＭ緩衝液を200μL加え、沈殿物をよく懸濁した。この懸濁液をＳＭ緩衝液で希釈し、この希釈液10μLと、大腸菌XL1-Blue MRF’のＳＭ懸濁液(100μL)とを混合し、37℃で１５分間インキュベーションした。インキュベーション終了後、トップアガーを３mL加えて攪拌し、あらかじめ用意しておいた1.5％寒天を含む固体ＬＢ培地上に注いだ。37℃で５時間インキュベーションした後、出現したプラーク数を計数し、pfuを求めた。その結果を表４に示した。 この結果、プロテアーゼ処理液ではλファージが不活化されていないことが確認された。しかし、９Ｍの尿素を添加した尿素処理液では、プロテアーゼの有無に関わらずλファージが不活化された。従って、高濃度の尿素によってλファージを不活化できることが示された。 ＜実施例４ λファージの不活化試験２＞ 尿素添加濃度および尿素処理時間を変化させ、λファージの不活化を試験した。 実施例１で作成したλファージ液40μLに、それぞれ０Ｍ、３Ｍ、および９Ｍの尿素を含むＰＢＳ＋10mM MgSO4・7H2O液360μLを混合し、１.5mL容チューブに入れた。それぞれの混合液と、対照としてλファージ液を３７℃で、０、15、および60分間インキュベーションした。インキュベーション終了後、600μLのＰＥＧ液（20% PEG6000、2.5M NaCl）を加え、氷中で３時間静置した。その後、15,000rpmで20分間遠心分離し、上清を捨てた。得られた沈殿物にＳＭ緩衝液を200μL加え、沈殿物をよく懸濁した。この懸濁液をＳＭ緩衝液で希釈した希釈液10μLと、大腸菌XL1-Blue MRF’のＳＭ懸濁液(100μL)とを混合し、37℃で１５分間インキュベーションした。インキュベーション終了後、トップアガーを３mL加えて攪拌し、あらかじめ用意しておいた1.5％寒天を含む固体ＬＢ培地上に注いだ。37℃で５時間インキュベーションした後、出現したプラーク数を計数し、pfuを求めた。その結果を表５に示した。 前述したように、λファージ液は他の処理液に比べて５倍濃度のλファージを有する。尿素０Ｍの溶液では、λファージ液の1／５程度のプラークが観察されたことから、λファージは全く不活化されていないことが確認できた。また３Ｍの尿素を添加した場合でも、λファージは処理時間によらずほとんど不活化されていないことが確認できた。しかしながら、９Ｍの尿素を添加した場合では、処理時間１５分以上で、λファージは完全に不活化された。また、尿素添加直後でも、λファージはある程度不活化されていることが確認できた。従って、９Ｍの尿素を添加した場合、λファージは極めて急速に不活化されることが示唆された。 ＜実施例５ λファージの不活化試験３＞ 実施例４において、高濃度の尿素がλファージの不活化に有効であることが示唆された。そこでさらに、９Ｍの尿素による処理時間を変化させてλファージの不活化を試験した。 実施例１で作成したλファージ液40μLと360μLの９Ｍの尿素を含むＰＢＳ＋10mM MgSO4・7H2O液を混合し、１.5mL容チューブに入れた。この混合液を３７℃で、０、７．５、１５、３０、および６０分間インキュベーションした。インキュベーション終了後、600μLのPEG液（20% PEG6000、2.5M NaCl）を加え、氷中で３時間静置した。その後、15,000rpmで20分間遠心分離し、上清を捨てた。 得られた沈殿物にＳＭ緩衝液を200μL加え、沈殿物をＳＭ緩衝液に良く懸濁した。この懸濁液をＳＭ緩衝液で希釈した希釈液10μLと、大腸菌XL1-Blue MRF’のＳＭ懸濁液(100μL)とを混合し、37℃で１５分間インキュベーションした。インキュベーション終了後、トップアガーを３mL加えて攪拌し、あらかじめ用意しておいた1.5％寒天を含む固体ＬＢ培地上に注いだ。37℃で５時間インキュベーションした後、出現したプラーク数を計数し、pfuを求めた。比較対照として、無処理液のｐｆｕを同様の手順で求めた。これらの結果を表６に示した。 λファージの大部分は、９Ｍの尿素に接触後、直ちに不活化されることが確認された。その不活化率は約99.96％に達した。なお、尿素を添加した直後であればλファージを回収できたことから、９Ｍの尿素の存在はλファージの回収率に影響を与えないと考えられる。 上記の表５および表６の結果からλファージの不活化率を算出し、図１のグラフに示した。不活化率＝{１−各処理液のｐｆｕ／（無処理液のｐｆｕ／５）}×１００である。 ＜実施例６ Ｍ１３ファージ液の作成＞ Ｍ１３ファージのＤＮＡとして、Ｍ１３ｍｐ １８ＲＦＩ（東洋紡販売）を用いた。宿主菌株は大腸菌ＪＭ１０９を用いた。Ｍ１３ファージＤＮＡ溶液1μLと滅菌蒸留水９μLを混合し、ＪＭ１０９のコンピテントセル（E.coli JM109、東洋紡販売）に、添付のマニュアルに従って形質転換した。この形質転換した大腸菌を、別途作成していたＬＢ培地（１０mL）に接種し、37℃で一晩、緩やかに振盪培養した。 培養液を遠心分離（6000g×20分、４℃）し、上清を得た。この上清にはＭ１３ファージが含まれ、これをＭ１３ファージ原液とする。この原液10μLを、別途培養していたＪＭ１０９のＳＭ懸濁溶液（ＯＤ〜１にＳＭで洗浄済み）100μLに加え、３７℃で１５分間インキュベーションした。この培養液に、トップアガーを４mL加えて攪拌した後、あらかじめ用意しておいた1.5％寒天を含む固体ＬＢ培地上に注いだ。トップアガーが十分に冷え、固化したことを確認して37℃で一晩インキュベーションした。 インキュベーション後の固体培地にプラークが出現していることを確認し、５mLのＳＭ緩衝液を加え、冷蔵庫にて１日間静置した。固体培地を冷蔵庫から取り出し、ＳＭ緩衝液を回収し、遠心分離にかけた（6000 g×20分, ２℃）。得られた上清をＭ１３ファージ液として以降の不活化試験で用いた。なお、Ｍ１３ファージ液は0.5mLずつ1.5mL容チューブに分注し、クロロフォルムを一滴加えた後、４℃で保存した。 ＜実施例７ Ｍ１３ファージの活性試験＞ 以降の実施例において使用するＭ１３ファージの実験系が確立していることを証明するために、Ｍ１３ファージの活性試験を行い、回収率を算出した。 上記の実施例６で作成したＭ１３ファージ液40μLに、360μLのＰＢＳ＋10mM MgSO4・7H2O液を添加した。試験中に起こり得るｐＨの変動を抑えるためにＰＢＳを用い、不活化剤に起因しないＭ１３ファージの感染力低下を最小限にするために10ｍＭ ＭｇＳＯ4を共存させた。 溶液は1.5mL容チューブに入れ、さらに600μLのPEG液（20% PEG6000、2.5M NaCl）を加え、氷中で３時間静置した。その後、15,000rpmで20分間遠心分離し、上清を捨てた。得られた沈殿物にＳＭ緩衝液を200μL加え、沈殿物をＳＭ緩衝液に良く懸濁した。ＰＥＧ液で処理したこのＭ１３ファージ溶液を、ＰＥＧ沈殿沈処理液とする。 得られたＰＥＧ沈殿処理液をＳＭ緩衝液で希釈した液10μLと、ＪＭ１０９のＳＭ懸濁液(100μL)を混合し、37℃で１５分インキュベーションした。インキュベーション終了後、トップアガーを３mL加えて攪拌し、あらかじめ用意しておいた1.5％寒天を含む固体ＬＢ培地上に注いだ。37℃で５時間インキュベーションした後、出現したプラーク数を計数した。得られたプラーク数から、pfu（プラーク形成単位、pfu/mL）を求めた。 比較対照として、実施例６で作成したＭ１３ファージ液をＰＥＧ沈殿処理を行わずにＪＭ１０９に感染させ、プラーク数を計数してpfuを求めた。結果を表７に示した。 ＰＥＧ沈殿処理液は、ＰＥＧ沈殿処理を行った際にＳＭ緩衝液へ懸濁したことにより、実施例６で作成したＭ１３ファージ液の1／５濃度になっている。表７の値から、ＰＥＧ沈殿処理後のＭ１３ファージの回収率は約91％であった。この結果より、ＰＥＧ沈殿処理をしてもＭ１３ファージがほぼ回収されることが確認された。さらに、ＰＢＳおよびＭｇＳＯ4を使用してもＭ１３ファージの安定性に影響を及ぼさないことが確認された。 ＜実施例８ Ｍ１３ファージの不活化試験１＞ 変性剤または酵素によるＭ１３ファージの不活化を試験した。変性剤は尿素を用い、酵素はpfu プロテアーゼＳ（pfu protease S、タカラバイオ社販売）を用いた。 実施例６で作成したＭ１３ファージ液40μLに、ＰＢＳ＋10mM MgSO4・7H2O液を352μL添加し、さらにpfu プロテアーゼＳを８μL添加した（最終濃度２％）。これを１.5mL容チューブに入れ、プロテアーゼ処理液とした。 また、Ｍ１３ファージ液40μLに、９Ｍ尿素を含むＰＢＳ＋10mM MgSO4・7H2O液を360μL添加し、１.5mL容チューブに入れた。これを尿素処理液とした。 また、Ｍ１３ファージ液40μLに、９Ｍ尿素を含むＰＢＳ＋10mM MgSO4・7H2O液を352μL添加し、さらにpfu プロテアーゼＳを８μL添加した（最終濃度２％）。これを１.5mL容チューブに入れ、尿素・プロテアーゼ処理液とした。 