生命科学関連特許情報
| タイトル： | 特許公報(B2)_糖液の製造方法 |
| 出願番号： | 2012518654 |
| 年次： | 2013 |
| IPC分類： | C12P 19/14,C13K 1/02 |
特許情報キャッシュ
栗原 宏征 山本 優樹 山田 勝成 JP 5246379 特許公報(B2) 20130419 2012518654 20120302 糖液の製造方法 東レ株式会社 000003159 栗原 宏征 山本 優樹 山田 勝成 JP 2011046623 20110303 20130724 C12P 19/14 20060101AFI20130704BHJP C13K 1/02 20060101ALI20130704BHJP JPC12P19/14 AC13K1/02 Ｃ１２Ｐ １９／１４ Ｃ１３Ｋ １／０２ ＣＡ／ＢＩＯＳＩＳ／ＭＥＤＬＩＮＥ／ＷＰＩＤＳ（ＳＴＮ） ＪＳＴＰｌｕｓ／ＪＭＥＤＰｌｕｓ／ＪＳＴ７５８０（ＪＤｒｅａｍＩＩ） 特開２００６−８７３１９（ＪＰ，Ａ） 特開昭６３−８７９９４（ＪＰ，Ａ） 特開２００８−２０６４８４（ＪＰ，Ａ） 7 JP2012055323 20120302 WO2012118171 20120907 27 20130117 松原 寛子 本発明は、バイオマスから糖液を製造する方法に関する。 近年、セルロース含有バイオマスを酸、熱水、アルカリなどで前処理した後、セルラーゼを添加し加水分解することで糖液を製造する方法が広く検討されている。しかしながら、こうしたセルラーゼを使用する方法の欠点として、セルラーゼの使用量が多く、かつ価格も高いため、糖液製造コストが増大するという課題がある。 本課題を解決する手法として、セルロース加水分解に使用したセルラーゼを回収再利用する方法が提案されている。例えば、スピンフィルターによる連続固液分離を行い、得られた糖液を限外濾過膜に通じて濾過し、セルラーゼを回収する方法（特許文献１）、酵素糖化の段階において界面活性剤を投入することでセルラーゼ吸着を抑制し回収効率を向上させる方法や（特許文献２）、酵素糖化後の残さを通電処理することでセルラーゼ成分を回収する方法（特許文献３）などが開示されているが根本的な課題解決には至っていない。特開２００６−８７３１９号公報特開昭６３−８７９９４号公報特開２００８−２０６４８４号公報 本発明の解決しようとする課題は、前述の通りセルロースの加水分解で使用するセルラーゼの使用量を削減することにある。 本発明者は、上記課題を解決するため鋭意研究を行った結果、セルロース加水分解物に廃糖蜜を混合することを着目した。その結果、セルロース加水分解物に含まれるセルラーゼの回収量を向上することを見出し、本発明を完成するに至った。 すなわち、本発明は以下の［１］〜［７］の構成を有する。 ［１］以下の工程（１）〜（３）を含む、糖液の製造方法。工程（１）：セルロース前処理物に糸状菌由来セルラーゼを添加し、加水分解物を得る工程、工程（２）：前記加水分解物に廃糖蜜を添加混合し、混合糖液を得る工程、工程（３）：前記混合糖液を固液分離し、得られた溶液成分を限外濾過膜に通じて濾過し、非透過液として糸状菌由来セルラーゼを回収し、透過液として糖液を得る工程。 ［２］工程（１）の糸状菌由来セルラーゼがトリコデルマ由来セルラーゼである、［１］に記載の糖液の製造方法。 ［３］工程（１）のセルロース前処理物が、水熱処理、希硫酸処理およびアルカリ処理の群から選ばれる１以上の処理物である、［１］または［２］に記載の糖液の製造方法。 ［４］工程（２）において、加水分解物に廃糖蜜を添加混合し、混合糖液の糖濃度を５０〜２００ｇ／Ｌの範囲で調製する、［１］から［３］のいずれかに記載の糖液の製造方法。 ［５］工程（２）において、混合糖液を４０〜６０℃の温度範囲で保温する工程を含む、［１］から［４］のいずれかに記載の糖液の製造方法。 ［６］工程（３）の糖液を、ナノ濾過膜および／または逆浸透膜に通じて濾過し、透過液として発酵阻害物質を除去し、非透過液として糖濃縮液を得る工程を含む、［１］から［５］のいずれかに記載の糖液の製造方法。 ［７］［１］から［６］のいずれかに記載の糖液の製造方法で得られる糖液を発酵原料として化学品を生産する能力を有する微生物を発酵培養する、化学品の製造方法。 本発明により、セルロース加水分解物から糸状菌由来セルラーゼの酵素回収率が向上することによって、糖液の製造工程に使用されるセルラーゼ使用量を削減できることができる。また、本発明ではセルロース加水分解物に廃糖蜜を添加し混合糖液とすることにより、セルロースからだけではなく廃糖蜜からも糖成分を回収することができる。本発明の工程概略フロー図である。本発明を実施する装置略図である。濃縮糖液の製造に関する装置略図である。糖液および／または濃縮糖液を発酵原料として化学品を製造する略図である。既存製糖プラント脇に図２の装置を含む糖液製造プラントを建設した際の装置構成略図である。 本発明を実施するための形態に関し、工程ごとに詳細に説明する。 ［工程（１）］ 工程（１）におけるセルロース前処理物とは、セルロース含有バイオマスを加水分解のための前処理を行ったものを指す。セルロース含有バイオマスの具体例としては、バガス、スイッチグラス、ネピアグラス、エリアンサス、コーンストーバー、稲わら、麦わら、などの草本系バイオマス、あるいは樹木、廃建材などの木質系バイオマス、さらに藻類、海草、など水生環境由来のバイオマスのことを指す。こうしたバイオマスには、セルロースおよびヘミセルロース（以下、セルロースとヘミセルロースの総称として「セルロース」という。）の他に芳香族高分子であるリグニン等を含有している。特に本発明では、糸状菌由来セルラーゼによるバイオマス加水分解効率を向上させるために、セルロース含有バイオマスの前処理を行い、その結果得られたものをセルロース前処理物という。 前処理としては、酸処理、硫酸処理、希硫酸処理、アルカリ処理、水熱処理、亜臨界水処理、微粉砕処理、蒸煮処理、乾燥処理が挙げられるが、アルカリ処理、水熱処理または希硫酸処理は、他手法に比べ酵素糖化効率が優れ酵素使用量が少なくてすむことから、本発明においては水熱処理、希硫酸処理またはアルカリ処理であることが好ましい。 水熱処理は、セルロース含有バイオマスが、０．１〜５０重量％となるよう水を添加後、１００〜４００℃の温度で、１秒〜６０分処理する。こうした温度条件において処理することにより、セルラーゼによって加水分解されやすいセルロース前処理物を得ることができる。処理回数は特に限定されず該処理を１回以上行えばよい。特に該処理を２回以上行う場合、１回目と２回目以降の処理を異なる条件で実施してもよい。 希硫酸処理は、硫酸の濃度は０．１〜１５重量％であることが好ましく、０．５〜５重量％であることがより好ましい。反応温度は１００〜３００℃の範囲で設定することができ、１２０〜２５０℃で設定することが好ましい。反応時間は１秒〜６０分の範囲で設定することができる。処理回数は特に限定されず前記処理を１回以上行えばよい。特に上記処理を２回以上行う場合、１回目と２回目以降の処理を異なる条件で実施してもよい。希硫酸処理によって得られた加水分解物は、酸を含んでおり、さらにセルラーゼによる加水分解反応を行うため、あるいは発酵原料として使用するために、中和を行う必要がある。 アルカリ処理は、セルロース含有バイオマスに対して、水酸化ナトリウム、水酸化カルシウム、アンモニアから選ばれるアルカリを作用させる方法である。アルカリ処理における、使用するアルカリとして、特にアンモニアが好ましく使用できる。こうしたアンモニア処理は、特開２００８−１６１１２５号公報や特開２００８−５３５６６４号公報に記載の方法の手法で実施することができる。例えば、使用するアンモニア濃度はセルロース含有バイオマスに対して０．１〜１５重量％の範囲で添加し、４〜２００℃、好ましくは９０〜１５０℃で処理する。添加するアンモニアは液体状態、あるいは気体状態のどちらであってもよい。さらに添加する形態は純アンモニアでもアンモニア水溶液の形態でもよい。処理回数は特に限定されず前記処理を１回以上行えばよい。特に前記処理を２回以上行う場合、１回目と２回目以降の処理を異なる条件で実施してもよい。アンモニア処理によって得られた処理物は、さらに酵素による加水分解反応を行うため、アンモニアの中和あるいはアンモニアの除去を行う必要がある。