生命科学関連特許情報
| タイトル： | 特許公報(B2)_放線菌由来の環状プラスミドＤＮＡ |
| 出願番号： | 1999032729 |
| 年次： | 2009 |
| IPC分類： | C12N 15/09 |
特許情報キャッシュ
井上 敏 高木 博史 中森 茂 JP 4258874 特許公報(B2) 20090220 1999032729 19990210 放線菌由来の環状プラスミドＤＮＡ チッソ株式会社 000002071 井上 敏 高木 博史 中森 茂 20090430 C12N 15/09 20060101AFI20090409BHJP JPC12N15/00 A C12N 15/00-90 GenBank/EMBL/DDBJ/GeneSeq SwissProt/PIR/GeneSeq UniProt/GeneSeq BIOSIS/MEDLINE/WPIDS(STN) 米国特許第０４６２１０６１（ＵＳ，Ａ） 特開昭５９−１４３５８９（ＪＰ，Ａ） 特開昭６０−２１７８９５（ＪＰ，Ａ） 特開昭６３−０４９０７５（ＪＰ，Ａ） 特開昭６１−１２４３８６（ＪＰ，Ａ） M. Redenbach, et al.，A set of ordered cosmids and a detailed genetic and physical map for the 8 Mb Streptomyces coelicolor A3(2) chromospme，Mollecular Microbiology，１９９６年，Vol.21(1)，pages 77-96 4 2000228981 20000822 10 20060120 冨士 良宏 【０００１】【発明が属する技術分野】本発明は、ε−ポリリジン生産能を有する放線菌由来のプラスミドＤＮＡに関する。【０００２】【従来の技術】放線菌は、抗生物質や様々な生理活性物質に代表されるような二次代謝産物を生産する能力を持ち、その遺伝子的背景の解明は、工業生産の開発において非常に重要である。それは、従来より行われてきた菌株改良に理論的根拠を与え、より合理的な戦略を提供するからである。具体的には、抗生物質の代謝経路に関与する遺伝子を人為的に操作することにより、最終産物の構造を積極的に改変したり、またその生産に関与する酵素の遺伝子発現の制御を変更することにより、生産の向上も望める。一般的に、放線菌はしばしば遺伝学的に不安定なことがあり、形質を支配する遺伝子を組換え操作により安定な系に移して保存解析も可能である。このことから、放線菌を宿主にした遺伝子組換え系で必須であるプラスミドベクターの開発が望まれている。しかし、放線菌のプラスミドベクター系は、主に特定の菌株でのみでの開発が行われている。一方、放線菌の大きな特徴は、菌種によりその性質が非常にことなることから、現在汎用されている大腸菌の場合と異なって、スタンダードの宿主−ベクター系では不十分であり、個々の研究対象の菌種に合った宿主−ベクター系の開発が必要である。現在までに、抗菌食品添加剤として、急速に波及しているε−ポリリジンは、特定の放線菌が産生しているリジンのポリマー誘導体であり、他の一般的保存剤と知られているソルビン酸やグリシン等に比べ、その価格は１０倍以上高価である。ε−ポリリジンの生産性を上げるため古典的変異剤処理により、高生産性菌株の分離を試みて来たが、ε−ポリリジンの生産価格を飛躍的に押し下げるまでには至っていない。そこで、遺伝子組換え手法の導入による生産性向上が必須であると考えられ、そのためには、ε−ポリリジンの生産菌での使用可能なベクター系の開発が急務である。しかし、今日まで、ε−ポリリジンを生産する放線菌を宿主としたプラスミドベクターに関する研究開発は全く行われていない。【０００３】【発明が解決しようとする課題】そこで、本発明者らは、現在工業的に製造に使用しているε−ポリリジンの生産能を有する放線菌株ストレプトマイセス属でのさらなる生産性向上のために、該菌株での宿主−プラスミドベクター系に使用可能な新規プラスミドの単離およびその利用を可能とすべく鋭意研究を行った。その結果、ε−ポリリジンを生産能を有する放線菌ストレプトマイセス アルブラスの細胞内で複製可能なプラスミドを見い出し、本発明に至った。