対照として、実施例６で作成したＭ１３ファージ液40μLに、360μLのＰＢＳ＋10mM MgSO4・7H2O液を混合し、これを無処理液とした。 各処理液を、37℃で１時間インキュベーションした。インキュベーション終了後、600μLのＰＥＧ液（20% PEG6000、2.5M NaCl）を加え、氷中で３時間静置した。その後、15,000rpmで20分間遠心分離し、上清を捨てた。得られた沈殿物にＳＭ緩衝液を200μL加え、沈殿物をよく懸濁した。この懸濁液をＳＭ緩衝液で希釈し、この希釈液10μLと、大腸菌ＪＭ１０９のＳＭ懸濁液(100μL)とを混合し、37℃で１５分間インキュベーションした。インキュベーション終了後、トップアガーを３mL加えて攪拌し、あらかじめ用意しておいた1.5％寒天を含む固体ＬＢ培地上に注いだ。37℃で５時間インキュベーションした後、出現したプラーク数を計数し、pfuを求めた。その結果を表８に示した。 最終濃度２％のプロテアーゼによって、Ｍ１３ファージは完全に不活化されることが確認された。９Ｍの尿素によっては、Ｍ１３ファージはほぼ５０％程度の不活化率が得られた。さらに、プロテアーゼと尿素を両方添加した系では、Ｍ１３ファージは完全に不活化された。以上のことから、Ｍ１３ファージの不活化にはプロテアーゼが有効であり、さらに尿素と組み合わせて用いることも有効であることが示唆された。 ＜実施例９ Ｍ１３ファージの不活化試験２＞ 次に、プロテアーゼ濃度を変化させてＭ１３ファージの不活化を試験した。 実施例６で作成したＭ１３ファージ液40μLに、352μLのＰＢＳ＋10mM MgSO4・7H2O液を添加した。1.5mL容チューブを用い、pfu プロテアーゼＳ（pfu protease S、タカラバイオ社販売）をそれぞれ０、０.０８、０.８、および８μL添加した。各溶液に添加した酵素の最終濃度はそれぞれ０、０.０２、０.２、および２％である。 また、実施例６で作成したＭ１３ファージ液40μLに、９Ｍ尿素を含むＰＢＳ＋10mM MgSO4・7H2O液を352μL添加した。1.5mL容チューブを用い、pfu プロテアーゼＳ（pfu protease S、タカラバイオ社販売）をそれぞれ０、０.０８、０.８、および８μL添加した。各溶液に添加した酵素の最終濃度はそれぞれ０、０.０２、０.２、および２％である。 各処理液を、37℃で１時間インキュベーションした。インキュベーション終了後、600μLのＰＥＧ液（20% PEG6000、2.5M NaCl）を加え、氷中で３時間静置した。その後、15,000rpmで20分間、遠心分離し、上清を捨てた。得られた沈殿物にＳＭ緩衝液を200μL加え、沈殿物をよく懸濁した。この懸濁液をＳＭ緩衝液で希釈し、この希釈液10μLと、大腸菌ＪＭ１０９のＳＭ懸濁液(100μL)とを混合し、37℃で１５分間インキュベーションした。インキュベーション終了後、トップアガーを３mL加えて攪拌し、あらかじめ用意しておいた1.5％寒天を含む固体ＬＢ培地上に注いだ。37℃で５時間インキュベーションした後、出現したプラーク数を計数し、pfuを求めた。その結果を表９に示した。 プロテアーゼ濃度が高まるにつれてプラーク数が減少しており、Ｍ１３ファージの不活化は酵素濃度に依存することが確認できた。さらに、９Ｍの尿素が共存した場合、Ｍ１３ファージの不活化が高まり、より少ないプロテアーゼ濃度で高い不活化率が得られることが明らかとなった。 ＜実施例１０ Ｍ１３ファージの不活化試験３＞ プロテアーゼと尿素が共存する場合のＭ１３ファージの不活化をさらに詳細に試験した。実施例９の結果から、プロテアーゼ濃度は０．２％とし、尿素濃度および処理時間を変化させてＭ１３ファージの不活化を試験した。 実施例６で作成したＭ１３ファージ液40μLに、それぞれ尿素を０Ｍ、３Ｍ、および９Ｍ含むＰＢＳ＋10mM MgSO4・7H2O液を359μL添加した。1.5mL容チューブを用い、pfu プロテアーゼＳ（pfu protease S、タカラバイオ社販売）を０.８μL（最終濃度０．２％）添加した。 各処理液を、37℃で０、７．５、１５、６０分間インキュベーションした。インキュベーション終了後、600μLのＰＥＧ液（20% PEG6000、2.5M NaCl）を加え、氷中で３時間静置した。その後、15,000rpmで20分間遠心分離し、上清を捨てた。得られた沈殿物にＳＭ緩衝液を200μL加え、沈殿物をよく懸濁した。この懸濁液をＳＭ緩衝液で希釈し、この希釈液10μLと、大腸菌ＪＭ１０９のＳＭ懸濁液(100μL)とを混合し、37℃で１５分間インキュベーションした。インキュベーション終了後、トップアガーを３mL加えて攪拌し、あらかじめ用意しておいた1.5％寒天を含む固体ＬＢ培地上に注いだ。37℃で５時間インキュベーションした後、出現したプラーク数を計数し、pfuを求め、感染力を評価した。その結果を表１０に示した。 プロテアーゼと９Ｍの尿素が共存した場合、Ｍ１３ファージの大部分はこれらの活性成分と接触後、直ちに不活化されることが確認できた。３Ｍの尿素が共存した場合では、活性成分と接触した時点では約５０％の不活化に留まっていた。しかし処理時間７.５分が経過した時点で、ほぼ１００％が不活化した。尿素が共存しない条件では、プロテアーゼ添加後１５分が経過してもほとんど不活化されず、９０％以上の不活化率を達成するまでおよそ１時間が必要であった。 上記の表１０の結果からＭ１３ファージの不活化率を算出し、図２のグラフに示した。不活化率＝{１−各処理液のｐｆｕ／（無処理液のｐｆｕ／５）}×１００である。 以上の実施例から、本発明のウイルス不活化剤がウイルスの不活化に有効であることが示された。本発明のウイルス不活化剤の活性成分であるタンパク質変性剤およびタンパク質分解酵素は、それぞれ単独でもウイルス不活化に有効である。しかしながらこれらを併用することにより、ウイルス不活化効果を高くすることができると共に、様々なウイルスに有効なウイルス不活化剤を提供することが可能である。 ＜実施例１１ 大腸菌の殺菌試験１＞ 本発明の不活化剤による大腸菌Escherichia coli ＪＭ１０９（以下、大腸菌と称する）の殺菌効果を試験した。 大腸菌をＬＢ培地中で１０時間、３７℃で振盪培養し、対数増殖期にあることを確認して遠心分離（5，000g×20分、37℃）し、回収した。沈殿した大腸菌をＰＢＳに懸濁し、再び遠心分離（5，000g×20分、37℃）して回収した。これをＰＢＳに懸濁し、Ｏ．Ｄ．600＝〜15の大腸菌懸濁液を作成した。 この大腸菌懸濁液 32μLに、pfu プロテアーゼＳ（pfu protease Ｓ、タカラバイオ社販売）溶液（最終濃度２％）を8μL、および１０Ｍ尿素のＰＢＳ溶液を160μL混合した。また、大腸菌懸濁液 32μLに、pfu プロテアーゼＳを8μLとＰＢＳ溶液を160μL混合したもの、さらに、大腸菌懸濁液32μLに、8μLのＰＢＳ溶液と１０Ｍ尿素のＰＢＳ溶液を160μL混合したものを作成した。比較対照として、大腸菌懸濁液 32μLにＰＢＳ溶液168μLを混合したものを作成した。それぞれ１.5mL容チューブに入れ、37℃で１時間インキュベーションした。 インキュベーション後、それぞれのチューブを遠心分離し（10,000g×20分）、上清を廃棄した。細胞を含む沈殿物を400μLのＰＢＳ溶液に懸濁し、この懸濁液をＬＢ固体培地に蒔いて大腸菌を培養した。３７℃で１２時間インキュベーションして形成したコロニー数をカウントした。得られたコロニー数を、上記の処理を行わなかった大腸菌から得られた結果と比較して、大腸菌の致死率を算出した。 比較対照としてＰＢＳ溶液のみで処理した大腸菌は１％余りしか死滅しなかったことから、本実施例の処理操作による大腸菌への影響はほとんどないことが示された。本実施例において、pfu プロテアーゼＳのみによる処理では、大腸菌はほとんど死滅しなかった。一方、１０Ｍ尿素とプロテアーゼの組み合わせによって大腸菌が完全に死滅することが確認された。 ＜実施例１２ 大腸菌の殺菌試験２＞ 本発明の不活化剤による大腸菌の殺菌効果を、菌懸濁液の吸光度を測定することによって試験した。 上記実施例１２と同様に、Ｏ．Ｄ．600＝〜15の大腸菌懸濁液を作成した。この大腸菌懸濁液160μLに、pfuプロテアーゼ溶液40μL、および１０Ｍ尿素ＰＢＳ溶液800μLを混合し、１.5mL容チューブに入れた。また、大腸菌懸濁液160μLに、pfuプロテアーゼ溶液40μL、およびＰＢＳ溶液800μLを混合し、同様に１.5mL容チューブに入れた。さらに、比較対照として、大腸菌懸濁液160μLにＰＢＳ溶液840μLを混合した。それぞれのチューブを37℃でインキュベーションした。 各チューブから、インキュベーション時間０、１５、３５、６０分においてサンプリングし、ＰＢＳで1/20倍に希釈した後、分光光度計を用いて600nmで濁度を測定した。 得られた結果を図３に示した。吸光度の低下は細菌の存在量の低下を示す。比較対照の吸光度は、実験期間を通してほとんど変化しなかった。