中和は、加水分解物より固形分を固液分離により除去したアンモニアに対し行ってもよいし、固形分を含んだままの状態で行ってもよい。中和に使用する酸試薬は特に限定されない。アンモニアの除去は、アンモニア処理物を減圧状態に保つことでアンモニアを気体状態に揮発させて除去することができる。また除去したアンモニアは、回収再利用してもよい。 前述のセルロース前処理物について、工程（１）ではセルラーゼにより加水分解を行い、加水分解物を得ることを特徴としている。セルロースの加水分解とは、セルロースを低分子量化せしめることを指す。また、セルロースの加水分解においては、キシラン、マンナン、アラビナン、などのヘミセルロース成分も同時に加水分解される。加水分解物に含まれる単糖成分として、グルコース、キシロース、マンノース、ガラクトースなどであり、主な単糖成分は、セルロースの加水分解物であるグルコースである。また加水分解が不十分な場合、セロビオース、キシロビオースなどの２糖、セロオリゴ糖、キシロオリゴ糖などが含まれている。 工程（１）では、セルロース前処理物を糸状菌由来セルラーゼにより加水分解する。糸状菌由来セルラーゼは、トリコデルマ属（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ）、アスペルギルス属（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）、セルロモナス属（Ｃｅｌｌｕｌｏｍｏｎａｓ）、クロストリジウム属（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ）、ストレプトマイセス属（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ）、フミコラ属（Ｈｕｍｉｃｏｌａ）、アクレモニウム属（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ）、イルペックス属（Ｉｒｐｅｘ）、ムコール属（Ｍｕｃｏｒ）、タラロマイセス属（Ｔａｌａｒｏｍｙｃｅｓ）、ファネロカエーテ（Ｐｈａｎｅｒｏｃｈａｅｔｅ）属、白色腐朽菌、褐色腐朽菌、などが例できる。こうした糸状菌由来セルラーゼの中でも、セルロース分解活性が高いトリコデルマ由来セルラーゼを使用することが好ましい。 トリコデルマ由来セルラーゼとは、トリコデルマ属微生物由来のセルラーゼを主成分とする酵素組成物である。トリコデルマ属微生物は特に限定されないが、トリコデルマ・リーセイ（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ ｒｅｅｓｅｉ）が好ましく、具体的にはトリコデルマ・リーセイＱＭ９４１４（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ ｒｅｅｓｅｉ ＱＭ９４１４）、トリコデルマ・リーセイＱＭ９１２３（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ ｒｅｅｓｅｉＱＭ９１２３）、トリコデルマ・リーセイＲｕｔＣ−３０（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ ｒｅｅｓｅｉＲｕｔ Ｃ−３０）、トリコデルマ・リーセイＰＣ３−７（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ ｒｅｅｓｅｉ ＰＣ３−７）、トリコデルマ・リーセイＣＬ−８４７（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ ｒｅｅｓｅｉＣＬ−８４７）、トリコデルマ・リーセイＭＣＧ７７（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ ｒｅｅｓｅｉ ＭＣＧ７７）、トリコデルマ・リーセイＭＣＧ８０（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ ｒｅｅｓｅｉＭＣＧ８０）、トリコデルマ・ビリデＱＭ９１２３（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ ｖｉｒｉｄｅ９１２３）を例示することができる。