以上の記述から明らかなように、本発明の目的は、下記（１）〜（４）に示されるポリリジン製造用のプラスミドを提供することである。本発明の目的は、また、下記（５）に示される形質転換体とこれを用いたε−ポリリジンの生産能増強方法を提供することである。【０００４】【課題を解決するための手段】すなわち、本発明は下記（１）〜（５）の構成を有する。（１）全長約３７ｋｂの塩基対からなり、図１に示される制限酵素地図で示されることを特徴とするプラスミドｐＮＯ３３。（２）配列番号１で示される塩基配列の少なくとも一部を有することを特徴とするプラスミドｐＮＯ３３。（３）配列番号２または配列番号３で示されるアミノ酸配列の少なくとも一部を有するタンパク質またはそれと実質的に同等の機能を有するタンパク質をコードするプラスミドｐＮＯ３３。（４）ε−ポリリジンの生産能を有する放線菌内で安定的に複製可能な前記（１）〜（３）に記載のプラスミドｐＮＯ３３。（５）ε−ポリリジンの生産向上に関与するタンパク質あるいはペプチド遺伝子を挿入された前記（１）〜（３）に記載のプラスミドｐＮＯ３３。【０００５】【発明の実施の形態】 以下、さらに詳細に本発明を説明する。本発明のプラスミドｐＮＯ３３は、ストレプトマイセス属に属するε−ポリリジンの生産菌から得られる環状プラスミドである。 具体的には、本発明のプラスミドは、例えばε−ポリリジンの生産能を有するストレプトマイセス アルブラス（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓａｌｂｕｌｕｓ）ＩＦＯ１４１４７から得ることができ、全長約３７ｋｂよりなり、且つ表１、表２及び図１に示す制限酵素をもつ複製可能な環状プラスミドである。【０００６】【表１】【０００７】図１において、決定された制限酵素の位置は、制限酵素HindIII の位置を起点として、時計周りの距離は表２のとおりである。【０００８】【表２】【０００９】 明らかに、本発明のプラスミドｐＮＯ３３は各種の制限酵素による切断部位を有しており、この事実は、本プラスミドを修飾して多くの有用なベクターを開発することを示している。また、このプラスミドあるいはその誘導プラスミドに目的とする遺伝子等、たとえばε−ポリリジンの生産酵素系を組み込み、これを適当な細菌に導入してその宿主を形質転換することも可能である。【００１０】 さらに、本発明により得られたプラスミドが新規性があるかどうか判断するには、本発明のプラスミドｐＮＯ３３部分塩基配列を決定し、既知のストレプトマイセス属由来のプラスミドと比較することにより、容易に異なることが判断できる。そこで、本発明者らは、プラスミドｐＮＯ３３由来のＤＮＡ断片を適当なプラスミドにサブクローニング後、その塩基配列を決定し、塩基配列１に示すように決定した。得られた塩基配列１を用いて、東京大学医科学研究所ヒトゲノム解析センターおよび米国Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ（ＮＣＢＩ）のデーターベース保有のすべでの塩基配列に対してホモロジー検索を行った結果、塩基配列が同一のものは検出できなかった。また、細菌由来の塩基配列の相同性が４０％以上でかつプラスミド配列由来の塩基配列も全く検出できなかった。すなわち、プラスミドｐＮＯ３３部分塩基配列は、現在まで全く知られていない塩基配列であり、ストレプトマイセス属由来プラスミドｐＮＯ３３は新規のプラスミドＤＮＡであることが明らかとなった。【００１１】 さらに、決定した塩基配列１内に、機能遺伝子としての翻訳可能領域が存在するかどうか調べた結果、配列２、配列３に示される翻訳可能領域が存在することが明らかとなった。アミノ酸配列２は、塩基配列１の１５７６番から１８０３番に相当する翻訳可能領域で、７６アミノ酸残基より構成されるタンパク質様ポリペプチドである。アミノ酸配列３は、塩基配列１の６４１番から１５７６番に相当する翻訳可能領域で、３１２アミノ酸残基より構成されるポリペプチド様物質である。 このことは、本プラスミドｐＮＯ３３は、他の翻訳可能遺伝子を組み込むことが可能であることの証明である。すなわち、目的とする有用遺伝子，たとえばε−ポリリジンの生産酵素系を組み込み、これを適当な宿主を形質転換することにより、ε−ポリリジンの生産の増強が期待できる。