プロテアーゼのみによる処理では、吸光度はわずかに減少した。一方で、プロテアーゼおよび１０Ｍ尿素を処理したことによって吸光度は大幅に減少した。この結果から、プロテアーゼと尿素を含む不活化剤によって、大腸菌の高い殺菌効果が得られることが示唆された。 ２．フィルターおよび空気調和機の実施例（１）不活化フィルター 以下、本発明に係るウイルス不活化フィルターを用いた一実施例を記載する。 ＜実施例１３ ウイルス不活化フィルターの作成方法＞ タンパク質分解酵素として、pfu protease S（タカラバイオ社製）を使用し、ＰＢＳを用いてタンパク質濃度換算2.1mg/mlの酵素溶液を調製した。また、タンパク質変性剤として、１０Ｍの尿素水溶液を用いた。これらの酵素溶液および尿素溶液を混合し、ウイルス不活化剤を調製した。 本実施例においてフィルターに付着させたウイルス不活化剤の組成は、酵素溶液を1.75 mL、１０Ｍ尿素溶液を50 mLとし、フィルターの不活化剤担持量を1.69とした。ここで記載したフィルターの不活化剤担持量は次の式で求めた：不活化剤担持量＝不活化剤担持フィルター乾燥重量/不活化剤担持前フィルター乾燥重量。 調製した不活化剤を、セルファインＮ（東洋紡販売）に付着させ、余分な液を除き、クリーンベンチにおいて常温で乾燥させ、上記の担持量に調節した。 ＜実施例１４ 不活化フィルターを用いたλファージの不活化試験１＞ 実施例１３で作成した不活化フィルターを1.5cm×1.5cmの大きさに切り出し、このフィルター片に、実施例１で作成したλファージ液（40μL）を滴下し、万遍なく浸透させた。このファージ液付着フィルター片を滅菌済み１.５mL容チューブに入れて蓋をし、３７℃でインキュベーションした。インキュベーション時間は、５分、20分、および60分のそれぞれで行った。インキュベーション終了後、フィルター片入り１.５mL容チューブを氷中で５分間保持した。 あらかじめ０℃に冷却しておいたＳＭ緩衝液250μLを、それぞれの１.５mL容チューブに入れ、ファージの回収を行った。回収率を上げるために、再度ＳＭ液250μLを入れてファージを回収した。 回収したファージ液の総量を測定し、その内の400μLを滅菌済み１.5 mL容チューブに移した。このチューブに、600 mLのＰＥＧ液を加え、氷中で１時間インキュベーションした。 インキュベーション終了後、チューブを15000rpmで20分間遠心分離し、上清を除いた。沈殿物が残ったチューブに、ＳＭ緩衝液を200μL加え、沈殿物（ファージとPEGの複合物）を分散させた。このファージＰＥＧ複合物の分散溶液を用いて、ファージの感染力を上記不活化試験の実施例と同様の手順で評価した。 なお、比較対照として日揮ユニバーサル社製の酵素固定フィルター「バイオフリー」を用いて同様の測定を行った。このフィルター「バイオフリー」は、酵素のみを具備したものであり、タンパク質変性剤は備えていないものである。 得られた結果を図４および図５に示した。図中の白丸は本実施例によるフィルターを用いた測定結果を表し、黒丸は対照フィルターを用いた測定結果を表す。図３は、λファージの不活化率を示す。非処理の不活化率を０とし、完全に不活化した場合を100として表した。この不活化率は、次の式から算出した：不活化率（%）＝１００−（感染力×（ファージ液総量／40／2））／λファージ液の感染力）である。ここで、感染力とは本実施例の測定結果である。図５は、元のファージ液の感染力を１００として、測定結果の感染力を相対値で表したものである。 得られた結果から、本実施例の不活化フィルターによってλファージが短時間のうちにほぼ完全に不活化されることが示された。 ＜実施例１５ 不活化フィルターを用いたλファージの不活化試験２＞ 上記実施例１４では、フィルターに付着したファージをＳＭ緩衝液によって回収した。このとき、ファージがフィルターに残存すると回収されるファージが減少するために、測定結果として得られるファージの見かけ上の不活化率が上昇すると考えられる。そこで本実施例では、不活化剤の働きのみによるファージ不活化率を評価した。 具体的には、水で洗浄して不活化剤を除去したフィルターを試験に供した。さらに、インキュベーション温度を０℃にし、不活化剤に含まれる酵素が働かない条件で試験した。 まず、通常の条件における試験として、実施例１３で作成した不活化フィルターを1.5cm×1.5cmの大きさに切り出し、このフィルター片にファージ液（40μL）を滴下し、万遍なく浸透させた。このファージ液付着フィルター片を滅菌済み１.５mL容チューブに入れ、蓋をした後に３７℃で６０分間インキュベーションした。インキュベーション終了後、チューブを氷中で５分間保持した。 一方、実施例１３で作成した不活化フィルターを1.5cm×1.5cmの大きさに切り出したフィルター片を、担持された不活化剤を除去するために蒸留水で洗浄した。洗浄したフィルターは常温で一晩おき、十分に乾燥させた。乾燥後、洗浄済みフィルター片に上記と同様にファージ液を付着させた。これを滅菌済み１.５mL容チューブにいれ、蓋をした後、氷中で６０分間インキュベーションした。 それぞれの実験条件のフィルター片が入ったチューブに、あらかじめ０℃に冷却していたＳＭ緩衝液250μLを入れ、ファージの回収を行った。ファージの回収率を上げるために、再度ＳＭ液250μL入れファージ液の回収を行った。 回収したファージ液の総量を測定し、その内の400μLを滅菌済み1.5mL容チューブに移した。このチューブに、600mLのＰＥＧ液を加え、氷中で１時間インキュベーションした。 インキュベーション終了後、チューブを15000rpmで20分間遠心分離し、上清を除いた。沈殿物が残ったチューブに、ＳＭ緩衝液を200μL加え、沈殿物（ファージとＰＥＧの複合物）を分散させた。このファージＰＥＧ複合物の分散溶液を用いて、ファージの感染力を上記不活化試験の実施例と同様の手順で評価した。 なお、比較対照として日揮ユニバーサル社製の酵素固定フィルター「バイオフリー」を用いて同様の測定を行った。このフィルター「バイオフリー」は、酵素のみを具備したものであり、タンパク質変性剤は備えていないものである。 得られた結果を表１２に示す。 一般に、酵素は０℃においてほとんど活性を持たない。したがって、インキュベーション温度が０℃のときに得られた不活化率は、酵素の働きによるものではなく、ファージがフィルターに残存して回収されなかったことに起因するものであると考えられる。 対照フィルターでは、３７℃における不活化率と０℃における不活化率に大きな違いが無かった。このことから、対照フィルターによって得られた不活化率は酵素反応に起因するものではないことが示唆される。 一方、本実施例のフィルターでは、０℃と３７℃のそれぞれの温度でインキュベーションして得られた不活化率に大きな違いが認められた。このことから、本実施例のフィルターによって得られた不活化率は、不活化剤の働きによってファージが不活化されたものであることが示唆された。 ＜実施例１６ 不活化フィルターを用いたＭ１３ファージの不活化試験１＞ λファージ液に代えて実施例６で作成したＭ１３ファージ液を使用した他は、上記実施例１４と同様に試験を行った。 得られた結果を図６および図７に示した。図中の白丸は本実施例によるフィルターを用いた測定結果を表し、黒丸は対照フィルターの測定結果を表す。図６はＭ１３ファージの不活化率を示し、図７は元のファージ液の感染力を１００とし、測定結果の感染力を相対値で表したものである。 得られた結果から、本実施例の不活化フィルターによってＭ１３ファージが短時間のうちにほぼ完全に不活化されることが示された。 ＜実施例１７ 不活化フィルターを用いたＭ１３ファージの不活化試験２＞ λファージ液に代えて実施例６で作成したＭ１３ファージ液を使用した他は、上記実施例１５と同様に試験を行った。 得られた結果を表１３に示す。 一般に、酵素は０℃においてほとんど活性を持たない。したがって、インキュベーション温度が０℃のときに得られた不活化率は、酵素の働きによるものではなく、ファージがフィルターに残存して回収されなかったことに起因するものであると考えられる。 対照フィルターでは、３７℃における不活化率と０℃における不活化率に大きな違いが無かった。このことから、対照フィルターによって得られた不活化率は酵素反応に起因するものではないことが示唆される。 一方、本実施例のフィルターでは、０℃と３７℃のそれぞれの温度でインキュベーションして得られた不活化率に大きな違いが認められた。このことから、本実施例のフィルターによって得られた不活化率は、不活化剤の働きによってウイルスが不活化されたものであることが示唆された。 ＜実施例１８ 不活化フィルターを用いたインフルエンザウイルスの不活化試験＞ エンベロープ膜を有するウイルスであるインフルエンザウイルスを用い、不活化フィルターによるウイルスの不活化を試験した。 実施例１３で作成した不活化フィルターを10mm×10mmに切断して使用した。