また、前述のトリコデルマ属に由来する微生物であって、これらを変異剤あるいは紫外線照射などで変異処理を施し、セルラーゼ生産性が向上した変異株であってもよい。 本発明で使用するトリコデルマ由来セルラーゼは、セロビオハイドラーゼ、エンドグルカナーゼ、エキソグルカナーゼ、βグルコシダーゼ、キシラナーゼ、キシロシダーゼなどの複数の酵素成分を含む、セルロースを加水分解して糖化する活性を有する酵素組成物である。トリコデルマ由来セルラーゼは、セルロース分解において複数の酵素成分の協奏効果あるいは補完効果により効率的なセルロースの加水分解を実施することができる。特に本発明に使用するセルラーゼは、トリコデルマ由来セロビオハイドラーゼおよびキシラナーゼを含むことが好ましい。 セロビオハイドラーゼとは、セルロースの末端部分から加水分解していくことを特徴とするセルラーゼの総称であり、ＥＣ番号：ＥＣ３．２．１．９１としてセロビオハイドラーゼに帰属される酵素群が記載されている。 エンドグルカナーゼとは、セルロース分子鎖の中央部分から加水分解することを特徴とするセルラーゼの総称であり、ＥＣ番号：ＥＣ３．２．１．４、ＥＣ３．２．１．６、ＥＣ３．２．１．３９、ＥＣ３．２．１．７３としてエンドグルカナーゼに帰属される酵素群が記載されている。 エキソグルカナーゼとは、セルロース分子鎖の末端から加水分解することを特徴とするセルラーゼの総称であり、ＥＣ番号：ＥＣ３．２．１．７４、ＥＣ３．２．１．５８としてエキソグルカナーゼに帰属される酵素群が記載されている。 βグルコシダーゼとは、セロオリゴ糖あるいはセロビオースに作用することを特徴とするセルラーゼの総称であり、ＥＣ番号：ＥＣ３．２．１．２１としてβグルコシダーゼに帰属される酵素群が記載されている。 キシラナーゼとは、ヘミセルロースあるいは特にキシランに作用することを特徴とするセルラーゼの総称であり、ＥＣ番号：ＥＣ３．２．１．８としてキシラナーゼに帰属される酵素群が記載されている。 キシロシダーゼとは、キシロオリゴ糖に作用することを特徴とするセルラーゼの総称であり、ＥＣ番号：ＥＣ３．２．１．３７としてキシロシダーゼに帰属される酵素群が記載されている。 トリコデルマ由来セルラーゼとしては、粗酵素物が好ましく使用される。粗酵素物は、トリコデルマ属の微生物がセルラーゼを産生するよう調製した培地中で、任意の期間該微生物を培養した培養上清に由来する。使用する培地成分は特に限定されないが、セルラーゼの産生を促進するために、セルロースを添加した培地が一般的に使用できる。そして、粗酵素物として、培養液をそのまま、あるいはトリコデルマ菌体を除去したのみの培養上清が好ましく使用される。 粗酵素物中の各酵素成分の重量比は特に限定されるものではないが、例えば、トリコデルマ・リーセイ由来の培養液には、５０〜９５重量％のセロビオハイドラーゼが含まれており、残りの成分にエンドグルカナーゼ、βグルコシダーゼ等が含まれている。また、トリコデルマ属の微生物は、強力なセルラーゼ成分を培養液中に生産する一方で、βグルコシダーゼに関しては、細胞内あるいは細胞表層に保持しているため培養液中のβグルコシダーゼ活性は低いため、粗酵素物に、さらに異種または同種のβグルコシダーゼを添加してもよい。異種のβグルコシダーゼとしては、アスペルギルス属由来のβグルコシダーゼが好ましく使用できる。アスペルギルス属由来のβグルコシダーゼとして、ノボザイム社より市販されているＮｏｖｏｚｙｍｅ１８８などを例示することができる。粗酵素物に異種または同種のβグルコシダーゼを添加する方法としては、トリコデルマ属の微生物に遺伝子を導入し、その培養液中に産生されるよう遺伝子組換えされたトリコデルマ属の微生物を培養し、その培養液を単離する方法でもよい。 糸状菌由来セルラーゼの加水分解反応温度は、１５〜１００℃の範囲が好ましく、４０〜６０℃がより好ましく、５０℃が最も好ましい。また、加水分解反応時のｐＨは、ｐＨ３〜９の範囲が好ましく、ｐＨ４〜５．５がより好ましく、ｐＨ５が最も好ましい。