【００１２】 一方、その配列番号２および配列番号３を用いて同様にゲノムセンターのデーターベースにホモロジー検索を行った結果、特に配列番号２に関して、ストレプトマイセス属セリカラー種（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ ｃｏｅｌｉｃｏｌｏｒ）の染色体に存在し、抗生物質アクチノホヂン（Ａｃｔｉｎｏｒｈｏｄｉｎ）の産生調節に関与する遺伝子ＯＲＦ−Ｄ（７５アミノ酸残基）と約３６％の相同性が見い出された。このことは、本発明プラスミドｐＮＯ３３は、抗生物質等の二次代謝産物に関与する調節する遺伝子として存在する可能性があり、産業上利用できる。【００１３】【実施例】次に本発明の実施例を示すが、本発明はこれらの実施例に何ら限定されるものではない。【００１４】実施例１ ストレプトマイセス アルブラス（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ ａｌｂｕｌｕｓ）ＩＦＯ１４１４７からのプラスミドｐＮＯ３３の単離。 ストレプトマイセス アルブラス（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ ａｌｂｕｌｕｓ）ＩＦＯ１４１４７の一白金耳の灰色胞子を、５００ｍｌを坂口フラスコにいれた液体培地（たとえば、バクトトリプトン１０ｇ、イーストエクストラクト５ｇ、食塩５ｇを１Ｌの水道水に溶解後、ｐＨを７．３に調整した培地）５０ｍｌに接種し、振盪速度１４０ｒｐｍ、３０℃で１６時間培養した。 培養液から菌体を遠心５０００ｇ集菌し、ＴＥ緩衝液（２５ｍＭトリス（ヒドロキシ）アミノメタン（以下トリス）、２５ｍＭ ＥＤＴＡ：ｐＨ８．０）で洗浄後、溶菌液（０．３Ｍ ショ糖、２５ｍＭトリス、２５ｍＭ ＥＤＴＡ、２ｍｇ／ｍｌリゾチーム）で２０ｍｌに懸濁し、４℃で５分間放置し、２％ラウリル硫酸ナトリウムと０．３Ｎ水酸化ナトリウムからなる溶液１０ｍｌを添加し、ゆっくり混合後、さらに４℃で５分放置した。 この溶菌液に１５ｍｌの５Ｍ酢酸アンモニウムを中和混合し、４℃で１０分放置した後、１０分間の１２０００ｇでの高速遠心分離し、上清を分取した。この上清に等量のＴＥ緩衝液飽和のフェノールを加え、５分間激しく混合し、１０分間の１２０００ｇでの高速遠心分離後、水溶性画分を分取した。この水溶性画分に等量のクロロホルムを添加後、５分間激しく混合し、１０分間の１２０００ｇでの高速遠心分離後、水溶性画分を分取した。 分取水溶性画分に、０．１倍容の３Ｍ酢酸ナトリウムと２倍容のエタノールを添加し、−２０℃に３０分放置後、析出した白色沈殿物（核酸画分）を１２０００ｇでの高速遠心により回収し、適当量のＴＥ緩衝液に溶解した。リボ核酸除去のため、本核酸画分溶液に、最終濃度が５０ｕｇ／ｍｌになるように、リボ核酸分解酵素を加え、３７℃で３０分反応し、さらに、０．６倍容の２０％ポリエチレングリコール／５Ｍ食塩混合液を加え、４℃で一時間放置した。 生成した白色沈殿物を高速遠心により回収し、適当量のＴＥ緩衝液に溶解し、画分にプラスミド画分を得た。これを０．７％アガロースゲル電気泳動（１００ボルト、２０分）に供し、ゲルを臭化エチジュウムで染色することにより高分子核酸の存在を確認した。さらに、この高分子核酸画分を制限酵素ＨｉｎｄIII （日本ジーン社製）で消化後、バイオラッド社製のパルスフィールド電気泳動装置（泳動条件は、バイオラッド社製により提供されている条件、２００ボルト、１６時間）に供し、酵母染色体を分子量マーカーとして約３７ｋｂｐのプラスミドｐＮＯ３３由来のＤＮＡ断片を確認した。【００１５】実施例２ プラスミドｐＮＯ３３の詳細な制限酵素地図の作製。 実施例１で取得したプラスミドｐＮＯ３３の詳細な制限酵素地図作製は、市販の各種制限酵素（日本ジーン社製あるいは宝酒造社製）によってｐＮＯ３３を単一消化、二重消化、あるいは三重消化して得られたＤＮＡ断片を０．７％のアガロースゲル電気泳動あるいはバイオラッド社製のパルスフィールド電気泳動に供し、その移動度から分子量を求めた。 酵素の反応条件は、供給者によって決められた条件に従った。