インフルエンザウイルスは、Influenza virus Ａ／ Ｈ１Ｎ１型 （ATCC番号VR-95）を用いた。 発育鶏卵の孵化鶏卵の尿膜腔内にインフルエンザウイルスを接種し、37℃の孵卵器で７日間培養した。漿尿液を採取後、遠心分離し（3000rpm、30分）、上清を回収した。得られた上清をウイルス原液とした。 アトマイザーを使用してウイルス原液を不活化フィルターに付着させた。フィルターに付着したウイルス原液の量は、ウイルス液付着前後のフィルターの重量差より換算して20μLであった。比較対照として、不活化剤を担持しない無処理のフィルターに同様の方法でウイルス原液を付着させた。 各フィルターを相対湿度９０％のデシケータに入れ、３５℃で１時間インキュベーションした。インキュベーション終了後、フィルターを滅菌済みの1.8ml容チューブに入れ、滅菌ＰＢＳを１ｍｌ加えて５分間攪拌し、ウイルスを抽出した。このウイルス抽出液を評価用ウイルス液と称する。 評価用ウイルス液を適宜希釈し、犬腎由来のＭＤＣＫ細胞に接種しＭＤＣＫ細胞の変性度合い（ＣＰＥ、５日間）を、倒立顕微鏡を用いて観察し、ＴＣＩＤ50（50%感染価）を算出した。その結果、不活化フィルターを用いた試験のＴＣＩＤ50は１．７７±０．１５（ｎ＝３）であり、無処理のフィルターを用いた試験のＴＣＩＤ50は４．８３±０．０６（ｎ＝３）であった。 ＜実施例１９ 不活化フィルターを用いたポリオウイルスの不活化試験＞ エンベロープ膜を有さないウイルスであるポリオウイルスを用い、不活化フィルターによるウイルスの不活化を試験した。 実施例１３で作成した不活化フィルターを10mm×10mmに切断して使用した。ポリオウイルスは、弱毒ポリオウイルスであるPolio virus I型 Sabin株（LSc, 2ab）を使用した。 ミドリザルの腎由来細胞（ＢＧＭ細胞）にポリオウイルスを接種し、37℃で4日間培養した。これを遠心分離し（3000rpm、30分）、上清を回収した。得られた上清をウイルス原液とした。 アトマイザーを使用してウイルス原液を不活化フィルターに付着させた。フィルターに付着したウイルス原液の量は、ウイルス液付着前後のフィルターの重量差より換算して20μLであった。比較対照として、不活化剤を担持しない無処理のフィルターに同様の方法でウイルス原液を付着させた。 各フィルターを相対湿度９０％のデシケータに入れ、３５℃で１時間インキュベーションした。インキュベーション終了後、フィルターを滅菌済みの1.8ml容チューブに入れ、滅菌ＰＢＳを１ｍｌ加えて５分間攪拌し、ウイルスを抽出した。このウイルス抽出液を評価用ウイルス液と称する。 評価用ウイルス液を適宜希釈し、ミドリザルの腎由来細胞（ＢＧＭ細胞）に接種しＢＧＭ細胞の変性度合い（ＣＰＥ、5日間）を、倒立顕微鏡を用いて観察し、ＴＣＩＤ50（50%感染価）を算出した。その結果、不活化フィルターを用いた試験のＴＣＩＤ50は３．０３±０．１５（ｎ＝３）であり、無処理のフィルターを用いた試験のＴＣＩＤ50は５．０３±０．０６（ｎ＝３）であった。 ＜実施例２０ 不活化フィルターを用いた大腸菌の殺菌試験＞ 上記実施例１２と同様に、Ｏ．Ｄ．600＝〜15の大腸菌懸濁液を作成した。実施例１３で作成した不活化フィルターに、大腸菌懸濁液40μLを満遍なく滴下した。比較対照として、不活化処理をしていないフィルター（無処理フィルター）にも同様に大腸菌懸濁液を滴下した。 それぞれのフィルターを1.5mL容チューブに入れ、37℃で１時間インキュベーションした。インキュベーション終了後、各チューブに200μLのＰＢＳを加えて遠心分離し、フィルターに付着した大腸菌を回収する操作を２回行った。 大腸菌を回収した液を遠心分離（10,000g×20分）し、上清を廃棄した。細胞を含む沈殿物を400μLのＰＢＳに懸濁し、この懸濁液をＬＢ固体培地に蒔いて大腸菌を培養した。37℃で12時間インキュベーションして形成したコロニー数をカウントした。 得られたコロニー数を、処理前の大腸菌懸濁液から得られたコロニー数と比較して致死率を算出した。その結果、不活化フィルターで処理した大腸菌懸濁液の致死率は９９．１％であった。対して、無処理フィルターで処理した大腸菌懸濁液の致死率は５７．５％であった。不活化フィルターにより得られた結果を無処理フィルターにより得られた結果と比較すると、９７．９％の致死率が得られた。 ＜実施例２１ 不活化フィルターを用いた殺真菌試験（乾式試験）＞ JIS規格のカビ抵抗性試験方法（JIS Z 2911:2000）を参照し、本発明の不活化フィルターの殺カビ効果を試験した。カビは、アスペルギルス・ニゲル（Aspergillus niger）を使用した。 カビ胞子を５白金耳とり、0.1% Tween80を含む滅菌水10ｍLに懸濁した。これを胞子懸濁液とした。乾熱滅菌したガラス繊維（φ12mm）からなる不織布（厚さ1.5mm）を上記胞子懸濁液に浸してクリーンベンチ内で乾燥させ、胞子担体を作成した。 滅菌シャーレ内において、実施例１３で作成した不活化フィルター上に胞子担体を置き、その上にガラス板（厚さ5mm、50mm×50mm）を乗せてシャーレの蓋をした（図８）。この状態で35℃、相対湿度80%の恒温恒湿でインキュベーションした。 比較対照として、不活化剤を担持しない無処理のフィルターを用いて同様に試験した。 カビの生育状況を観察した結果、本実施例の乾式試験では、不活化フィルター、無処理フィルターの両方においてカビの生育は観察されなかった（図９）。 本試験と平行して、胞子懸濁液をポテトデキストロース寒天培地で培養したところ、カビの生育が確認されたことから（データは示さず）、本試験で使用したカビ胞子そのものに生育に関する問題はなかったと考えられる。 ＜実施例２２ 不活化フィルターを用いた殺真菌試験（湿式試験）＞ アスペルギルス・ニゲル（Aspergillus niger）を用い、実施例２１と同様に胞子懸濁液を作成した。 実施例１３で作成した不活化フィルター（10mm×10mm）に胞子懸濁液 20μLを均一に滴下し、クリーンベンチ内にて乾燥した。同様に、無処理のフィルターに胞子懸濁液を滴下して乾燥させ、比較対照とした。 それぞれのカビ胞子付着フィルターを、ポテトデキストロース固体培地上に置き、３５℃、相対湿度８０％の恒温恒湿でインキュベーションした。 カビの生育状況を観察した結果、無処理のフィルターではカビの生育が確認されたが、不活化フィルターでは、培養２２日間を通じてカビの生育は観察されなかった（図１０）。 本試験と平行して、胞子懸濁液をポテトデキストロース寒天培地で培養したところ、カビの生育が確認されたことから（データは示さず）、本試験で使用したカビ胞子そのものに生育に関する問題はなかったと考えられる。 以上のことから、本発明の不活化フィルターは殺真菌効果を有することが示された。無処理のフィルターではカビの生育が確認されたことから、フィルターそのものに殺真菌能力があるわけではなく、本発明の不活化剤の存在によって初めてカビの生育が抑えられることが分かった。また、不活化フィルターに担持された不活化剤がカビの養分になり得ることが危惧されたが、このようなことはないことが示された。 （２）空気調和機 以下、本発明に係る空調用室内ユニット及び空気調和機の一実施形態を、図面に基づいて説明する。 図１１は空調用室内ユニット１０の断面図、図１２は空調用室内ユニット１０及び空調用室外ユニット３０よりなる空気調和機１００の概略構成を示す斜視図である。 図１１または図１２に示すように、この空調用室内ユニット１０は、室内の空気を取り入れるための吸込グリル（吸込口）１１と、吸込グリル１１から取り入れられた室内の空気を冷却または加熱するための室内熱交換器１３，１４，１５と、この室内熱交換器１３，１４，１５で熱交換された空気を室内に戻すための吹出口１６と、吸込グリル１１から空気を取り入れるとともに、吹出口１６から室内に熱交換された空気を吹き出させるためのクロスフローファン（室内送風手段）１７と、室内熱交換器１４の空気流路上流側近傍で上方となる位置に配設されたウイルス不活化フィルター１８とを主たる要素として構成されたものである。なお、空調用室内ユニット１０の内部前面から内部上面にかけて配置され、吸込グリル１１を通過して室内熱交換器１３，１４，１５に導かれる空気中から塵・ゴミ等の不純物を取り除くためのプレフィルター１９が設けられている。 上述した空調用室内ユニット１０において、吸込グリル１１、室内熱交換器１３，１４，１５、吹出口１６、クロスフローファン１７、及びプレフィルター１９については従来周知のものであるので、ここではその説明は省略する。また、吹出口１６には、吹出方向を調整するため、周知の吹出ルーバー２０及び吹出フラップ２１が設けられている。なお、吹出フラップ２１の動作により、吹出口１６の開閉が可能である。 図１２は、上述した空調用室内ユニット１０を備える空気調和機１００の概略構成図である。図１２において、図中の符号３０は空調用室外ユニットである。