ｐＨ調製には、酸あるいはアルカリを目的のｐＨとなるように添加し調製することができる。また、適宜緩衝液を使用してもよい。 その他、セルロース前処理物の加水分解では、セルロース前処理物と糸状菌セルラーゼの接触を促進させるため、また加水分解物の糖濃度を均一にするため攪拌混合を行うことが好ましい。セルロース前処理物の固形分濃度は、１〜２５重量％の範囲であることがより好ましい。特に工程（１）においては、セルロース前処理物の固形物濃度を２〜１０重量％の範囲と低濃度で設定して行うことが好ましい。これは、後段の工程（２）での廃糖蜜を希釈するための十分な水量を確保することを目的としているためである。また、別の利点として、固形物濃度を２〜１０重量％の低濃度で設定することで、セルロース前処理物の加水分解効率が向上するという効果を有している。これは、糸状菌由来セルラーゼが、加水分解による生成物であるグルコース、セロビオースなどの糖生成物により酵素反応が阻害されるという性質を有するためである。 本発明の工程（１）で得られる加水分解物の糖濃度は特に限定されないが、単糖濃度として１０〜１００ｇ／Ｌの範囲であることが好ましく、２０〜８０ｇ／Ｌであることがより好ましい。この糖濃度範囲であれば、後段工程として廃糖蜜と混合した際、最適な糖濃度に調製することができるためである。 ［工程（２）］ 本発明では、前述工程（１）で得られた加水分解物に廃糖蜜を添加混合することを特徴としている。廃糖蜜（モラセス、Ｍｏｒａｓｅｓｓ）とは、製糖用作物であるサトウキビや甜菜、砂糖大根、ビート、ぶどう等の絞り汁、あるいはこれらを一度結晶化した粗糖からの製糖の過程で生成する副産物であって、製糖過程における糖結晶化工程後に残った糖成分を含む溶液のことを指す。一般的に、糖結晶化工程は、複数回行うことが通常であり、１回目の結晶化を行い得た結晶成分である１番糖、さらに１番糖の残り液（１番糖蜜）の結晶化を行い得た結晶成分である２番糖、さらに２番糖の残り液（２番糖蜜）の結晶化を行い得た３番糖、のように結晶化を繰り返し行い、その残り液として得た最終段階の糖蜜のことを廃糖蜜という。廃糖蜜に含まれる糖成分としては、スクロース、グルコース、フルクトースを主成分として含んでおり、キシロース、ガラクトースなどのその他の糖成分も若干含まれる場合がある。一方、結晶化の回数が多くなるに伴い、糖成分以外の製糖作物に由来する成分が廃糖蜜中に濃縮されるという特徴も有しており、その結果として、発酵阻害物質も多く含まれることが知られている。廃糖蜜に含まれる発酵阻害成分としては、酢酸、ギ酸、ヒドロキシメチルフルフラール、フルフラール、バニリン、アセトバニロン、グアイヤコール、各種無機物（イオン）などを例示することができる。但し、廃糖蜜に含まれる糖および発酵阻害物質の成分あるいは量に関しては、特に限定されるものではない。 工程（２）で使用される廃糖蜜としては、結晶化回数が多く経た後の糖蜜であることが好ましく、具体的には、好ましくは少なくとも２回以上、より好ましくは３回以上結晶化を行った後に残る廃糖蜜である。また、糖濃度が２００ｇ／Ｌ以上であるものが好ましく、５００ｇ／Ｌ以上であるものがより好ましく使用できる。廃糖蜜中の糖成分濃度が２００ｇ／Ｌより低い場合、糸状菌由来セルラーゼの回収性が向上しないため好ましくない。一方、工程（２）で使用される廃糖蜜中の糖成分濃度の上限については特に限定はないが、通常の製糖工程で得られる廃糖蜜の上限は８００ｇ／Ｌであると考えられる。なお、廃糖蜜中の糖濃度は、ＨＰＬＣなどの公知の測定手法によって定量することができる。また廃糖蜜は、前述した糖に加え、Ｋ＋イオンを含むことが好ましい。Ｋ＋イオンの濃度は、１ｇ／Ｌ以上、より好ましくは５ｇ／Ｌ以上、最も好ましくは１０ｇ／Ｌ以上含むものが好ましく本発明に使用することができる。 工程（１）での加水分解物に対し、廃糖蜜を添加混合し、混合糖液とする。混合糖液の糖濃度は、高すぎると粘度が高くなりすぎるため、後段の限外濾過膜処理におけるフラックスを低下させることがあるため、混合糖液の糖濃度は、２００ｇ／Ｌ以下が好ましく、１５０ｇ／Ｌ以下がより好ましい。