また、分子量は、ラムダファージＤＮＡを制限酵素ＨｉｎｄIII で消化して得られた分子量マーカー（日本ジーン社製）および酵母染色体を分子量マーカー（バイオラッド社製）の標準移動度をもとに決定した。これらの結果から、前記載の図１であるプラスミドｐＮＯ３３の詳細な制限酵素地図を決定した。【００１６】実施例３プラスミドｐＮＯ３３の塩基配列の決定。実施例１で取得したプラスミドｐＮＯ３３の塩基配列を決定するため、プラスミドｐＮＯ３３ＤＮＡを制限酵素, ＥｃｏＲＩまたはＳｍａＩで消化後、その断片を大腸菌で複製可能な公知プラスミドベクターｐＧｒｅｅｎ１９（Ｉｎｏｕｙｅら、Ｇｅｎｅ ｖｏｌ．１８９、ｐｐ１５９−１６２：１９９７）あるいはｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ ＳＫ＋（ストラッテジーン社製）のＥｃｏＲＩまたはＳｍａＩ部位に、常法によりサブクローン化を行った。挿入断片の確認は、実施例１記載のプラスミド単離法に基づきプラスミド分離し、ＥｃｏＲＩまたはＳｍａＩで消化後、０．７％のアガロースゲル電気泳動法により確認した。挿入断片の塩基配列は、ダイターミネーターサイクルシークエンシング法を用い、アプライド バイオシステム社の蛍光シークセンサー（ＡＢＩ３７３）にて決定した。前記載の決定塩基配列番号１に基づき、宝酒造社製のＤＮＡＳＩＳ Ｖｅｒ．３．６遺伝子解析ソフトウエアを使用することにより、翻訳可能領域を検索し、前記載のアミノ酸配列番号２および前記載のアミノ酸配列番号３を見い出した。【００１７】実施例４配列番号１−３に関する遺伝子データーベース相同性の検索。塩基配列番号１−３に基づき、世界規模で構築されている全ての遺伝子データーベースに対して、その相同性があるかどうか、インターネット経由でゲノムネットホームページ（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｇｅｎｏｍｅ．ａｄ．ｊｐ／あるいはｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／）で、解析ソフトはＦＡＳＴＡ、ＢＬＡＳＴ等を用いて検索を行った。塩基配列番号１は、全てのエントリー遺伝子配列に対して行い、アミノ酸配列番号２、３は、エントリーアミノ酸配列およびエントリー遺伝子配列より翻訳されるアミノ酸配列に対して行った。その結果、塩基配列番号１と著しく相同性のある遺伝子配列は検出できなかった。一方、アミノ酸配列番号２、３についても、顕著な相同性は見い出されなかった。しかし、配列番号２に関しては、ストレプトマイセス属セリカラー種（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ ｃｏｅｌｉｃｏｌｏｒ）の染色体に存在し、抗生物質アクチノホヂン（Ａｃｔｉｎｏｒｈｏｄｉｎ）の生産に関与する遺伝子ＯＲＦ−Ｄと約３６％の相同性が見い出された。このことは、本発明プラスミド上に、抗生物質等の二次代謝産物遺伝子が存在することを示唆し、産業上利用できることを示している。【００１８】【発明の効果】本発明のプラスミドは種々の制限酵素による開裂部位を有しており、本プラスミドを修飾し、ストレプトマイセス属細菌に使用可能な、多くの有用なベクターを開発することができる。また、このプラスミドに有用遺伝子を組込み、ストレプトマイセス属細菌に導入して宿主を形質転換させ、有用物質の生産が可能となる。【配列表】【配列表】【配列表】【図面の簡単な説明】【図１】 本発明のプラスミドｐＮＯ３３の制限酵素地図を示す。黒色部分は、塩基配列１の決定部分である。 ストレプトマイセス属に属する放線菌由来の環状プラスミドであって分子量が約３７Ｋｂｐであり、図１に示される制限酵素認識部位を有するプラスミドｐＮＯ３３。 ストレプトマイセス属に属する放線菌由来の環状プラスミドであって分子量が約３７Ｋｂｐであり、配列番号１で示される塩基配列を含むプラスミドｐＮＯ３３。 ストレプトマイセス属に属する放線菌が、ε−ポリリジン生産能を有する請求項１または２に記載のプラスミドｐＮＯ３３。 ε−ポリリジン生産能を有する微生物が、ストレプトマイセス アルブラス（Ｓｔｒｅｐｔｏ ｍｙｃｅｓ ａｌｂｕｌｕｓ）ＩＦＯ１４１４７である請求項１または２に記載のプラスミドｐＮＯ３３。