この空調用室外ユニット３０は、冷媒を圧縮するための圧縮機３１、冷媒と室外の空気との熱交換を行わせるための室外熱交換器３２、及び室外熱交換器３２における冷媒と室外の空気との熱交換を促進させる室外ファン３３を有するものである。なお、図１３に基づいて後述する四方弁３４及び電子膨張弁３５も、この空調用室外ユニット３０に配設されている。 また、符号５０は、これら空調用室内ユニット１０及び空調用室外ユニット３０を連結するとともに、冷媒をこれら空調用室内ユニット１０及び空調用室外ユニット３０の間で循環させるための冷媒配管である。なお、図中の符号６０はリモコン（リモートコントローラ）であり、これにより空気調和機１００の運転状態が設定され得るようになっている。 ウイルス不活化フィルター１８には、たとえば図１４ないし図１８に示すような構成を有するものがある。 図１４はウイルス不活化フィルター１８の第１構成例を示す図であって、図１４（Ａ）は全体図、図１４（Ｂ）は図１４（Ａ）の部分拡大図である。 ウイルス不活化フィルター１８は、フィルター本体１８ａと、このフィルター本体１８ａを構成する繊維１８ｂに直接担持されたウイルス不活化剤（以下、単に「不活化剤」と呼ぶ）１８ｃとを備えている。ここで、前記繊維１８ｂとしては、たとえは、ガラス、レーヨン、セルロース、ポリプロピレン、ポリエチレンテレフタレート、ポリアクリル酸系、ポリアクリルアミド系統等の繊維が挙げられる。またさらに、例えばセルファインＮ（東洋紡販売）のような超吸湿性繊維を用いることもできる。 ここで、不活化剤１８ｃを繊維１８ｂに担持させる場合、物理的に担持する形態に限らず、化学的に担持する形態も利用できる。たとえは、基材のカルボキシル基をアジト化し、アミド結合により不活化剤に含ませる活性成分と化学結合させることで、活性成分を基材に担持させることができる。なお、カルボキシル基に限らず、水酸基やアミノ基等の官能基であっても、化学結合に利用することができる。このように、化学的に担持する方法は、従来から知られている（新実験化学講座生物化学（１），ｐ．３６３〜４０９，丸善（１９７８））。 本構成例によるウイルス不活化フィルター１８によれは、フィルター本体１８ａに、ウイルスを不活化する機能を有する不活化剤１８ｃを担持した構成となっているため、不活化し得るウイルス量を大幅に増大することができる。 図１５はウイルス不活化フィルター１８の第２構成例を示す図であって、ウイルス不活化フィルターの要部を示す図である。この構成例では、図１５に示すように、吸水性及び／または吸湿性を有する担持体１８ｄに不活化剤１８ｃを担持させ、さらに、前記担持体１８ｄをバインダー（図示せず）を用いて繊維１８ｅに固定させた構成であることを特徴とする。ここで、前記担持体１８ｄの材質としては、たとえばポリアクリル酸系、ポリアクリルアミド系、ポリビニルアルコール系などの合成材料、あるいは綿、羊毛、アルギン酸ナトリウム、マンナン、寒天などの天然材料、あるいはレーヨンなどの再生材料等が挙げられる。また、繊維１８ｅの材質としては、たとえばポリエチレン（ＰＥ）、ポリプロピレン（ＰＰ）、ポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）、ポリアミド（ＰＡ）などの高分子化合物が挙げられる。 本構成例によるウイルス不活化フィルター１８によれは、吸水性及び／または吸湿性を有する担持体１８ｄに不活化剤１８ｃを担持させ、さらに前記担持体１８ｄをバインダーを用いて繊維１８ｅに固定させた構成となっているので、上述した第１構成例と同様な効果を有する。 図１６（Ａ）は、ウイルス不活化フィルター１８の第３構成例を示す図である。ここで、不活化フィルター１８は、複数の不活化剤１８ｃを担持させた担持体１８ｄと、これらを上下からサンドイッチ状に挟む基材１８ｆ，１８ｇとから構成されている。 ここで、前記担持体１８ｄの材質としては、たとえばポリアクリル酸系、ポリアクリルアミド系、ポリビニルアルコール系、綿、羊毛、レーヨン、アルギン酸ナトリウム、マンナン、寒天が挙げられる。前記基材１８ｆ，１８ｇは、繊維１８ｅからなる不織布からなっている。ここで、担持体１８ｄの下側に位置する基材１８ｇとしては、ウイルス粒子（粒径：数十ミクロン〜数百ミクロン）の径より小さいメッシュを有した不織布にすることが好ましい。 本構成例によるフラット型のウイルス不活化フィルター１８によれは、不活化剤１８ｃを担持した担持体１８ｄを上下の２つの基材１８ｆ，１８ｇによりサンドイッチ状に挟んだ構成となっているので、上述した構成例と同様な効果を有する。 また、図１６（Ｂ）は、ウイルス不活化フィルター１８の第４構成例を示す図である。図１６（Ｂ）に示すようなオープンサンドイッチ式のフラット型のウイルス不活化フィルターであっても、上述した構成例と同様の効果を発揮する。 なお、今まで述べてきた第１構成例ないし第４構成例のようなウイルス不活化フィルター１８は、図１７に示すように、ケース９に入れてたとえば室内用空調ユニット１０の空気流路等に配置されて使用されることができる。 図１８（Ａ）は、ウイルス不活化フィルター１８の第５構成例を示す図である。この不活化フィルター１８は、不活化剤を直接担持させた繊維によりフィルター本体１８ａを構成し、このフィルター本体１８ａをひだ折りにすることにより構成している。 本構成例によるプリーツ型のウイルス不活化フィルター１８によれは、不活化剤を直接担持した繊維によりフィルター本体１８ａを構成し、このフィルター本体１８ａをひだ折りした構成になっているため、上述した構成例のものと比較して低圧損であるとともに、ウイルスとの接触機会が増えるので捕集率を高めることができ、さらに水分の蒸発を抑制することができる。 図１８（Ｂ）は、ウイルス不活化フィルター１８の第６構成例を示す図である。この不活化フィルター１８は、不活化剤１８ｃを担持させた繊維を束ねた断面形状が円形の棒状部材１８ｈであり、これらの棒状部材１８ｈの両端でそれぞれ支持部材１８ｉ，１８ｊに連結させた構成となっている。 本構成例による棒状型のウイルス不活化フィルター１８によれは、不活化剤を担持した繊維により棒状部材１８ｈを構成し、この棒状部材１８ｈの両端をそれぞれ支持部材１８ｉ，１８ｊに連結させた構成になっているため、上述した第１構成例ないし第４構成例と比べ、低圧損であるとともに、不活化剤担持量が増大するので不活化能力が大きく、さらに長寿命にすることができる。 なお、第６構成例では、棒伏部材の断面形状は円形であったが、特に限定されることはなく、たとえば三角形、四角形、楕円形、あるいは中空体形状でもよい。また、棒状部材の方向性は特に限定されず、縦方向、横方向、あるいは斜め方向等に向きを統一してもよいし、交差させてもよい。さらに、本構成例のウイルス不活化フィルター１８を空調用室内ユニット１０に実装する場合は、たとえば吹出口１６、あるいは吸込グリル１１と吹出口１６の両方等、空気の流れが速い所等に取り付けるときに好ましく適用できる。 図１８（Ｃ）は、ウイルス不活化フィルター１８の第７構成例を示す図である。この不活化フィルター１８は、ウレタン等の多孔体１８ｋの表面に不活化剤１８ｃを担持させた構成となっている。 本構成例による海綿状型のウイルス不活化フィルター１８によれは、上述した第１構成例ないし第４構成例と同様な効果を有する。 上述したフィルター本体の材質としては、たとえば綿や羊毛などの天然繊維レーヨンや酢酸セルロースなどの再生繊維、ポリエチレンやポリエチレンテレフタレートやポリアミドなどの合成繊維の不織布または綿織物、ガラス繊維マット、金属繊維マット、さらにはアクリル酸系、アクリルアミド系、ポリビルアルコール系などの合成樹脂、あるいはアルギン酸ナトリウム、マンナン、寒天などの天然・再生材料である吸水性及び／または吸湿性材料が使用され、前記フィルター本体に前記不活化剤が直接固定、または担持体を介して固定されている。 さて、本発明のウイルス不活化剤は液相において反応するものであるが、上述したようにフィルターの繊維または担持体に吸水性及び／または吸湿性材料を用いることによって繊維の表面または担持体内部などに微小な液相を生じさせ、これによって不活化剤を活性化させることが可能である。 また、上述したフィルターの構成によれば、不活化剤は常温、常湿でも活性を有するが、ウイルス不活化剤に含まれる酵素は温度が高いほど活性化されるため、高温多湿の雰囲気にすることによってより活性化させることが可能である。好ましい温度は、酵素の至適温度を超えない範囲で、且つ、空気調和機およびフィルターの耐熱温度以下の温度である。例えば、上記実施例で用いたpfu プロテアーゼＳ（pfu protease S、タカラバイオ社販売）を使用した場合、好ましい温度範囲は３０〜８０℃である。 ここで、上述したウイルス不活化フィルター１８を備えた空調用室内ユニット１０には、内部空間Ｓを高温多湿の不活化剤活性化雰囲気に維持する不活化剤活性化手段が般けられている。