一方、混合糖液の糖濃度が、４０ｇ／Ｌ未満であると、最終的に得られる糖液濃度が低くなってしまう場合があるため、混合糖液の糖濃度は、４０ｇ／Ｌ以上が好ましく、５０ｇ／Ｌ以上がより好ましい。すなわち、混合糖液の糖濃度は、好ましくは４０〜２００ｇ／Ｌの範囲、より好ましくは５０〜１５０ｇ／Ｌの範囲になるよう混合する。また混合糖液は、室温（２５℃）でも構わないが、４０〜６０℃の温度範囲で保温することが好ましく、５０℃の温度範囲で保温することがさらに好ましい。こうすることで、後段限外ろ過膜によって回収できる酵素量が増大するため好ましい。 廃糖蜜を発酵原料として使用する場合、発酵で使用する微生物の種類によっては、廃糖蜜の主要糖分であるスクロースを炭素源として利用する効率が低い微生物が存在しており、こうした微生物を化学品等の製造に使用する際、予め廃糖蜜に含まれるスクロースをグルコースとフルクトースに加水分解したものを使用する方が好ましい。廃糖蜜の加水分解処理としては、酸性またはアルカリ条件下で加熱処理することでもよい。また、インベルターゼやスクラーゼによる酵素処理を行ってもよい。インベルターゼとは、別名β−フルクトフラノシダーゼといい、スクロースをグルコースとフルクトースに加水分解する酵素のことを指す。スクラーゼも、スクロースをグルコースとフルクトースに加水分解する酵素のことを指す。本発明で、使用するインベルターゼに関して特に限定されないが、酵母由来のインベルターゼが日本バイオコン株式会社、三菱化学フーズ株式会社から市販されており、これらを購入使用することができる。インベルターゼ処理の処理条件は、通常の効率的な作用条件であればよい。使用するスクラーゼについても特に限定されないが、和光純薬工業（株）、三菱化学フーズ（株）から市販されており、これらを購入して使用することができる。スクラーゼ処理条件は、通常の効率的な反応条件を採用することができる。前述したインベルターゼあるいはスクラーゼ処理は、廃糖蜜単独に予め添加し実施していてもよく、工程（１）の加水分解物に廃糖蜜を添加し、混合糖液とした後に実施してもよい。前述のように混合糖液にした後、４０〜６０℃の温度範囲にて保温することによって回収酵素量が増大するため、その際にインベルターゼあるいはスクラーゼを添加しておくと、スクロースの加水分解反応も実施できる。 ［工程（３）］ 工程（３）では、まず、工程（２）で得られた混合糖液を固液分離して溶液成分を回収する。固液分離は、スクリューデカンタなどの遠心分離法、加圧・吸引濾過などの濾過法、あるいは精密濾過などの膜濾過法といった公知の固液分離手法により実施することができる。こうした固液分離は１以上の複数手法組み合わせて実施してもよく、効率的に固形物を除去する手段であれば限定されない。但し、後段限外濾過膜のファウリングを抑制するという観点において、固液分離後の溶液成分には極力固形物が含まれないことが好ましく、具体的には遠心分離法もしくはフィルタプレスなどの濾過法にて１回目の固液分離した後、得られた溶液成分を、さらに精密濾過膜によって膜濾過することで、完全に固形物を除去することが好ましい。精密濾過膜とは、メンブレンフィルトレーションとも呼ばれ、圧力差を駆動力として、微粒子懸濁液から０．０１〜１０μｍ程度の粒子を分離除去できる分離膜である。精密濾過膜の表面には０．０１〜１０μｍの範囲の細孔を有し、その細孔以上の微粒子成分は膜側に分離除去することができる。精密濾過膜の材質は、酢酸セルロース、芳香族ポリアミド、ポリビニルアルコール、ポリスルホン、ポリフッ化ビニリデン、ポリエチレン、ポリアクリロニトリル、セラミック、ポリプロピレン、ポリカーボネート、ポリテトラフルオロエチレン（テフロン（登録商標））などが例示できるが特に限定されるものではなく、対汚性、薬品耐性、強度、濾過性といった観点において、ポリフッ化ビニリデン製の精密ろ過膜であることが好ましい。 次に、溶液成分を限外濾過膜処理する。限外濾過膜とは、一般的に細孔径１．５ナノメートルから２５０ナノメートルの範囲であって、分子量１，０００〜２００，０００の範囲の水溶性高分子を非透過液として阻止することが可能な分離膜のことを指す。