なお、ここでの内部空間Ｓとは、吸込ゲリル１１から吸い込んだ空気が吹出口１６から流出するまでの空気流路（空間）のことをいう。この不活化剤活性化手段の第１の実施形態では、特別な構成要素を新たに付加することなく、ウイルス不活化フィルター１８以外は実質的に空気調和機１００が通常備えている構成要素を有効利用して運転できるものである。 すなわち、空気調和機１００に既存の熱交換器などを備える冷媒回路を不活化剤活性化手段として機能させるウイルス不活化運転モードを設けておき、この運転モードを空気調和機１００の制御手段が実行することにより、空調用室内ユニット１０の内部空間Ｓ内をウイルス不活化剤が活性化する高温多湿の雰囲気に維持し、活性化したウイルス不活化剤の作用によって、ウイルス不活化フィルター１８に予め捕集したウイルスを破壊して不可逆に不活化するウイルス不活化処理プロセスを実現する。 このウイルス不活化運転モードでは、高温多湿の雰囲気とするために水分が必要となる。そこで、室内用空調ユニット１０内に設置されている室内熱交換器１３，１４，１５の冷却運転を所定時間継続して実施し、同熱交換器の表面に生成される凝縮水を多湿とするための水分として使用する。なお、室内熱交換器１３，１４，１５の冷却運転は、同熱交換器を蒸発器（エバポレ一夕）として使用する冷房運転時及び除湿運転時と同様の経路で冷媒を循環させればよく、以下ではこの冷却運転を「凝縮水生成運転」と呼ぶことにする。 この凝縮水生成運転では、図１３の冷媒回路図に示すように、空調用室外ユニット３０側の圧縮機３１及び室外ファン３３を運転して冷媒を循環させ、空調用室内ユニット１０側では、吹出口１６に設けたフラップ２１を開としてクロスフローファン１７を運転する。 この時、冷媒の循環経路は、図１３に実線矢印で示すように、圧縮機３１から吐出された後に四方弁３４で循環方向が選択切換されて、室外熱交換器３２、電子膨張弁３５、室内熱交換器１３，１４，１５及び四方弁３４の順に時計廻りに流れて圧縮機３１に戻る。このような冷媒の流れとすれば、室内熱交換器１３，１４，１５には気液二相流の冷媒が供給されて空気と熱交換するので、気化熱を奪．われた空気が冷却されると共に、空気中の水分は温度低下により凝縮して熱交換器の表面に付着する。こうして生成された凝縮水は、室内熱交換器１３，１４，１５の表面からドレン受け２２に滴下した後、図示しない所定の排水流路を通って空調用室内ユニット１０から外部へ排水される。 上述した凝縮水生成運転が終了した後には、生成された凝縮水を加熱して気化させることにより、内部空間Ｓを高温多湿とする加熱運転に移る。 この加熱運転では、図１３の冷媒回路図に破線矢印で示すように、圧縮機３１から吐出された冷媒が、四方弁３４の切換操作により凝縮水生成運転時とは逆向きの反時計廻り流れる。すなわち、圧縮機３１から吐出された冷媒は、四方弁３４から流出して室内熱交換器１３，１４，１５、電子膨張弁３５、室外熱交換器３２及び四方弁３４の順に流れて圧縮機３１に戻る。 このようにして、加熱運転においても、冷媒を暖房運転時と同様に循環させれば、室内熱交換器１３，１４，１５に供給された高温高圧のガス冷媒は、空気と熱交換して凝縮する。この結果、室内熱交換器は凝縮器として放熱する機能を発揮するので、この放熱量を加熱手段として使用することにより、熱交換器表面に付着した凝縮水を気化させることができる。 この加熱運転時には、凝縮水の気化・蒸発を促進するべく、暖房運転時とは異なり、空調用室外ユニット３０の圧縮機３１及び室外ファン３３は運転されるが、空調用室内ユニット１０側ではクロスフローファン１７の運転を停止し、かつ、吹出フラップ２１を操作して吹出口１６を閉とする。この結果、空調用室内ユニット１０の内部空間Ｓは吹出口１６が閉じた半密閉の状態となり、室内熱交換器１３，１４，１５の放熱で内部空間Ｓ内の温度が上昇するとともに、室内熱交換器１３，１４，１５の放熱（加熱）を受けて気化した凝縮水の蒸気が内部空間Ｓ内に滞留して湿度を上昇させるので、高温多湿の不活化剤活性化雰囲気（ウイルス不活化雰囲気）を容易に形成することができる。 ただし、凝縮水が気化した蒸気は、略真上に上昇する流路を通過するので、ウイルス不活化フィルター１８が確実に吸湿できるようにするためには、ウイルス不活化フィルター１８を室内熱交換器１３，１４，１５より上方に、より好ましくは、蒸気流路が形成されやすい室内熱交換器の真上に配設するとよい。 なお、ウイルス不活化フィルター１８の設置については、少なくとも、通常の冷房運転や暖房運転を行った場合の空気流経路に配置するとともに、加熱運転により形成される室内機内部での蒸発空気に接することができる箇所に設置すればよく、必ずしも不活化フィルターの設置位置を室内熱交換器上方に限定するものではない。 こうして内部空間Ｓが不活化剤活性化雰囲気になると、ウイルス活性化フィルター１８に担持された不活化剤１８ｃが活性化するので、同フィルター１８に捕集されたウイルスは不活化剤１８ｃの作用によって不活化される。このようにしてウイルスを不活化するための加熱運転時間は、目標とするウイルス不活化率に応じて適宜定めればよい。 凝縮水生成運転及び加熱運転を行うことにより、空調用室内ユニット１０の内部空間Ｓをウイルスが不活化する雰囲気に必要時間維持することができるので、この雰囲気の中でウイルス不活化フィルター１８に担持された不活化剤１８ｃが活性化し、捕集したウイルスを効率よく不活化することができる。 また、上述したウイルス不活化運転モードは、操作部等の適所に設けた所定のスイッチ操作により、ワンタッチで実施可能となる。このスイッチ操作は、たとえば図１９に示すように、リモコン６０に予め設けたウイルスクリアボタン６１を押すことによりなされる。すなわち、ウイルスクリアボタン６１を押すことにより、ウイルス不活化運転モードを実行する特定の制御信号が生成される。リモコン６０のウイルスクリアボタン６１を押した場合、赤外線等の制御信号が空調用室内ユニット１０の図示しない受信部へ送信される。なお、図示のリモコン６０には、上述したウイルスクリアボタン６１の他にも、たとえば表示部６２、運転／停止操作ボタン６３、温度設定スイッチ６４、湿度設定スイッチ６５及び運転切換操作ボタン６６等が設けられている。 この制御信号は、受信部から空気調和機１００の図示しない制御部に送られ、この信号を受けた制御部では、所定の制御ステップに基づいて上述した凝縮水生成運転及び加熱運転を行ってウイルスを不活化する。このようなウイルス不活化運転モードの実施は、ウイルスクリアボタン６１を押して生成された制御信号が制御部に入力された場合、他の運転モードに優先して実行される。すなわち、冷房運転や暖房運転を実施している状況でウイルスクリアボタン６１が押された場合には、実施中の冷房運転または暖房運転を中止してウイルス不活化運転モードに切り替えられる。 また、上述したウイルス不活化運転モードは、必要に応じて適宜中断することも可能である。ウイルス不活化運転モードを中断する制御信号は、たとえばウイルスクリアボタン６１を再度押すことにより生成されるようにしてもよいし、あるいは、リモコン６０に専用の中止ボタンを設けてもよい。このように、リモコン６０等のスイッチ操作によりワンタッチでウイルス不活化運転モードの実施及び中断を選択可能にしたので、簡単な操作によって容易にウイルスを不活化する運転が可能になる。なお、このようなウイルス不活化運転モードは、空気調和機１００が従来備えている冷暖房運転用のタイマー機能と連動して作動するようにしてもよい。 このように、ウイルス不活化運転モードにおいては、高温多湿の雰囲気が形成されるが、室内や室外の環境（温度及び湿度）によって目標到達時間が変動する。すなわち、凝縮水生成運転で生成される凝縮水量が所望の量となるまでの時間や、この凝縮水を気化させて所望の温度及び湿度とするのに要する時間は、上記の環境により異なってくる。そこで、凝縮水生成運転を実施する際には、室内熱交換器１３，１４，１５の表面に凝縮水が生成しやすい運転条件となるように制御するのが好ましい。 以下に、凝縮水が生成しやすい運転条件の具体例をあげる。第１の具体例では、絞り機構として設けた電子膨張弁３５の開度を通常の冷房運転時との対比で小さく設定して運転する。この結果、冷媒の吸熱量が増して室内熱交換器１３，１４，１５の表面温度がより低下するので、熱交換器表面に結露する凝縮水量を増加させることができる。この喝合、空調用室内ユニット１０に設けられている室内温度検出手段の検出値（室内温度）に基づいて電子膨張弁３５の開度を調整してもよく、室内温度が高いほど電子膨張弁３５の開度は小さくなる。 第２の具体例としては、クロスフローファン１７の回転速度を通常の冷房運転時より低下させた低速運転を行うことにより、送風する風量を減少させて室内熱交換器１３，１４，１５を通過する風量を少なくしてもよい。このような運転を行っても、空気の吸熱量が減少することによって室内熱交換器１３，１４，１５の表面温度がより低下するので、熱交換器表面に結露する凝縮水量を増加させることができる。 第３の具体例としては、外気温度を検出して空調用室内ユニット３０に設けられた室外ファン３３の回転数を調整してもよい。この場合、外気温度が高いほど室外ファン３３の回転数を高く設定すれば室外熱交換器３２で凝縮する冷媒量が増加するので、室内熱交換器１３，１４，１５へ供給される気液二相流の冷媒量も増加する。従って、室内熱交換器１３，１４，１５の表面温度はより低下するので、熱交換器表面に結露する凝縮水量を増加させることができる。 なお、上述した第１ないし第３の具体例は、単独での採用は勿論のこと、複数を適宜組み合わせて採用したり、あるいは、全てを組み合わせて採用したりすることも可能である。 ただし、加熱運転に先立ち、必ず凝縮水生成運転を行うといった制御に限られるものではなく、通常の冷房運転により凝縮水が生成される場合には、通常の冷房運転を冷却運転として位置付けて、冷房運転の後に加熱運転を行うといったウイルス不活化運転モードを実行する制御を行ってもよい。 ところで、ウイルス不活化運転モードでは、上述した凝縮水生成運転及び加熱運転を実施することにより、不活化剤１８ｃを活性化してウイルスを不活化するという当初の目的を達成することができる。しかし、以下に説明する運転を前後に加えることにより、ウイルス不活化運転の効率向上や不活化剤１８ｃの高寿命化などを実現することができる。 最初に、凝縮水生成運転の前に実施する捕集運転について説明する。この捕集運転は、室内のウイルスをウイルス不活化フィルター１８に捕集する運転のことであり、クロスフローファン１７を運転して吸込グリル１１から室内の空気を吸い込み、ウイルス不活化フィルター１８を通過させてから吹出口１６より室内に戻す運転のことである。この捕集運転では、空気中のウイルスをウイルス不活化フィルター１８に捕集することが員的であるから、ウイルス不活化フィルター１８を室内空気が流過すればよく、単に空気を循環させるのみの送風運転でよい。また、当然に、通常の冷房・除湿運転や暖房運転を行っても同様にウイルス不活化フィルター１８を介して室内空気が循環するので、室内の状況や使用者の好みに応じて、送風運転、冷房・除湿運転及び暖房運転の中から適宜選択すればよい。 このようにして空気を循環させると、ウイルス不活化フィルター１８を空気が通過する際、空気はフィルター本体１８ａ等を通過可能であるが、空気とともに循環するウイルスの多くは通過できずに捕集される。このため、室内の広さ、想定されるウイルス量及びウイルス不活化フィルター１８の捕集能力等を考慮して適切な運転時間の捕集運転を継続すると、室内のウイルスは、その多くがウイルス不活化フィルター１８に捕集される。こうして多くのウイルスを捕集した状態でウイルス不活化運転モードを実施すると、１回のウイルス不活化運転で多くのウイルスを不活化させることができるので、室内のウイルスを効率よく不活化してウイルス量の少ない室内環境とすることができる。 また、ウイルス不活化モードの加熱運転終了後には、内部空間Ｓ内の高温多湿状態をすみやかに解消することが好ましい。これは、特に不活化剤１８ｃの寿命を考慮したとき、不活化剤１８ｃがウイルス不活化フィルター１８内に残存する水分との間で加水分解を起こし、自己分解するのを抑制するべく、不活化剤１８ｃの活性化の程度を通常の雰囲気のレベルにまで戻すことができる環境、すなわち、低温・低湿度の雰囲気とすることが、不活化剤の経時的劣化を抑制する上で好ましいことに起因している。 このため、たとえば室内の空気を室外へ排気する周知の換気装置（図示せず）を備えている空調用室内ユニットの場合、不活化剤を活性化状態で保持する所定の不活化剤活性状態保持時間の経過にともない加熱運転が終了した後に適当な運転時間を定めて換気運転を実施する。この換気運転では、室内への直接的な高温高湿の雰囲気の流出による空調フィーリングの低下を防止すべく吹出口フラップ２１を閉じた状態として内部空間Ｓを半密閉状態に保ちつつ、換気ファン（図示せず）の作動により内部空間Ｓに存在する高温多湿の雰囲気を室外へ排出することができる。 換気運転を所定時間行って高温多湿の雰囲気を室外へ排出した後には、換気ファンに加えてクロスフローファン１７による送風運転も開始する。この時、吹出口フラップ２１を閉状態として内部空間Ｓの半密閉状態が維持され、この内部空間Ｓ内に換気及び送風による空気の流れが生じることによって、ウイルス不活化フィルター１８を除湿して乾燥させることができる。なお、このような換気及び送風を併用した劣化防止運転は、内部空間Ｓの容積等に応じて適当な運転時間を設定すればよい。 このようにして、空気調和機１００の制御手段が、ウイルス不活化運転モード終了後に換気運転及び送風運転を実施する劣化防止運転モードを実行すると、内部空間Ｓが高温多湿の環境をすみやかに解消して不活化剤１８ｃが無用に活性化している時間を短縮できるので、その分不活化剤１８ｃの劣化を抑制して寿命を延ばすことができる。すなわち、ウイルス不活化フィルター１８の交換寿命を延ばすことができる。 なお、上述した説明では、空調用室内ユニットが換気装置を備えているものとしたが、換気装置がない空調用室内ユニット１０の場合には、換気運転ができないため、加熱運転終了後に半密閉状態の内部空間Ｓでクロスフローファン１７による送風運転を行い、これにより生じる空気の流れでウイルス不活化フィルター１８を乾燥させればよい。 また、上述した実施形態では、換気装置を備える場合に送風運転と換気運転とを併用したウイルス不活化フィルターの劣化防止運転を、換気装置を備えない場合には送風運転単独による劣化防止運転を行う制御を採用したが、換気装置を備える場合であっても、不活化剤活性化のための高温度や高湿度の程度に応じて、送風運転単独もしくは送風運転と換気運転の併用により不活化剤担持体から水分を除去する劣化防止運転のモードを選択的に実行するようにしてもよい。 ところで、これまで説明した空調用室内ユニット１０は、吸込グリル１１が常に開状態となるため、吹出フラップ２１を閉じる加熱運転時等には内部空間Ｓが半密閉状態となる。 そこで、上述した実施形態の変形例として、内部空間Ｓを密閉にして加熱運転を実施する構成の空調用室内ユニット１０Ａを図２０に示して説明する。この変形例では、吸込グリル１１Ａにたとえば吸入口フラップ１２のような吸入口開閉手段を設けておき、加熱運転時など必要に応じて吸込グリル１１Ａを閉じることができるようになっている。このため、加熱運転時等には、吸込グリル１１Ａ及び吹出口１６がともにフラップにより閉じられた密閉状態の内部空間Ｓとなり、ウイルスを不活化する高温多湿の雰囲気が外部に漏出しにくいものとなる。 このような密閉状態で加熱運転を実施すると、雰囲気の外部への漏出がないため内部空間Ｓ内の温度及び湿度を維持することが容易になるので、不活化剤１８ｃを活性化する効率が向上する。すなわち、半密閉状態で加熱運転をするよりも短時間で目標とするウイルス不活化雰囲気を形成し、また、高温多湿の雰囲気を維持するために消費する加熱エネルギー量や凝縮水量も少なくてすむ。 また、このように内部空間Ｓを密閉状態とした加熱運転時には、クロスフローファン１７を回転させて撹拌することが好ましい。このような撹拌を行うことにより、密閉された内部空間Ｓ内における高温多湿の雰囲気は略均一化される。 このため、ウイルス不活化フィルター１８は、その全域にわたって不活化剤１８ｃが活性化するようになる。すなわち、ウイルス不活化フィルター１８の全域で不活化剤１８ｃが機能し、ウイルスを効率よく不活化できるようになるので、フィルターとしての能力を最大限に有効利用することが可能になる。 続いて、不活化剤活性化手段の第２の実施形態を図２１及び図２２に基づいて説明する。この実施形態の不活化剤活性化手段は、室内熱交換器１３，１４，１５の冷却運転により生成されてドレン受け２２に貯留された凝縮水を、ドレン受け２２の近傍適所に設けた電気ヒータ２３等の加熱手段により加熱して気化させ、高温多湿の雰囲気を形成するものである。なお、図中の符号２４は断熱材、２５はドレン受け２２の底面に設けたドレン穴である。 すなわち、通常の冷房・除湿運転や上述した第１の実施形態の凝縮水生成運転を実施して生成され、熱交換器表面からドレン受け２２に滴下したものを貯留する凹部２２ａを設けておく。この凹部２２ａは、好ましくはドレンパン２２の底面に形成されて空調用室内ユニット１０の幅方向へ延びる溝状とされ、略真上に上昇する蒸気がウイルス不活化フィルター１８の全域にわたって均等に当たるようになっている。また、凹部２２ａの凝縮水貯留容量は、内部区間Ｓを所望の高温多湿とし、必要な加熱運転時間を維持できるだけの水量を確保できるものとする。この凝縮水貯水容量は、凹部２２ａの断面形状や長さに加えて、ドレン穴２５の近傍に設けた堰板２２ｂの高さ等により規定される。 なお、凹部２２ａは、幅方向へ延びる溝状に限定されることはなく、幅方向へ一定のピッチで分割配設したものなど、種々の変形例が可能である。 