限外濾過膜は、糸状菌由来セルラーゼを回収できる分画分子量であればよく、好ましい分画分子量は１，０００〜１００，０００Ｄａ、より好ましくは１０，０００〜３０，０００Ｄａである。限外濾過膜の素材としては、ポリエーテルサルホン（ＰＥＳ）、ポリフッ化ビニルデン（ＰＶＤＦ）、再生セルロースなどの素材の膜を使用することができるが、セルロースは、糸状菌由来セルラーゼによる分解を受けるため、ＰＥＳ、ＰＶＤＦなどの合成高分子を素材とした限外濾過膜を使用することが好ましい。限外濾過膜形状は、チューブラー式、スパイラルエレメント、平膜などが好ましく使用できる。限外濾過膜の濾過は、クロスフロー方式、デッドエンド濾過方式が挙げられるが、ファウリングあるいはフラックスの面でクロスフロー濾過方式が好ましい。 溶液成分を限外濾過膜に通じて濾過することにより、透過液として、糖液を得ることができる。得られる糖液は、混合糖液に本来含まれている固形物が固液分離によってほぼ完全に除去された液体である。一方、限外濾過膜に通じて濾過処理することで、非透過液側には、混合糖液中の着色物質、水溶性高分子が除去されるが、水溶性高分子に工程（１）で使用した糸状菌由来セルラーゼ成分が含まれる。回収される糸状菌由来セルラーゼ成分は、特に限定されないが、加水分解に使用した糸状菌由来セルラーゼ成分のうち、その全部の成分あるいは一部の成分に関して、非透過液として回収することができる。なお、非透過液には混合糖液由来の糖成分も含まれているため、こうした糖成分の回収を行うために、非透過液に加水して、さらに限外濾過膜に通じて濾過する操作を繰り返してもよい。 工程（３）の結果として、従来技術よりも回収酵素に含まれる糸状菌由来セルラーゼ酵素量が顕著に増大する効果が見られ、特に糸状菌由来セルラーゼ成分のうち、セロビオハイドラーゼおよびキシラナーゼが高効率で回収される。回収された糸状菌由来セルラーゼは、セルロース前処理物の加水分解に再利用することによって、糸状菌由来セルラーゼの使用量を削減することが可能になる。回収された糸状菌由来セルラーゼは、単独で加水分解に再利用してもよく、また未使用の糸状菌由来セルラーゼと混合して再利用してもよい。また、場合によっては、セルロースの加水分解以外の用途に有効活用してもよい。 ［糖濃縮工程］ 工程（３）で得られた糖液は、さらにＷＯ２０１０／０６７７８５号に記載される方法である、ナノ濾過膜および／または逆浸透膜に通じて濾過することにより、非透過液として、糖成分が濃縮された濃縮糖液を得ることができる。 ナノ濾過膜とは、ナノフィルター（ナノフィルトレーション膜、ＮＦ膜）とも呼ばれるものであり、「一価のイオンは透過し、二価のイオンを阻止する膜」と一般に定義される膜である。数ナノメートル程度の微小空隙を有していると考えられる膜で、主として、水中の微小粒子や分子、イオン、塩類等を阻止するために用いられる。 逆浸透膜とは、ＲＯ膜とも呼ばれるものであり、「一価のイオンを含めて脱塩機能を有する膜」と一般に定義される膜である。数オングストロームから数ナノメートル程度の超微小空隙を有していると考えられる膜で、主として海水淡水化や超純水製造などイオン成分除去に用いられる。 本発明で使用されるナノ濾過膜あるいは逆浸透膜の素材には、酢酸セルロース系ポリマー、ポリアミド、ポリエステル、ポリイミド、ビニルポリマー、ポリサルホンなどの高分子素材を使用することができるが、前記１種類の素材で構成される膜に限定されず、複数の膜素材を含む膜であってもよい。 本発明で用いるナノ濾過膜は、スパイラル型の膜エレメントが好ましく使用される。好ましいナノ濾過膜エレメントの具体例としては、例えば、酢酸セルロース系のナノ濾過膜エレメントであるＧＥ Ｏｓｍｏｎｉｃｓ社製ＧＥｓｅｐａ、ポリアミドを機能層とするアルファラバル社製ナノ濾過膜エレメントのＮＦ９９またはＮＦ９９ＨＦ、架橋ピペラジンポリアミドを機能層とするフィルムテック社製ナノ濾過膜エレメントのＮＦ−４５、ＮＦ−９０、ＮＦ−２００、ＮＦ−２７０またはＮＦ−４００、あるいは架橋ピペラジンポリアミドを主成分とする東レ株式会社製ナノ濾過膜のＵＴＣ６０を含む同社製ナノ濾過膜エレメントＳＵ−２１０、ＳＵ−２２０、ＳＵ−６００またはＳＵ−６１０が挙げられ、より好ましくはＮＦ９９またはＮＦ９９ＨＦ、ＮＦ−４５、ＮＦ−９０、ＮＦ−２００またはＮＦ−４００、あるいはＳＵ−２１０、ＳＵ−２２０、ＳＵ−６００またはＳＵ−６１０であり、さらに好ましくはＳＵ−２１０、ＳＵ−２２０、ＳＵ−６００またはＳＵ−６１０である。 