このような構成とすれば、上述した第１の実施形態の加熱運転と同様に、内部空間Ｓを半密閉または密閉状態とし、電気ヒータ２３に通電して加熱する．この時、クロスフローファン１７は、内部空間Ｓを半密閉状態とした場合は運転を停止し、密閉状態とした場合は撹拌運転を実施するのが好ましい。この場合、通常の空調用室内ユニットに加熱手段の電気ヒータ２３が追加され、ドレン受け２２の形状に若干の変更を加えることで不活化剤活性化手段を形成することができる。 また、電気ヒータ２３の通電は、図１９に示した圧縮機３１及び室外ファン３３の運転・停止と同様に、必要な加熱運転時間を確保できるように断続して通電するなど適宜調整することが望ましい。 この結果、内部空間Ｓ内は高温多湿の不活化剤活性化雰囲気に維持され、不活化剤１８ｃが活性化してウイルスを活発に破壊するので、ウイルスを不活化することができる。 また、加熱運転の前後に行う捕集運転や換気運転等の各種運転については、上述した第１の実施形態と同様に行えばよい。 以上説明したように、本発明の空調用室内ユニット及びこれを備えた空気調和機によれは、ウイルス不活化フィルター１８に担持させた不活化剤１８ｃを活性化させる雰囲気とする不活化剤活性化手段を備えているので、ウイルスを積極的に破壊して不活化し、室内のウイルス量を低減してウイルスの感染可能性が低い室内環境を提供することができる。なお、本発明の構成は上述した実施形態に限定されるものではなく、本発明の要旨を逸脱しない範囲内において適宜変更することができる。 なお、本発明のウイルス不活化剤は、マスク、医療関係者用の着衣、壁紙または壁面等に使用される塗装材、またはウイルスに感染した患者を搬送する担架およびカプセルの内部に施用することが可能である。さらに、例えば医療廃棄物および病院のような患者を収用する施設内に散布するためのスプレーに用いることも可能である。また、玄関マット、フロアマット、カーペット、自動車のシートなどにも用いることができる。λファージの不活化率を示すグラフである。Ｍ１３ファージの不活化率を示すグラフである。大腸菌懸濁液の吸光度の変化を示すグラフである。不活化フィルターによるλファージの不活化率を示すグラフである。不活化フィルターを用いたλファージの感染力を示すグラフである。不活化フィルターによるＭ１３ファージの不活化率を示すグラフである。不活化フィルターを用いたＭ１３ファージの感染力を示すグラフである。カビの乾式試験方法を示した図である。カビの乾式試験の結果を示した図である。カビの湿式試験の結果を示した図である。本発明に係る空調用室内ユニットの第１の実施形態を示す断面図である。本発明に係る空気調和機の概略構成を示す斜視図である。図１２に示した空気調和機の冷媒回路図である。ウイルス不活化フィルターの第１構成例を示す図であって、（Ａ）は全体図、（Ｂ）は（Ａ）の部分拡大図である。ウイルス不活化フィルターの第２構成例を示す図であって、ウイルス不活化フィルターの要部を示す図である。ウイルス不活化フィルターの別の構成例を示す図であって、（Ａ）はウイルス不活化フィルターの第３構成例を示す全体図、（Ｂ）はウイルス不活化フィルターの第４構成例を示す全体図である。図１４ないし図１６に示すウイルス不活化フィルターをケース内に納めた状態を示す平面図である。ウイルス不活化フィルターのさらに別の構成例を示す図であって、（Ａ）はウイルス不活化フィルターの第５構成例を示す全体図、（Ｂ）はウイルス不活化フィルターの第６構成例を示す全体図、（Ｃ）はウイルス不活化フィルターの第７構成例を示す全体図である。リモコンの具体例を示す平面図である。図１１に示した空調用室内ユニットについて、その変形例を示す断面図である。本発明に係る空調用室内ユニットの第２の実施形態を示す要部断面図である。図２１の貯留部を示す平面図である。符号の説明１ ガラス板３ カビ胞子担体５ フィルター７ 滅菌シャーレ１０，１０Ａ 空調用室内ユニット１１，１１Ａ 吸込グリル（吸込口）１２ 吸入口フラップ（吸入口開閉手段）１３，１４，１５ 室内熱交換器１６ 吹出口１７ クロスフローファン（室内送風手段）１８ ウイルス不活化フィルター（不活化剤担持体）１８ｃウイルス不活化剤１９ プレフィルター２０ 吹出ルーバー２１ 吹出フラップ（吹出口開閉手段）２２ ドレン受け２２ａ 貯留部２２ｂ 堰板２３ 電気ヒータ（加熱手段）２４ 断熱材２５ ドレン穴３０ 空調用室外ユニット３１ 圧縮機３２ 室外熱交換器３３ 室外ファン３４ 四方弁３５ 電子膨張弁（絞り機構）５０ 冷媒配管６０ リモコン（リモートコントローラ）６１ ウイルスクリアボタン１００ 空気調和機Ｓ 内部空間 タンパク質変性剤およびタンパク質分解酵素から成る群から選択された一つ以上の活性成分を含み、液相においてウイルスを不活化することを特徴とするウイルス不活化剤。 タンパク質変性剤およびタンパク質分解酵素の両方を含み、液相においてウイルスを不活化することを特徴とするウイルス不活化剤。 前記タンパク質変性剤は尿素である、請求項１または２に記載のウイルス不活化剤。 前記タンパク質変性剤は界面活性剤である、請求項１または２に記載のウイルス不活化剤。 前記界面活性剤はドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）である、請求項４に記載のウイルス不活化剤。 前記酵素はプロテアーゼである、請求項１〜５の何れか一項に記載のウイルス不活化剤。 前記プロテアーゼは、pfu protease Sである、請求項６に記載のウイルス不活化剤。 前記ウイルスはエンベロープを有するウイルスである、請求項１〜７の何れか一項に記載のウイルス不活化剤。 前記ウイルスはエンベロープを有さないウイルスである、請求項１〜７の何れか一項に記載のウイルス不活化剤。 細菌の殺菌作用を有する、請求項１〜９の何れか一項に記載のウイルス不活化剤。 殺真菌作用を有する、請求項１〜１０の何れか一項に記載のウイルス不活化剤。 請求項１〜１１の何れか一項に記載のウイルス不活化剤が存在する溶液にウイルスを接触させることを特徴とする、ウイルスを不活化する方法。 ウイルス不活化フィルターであって、ウイルスをトラップするフィルターと、このフィルターに付着された請求項１〜１１の何れか一項に記載のウイルス不活化剤を具備することを特徴とするウイルス不活化フィルター。 室内の空気を取り入れるための吸込口と、該吸込口から取り入れた空気と冷媒とを熱交換させて冷却または加熱するための室内熱交換器と、該室内熱交換器で熱交換された空気を室内に戻すための吹出口と、前記吸込口から取り入れて熱交換した空気を前記吹出口から室内に吹き出すための室内送風手段と、前記空気が流れる内部空間に配設された請求項１３に記載のウイルス不活化剤を担持するウイルス不活化フィルターと、前記内部空間を前記ウイルス不活化剤が活性化する雰囲気に維持する不活化剤活性化手段と、を具備してなることを特徴とする空調用室内ユニット。 前記内部空間に連通する開口部の一部または全部を閉じて、前記内部空間を半密閉状態または密閉状態に保持する開閉手段を設けたことを特徴とする請求項１４に記載の空調用室内ユニット。 前記内部空間を密閉状態に保持し、前記室内送風手段を運転させて密閉空間内で前記ウイルス不活化剤が活性化する雰囲気とされた空気を撹拌することを特徴とする請求項１５に記載の空調用室内ユニット。 前記不活化剤活性化手段は、前記室内熱交換器の冷却運転により生成された凝縮水を、前記冷却運転の後に行われる前記室内熱交換器の加熱運転により加熱して気化させることを特徴とする請求項１４〜１６のいずれか一項に記載の空調用室内ユニット。 前記不活化剤活性化手段は、前記室内熱交換器の冷却運転により生成されてドレン受けに貯留された凝縮水を加熱手段により加熱して気化させることを特徴とする請求項１４〜１６のいずれか一項に記載の空調用室内ユニット。 前記内部空間を前記不活化剤活性化手段により高温多湿に維持した後、前記不活化剤担持体から水分を除去する劣化防止運転を行うことを特徴とする請求項１７または１８に記載の空調用室内ユニット。 前記不活化剤担持体の前記ウイルス不活化剤を活性化する前に、前記内部空間に室内の空気を取り入れて前記不活化剤担持体を通過させて流すウイルス捕集運転を行うことを特徴とする請求項１４〜１９のいずれか一項に記載の空調用室内ユニット。 請求項１４〜２０のいずれか一項に記載の空調用室内ユニットと、冷媒を圧縮するための圧縮機、及び冷媒と室内の空気との熱交換を行わせるための室外熱交換器を有する空調用室外ユニットと、これら空調用室内ユニット及び空調用室外ユニットを連結するとともに、冷媒をこれら空調用室内ユニット及び空調用室内ユニットの間で循環させるための冷媒配管と、を備えていることを特徴とする空気調和機。 【課題】ウイルスを効果的に不活化する不活化剤及び不活化方法を提供する。【解決手段】タンパク質変性剤およびタンパク質分解酵素から成る群から選択された一つ以上の活性成分を含み、液相においてウイルスを不活化することを特徴とするウイルス不活化剤。【選択図】 なし