本発明で使用される逆浸透膜の素材としては、酢酸セルロース系のポリマーを機能層とした複合膜（以下、酢酸セルロース系の逆浸透膜ともいう）またはポリアミドを機能層とした複合膜（以下、ポリアミド系の逆浸透膜ともいう）が挙げられる。ここで、酢酸セルロース系のポリマーとしては、酢酸セルロース、二酢酸セルロース、三酢酸セルロース、プロピオン酸セルロース、酪酸セルロース等のセルロースの有機酸エステルの単独もしくはこれらの混合物並びに混合エステルを用いたものが挙げられる。ポリアミドとしては、脂肪族および／または芳香族のジアミンをモノマーとする線状ポリマーまたは架橋ポリマーが挙げられる。 本発明で使用される逆浸透膜の具体例としては、例えば、東レ株式会社製ポリアミド系逆浸透膜モジュールである超低圧タイプのＳＵＬ−Ｇ１０、ＳＵＬ−Ｇ２０、低圧タイプのＳＵ−７１０、ＳＵ−７２０、ＳＵ−７２０Ｆ、ＳＵ−７１０Ｌ、ＳＵ−７２０Ｌ、ＳＵ−７２０ＬＦ、ＳＵ−７２０Ｒ、ＳＵ−７１０Ｐ、ＳＵ−７２０Ｐの他、逆浸透膜としてＵＴＣ８０を含む高圧タイプのＳＵ−８１０、ＳＵ−８２０、ＳＵ−８２０Ｌ、ＳＵ−８２０ＦＡ、同社酢酸セルロース系逆浸透膜ＳＣ−Ｌ１００Ｒ、ＳＣ−Ｌ２００Ｒ、ＳＣ−１１００、ＳＣ−１２００、ＳＣ−２１００、ＳＣ−２２００、ＳＣ−３１００、ＳＣ−３２００、ＳＣ−８１００、ＳＣ−８２００、日東電工株式会社製ＮＴＲ−７５９ＨＲ、ＮＴＲ−７２９ＨＦ、ＮＴＲ−７０ＳＷＣ、ＥＳ１０−Ｄ、ＥＳ２０−Ｄ、ＥＳ２０−Ｕ、ＥＳ１５−Ｄ、ＥＳ１５−Ｕ、ＬＦ１０−Ｄ、アルファラバル製ＲＯ９８ｐＨｔ、ＲＯ９９、ＨＲ９８ＰＰ、ＣＥ４０４０Ｃ−３０Ｄ、ＧＥ製ＧＥ Ｓｅｐａ、Ｆｉｌｍｔｅｃ製ＢＷ３０−４０４０、ＴＷ３０−４０４０、ＸＬＥ−４０４０、ＬＰ−４０４０、ＬＥ−４０４０、ＳＷ３０−４０４０、ＳＷ３０ＨＲＬＥ−４０４０、ＫＯＣＨ製ＴＦＣ−ＨＲ、ＴＦＣ−ＵＬＰ、ＴＲＩＳＥＰ製ＡＣＭ−１、ＡＣＭ−２、ＡＣＭ−４などが挙げられる。 ナノ濾過膜および／または逆浸透膜を使用して、糖液を濃縮する効果として、糖液中の糖濃度を高めるとともに、透過液として発酵阻害物質を除去できるという利点を有する。ここでいう発酵阻害物質とは、後段発酵工程で発酵を阻害する糖以外の成分のことを指し、具体的には、芳香族化合物、フラン系化合物、有機酸、１価無機塩などを例示することができる。こうした代表的な、芳香族化合物およびフラン系化合物の例としては、フルフラール、ヒドロキシメチルフルフラール、バニリン、バニリン酸、シリンガ酸、コニフェリルアルデヒド、クマル酸、フェルラ酸などを例示できる。有機酸、無機塩としては、酢酸、ギ酸、カリウム、ナトリウムなどを例示することができる。濃縮糖液の糖濃度は、ナノ濾過膜および／または逆浸透膜の処理条件によって、５０ｇ／Ｌ〜４００ｇ／Ｌの範囲で任意に設定することができ、濃縮糖液の用途等に応じて任意に設定すればよい。また前述した発酵阻害物質をより除去したい場合、糖液あるいは濃縮糖液に加水し、ナノ濾過膜および／または逆浸透膜で目的の糖濃度となるまで濃縮すればよく、この際、透過液として発酵阻害物質を除去することができる。 なお、逆浸透膜に比べ、ナノ濾過膜を使用した方が、発酵阻害物質の除去効果が高いため好ましい。ナノ濾過膜を使用するか、あるいは逆浸透膜を使用するかは、混合糖液に含まれる発酵阻害物質の濃度、あるいは後段発酵で影響を鑑みて選択すればよい。 また前述した濃縮糖液を、さらに真空式蒸発缶、多重効用缶、凍結乾燥、スプレードライヤー、熱風乾燥、などによってさらに濃縮してもよい。 ［糖液・濃縮糖液］ 本発明により得られた糖液および／または濃縮糖液は、食用、甘味料、飼料用途、発酵原料などの用途に使用することができる。 ［化学品製造工程］ 本発明により得られた糖液および／または濃縮糖液を発酵原料として化学品を生産する能力を有する微生物を生育させることで、各種化学品を製造することができる。ここでいう発酵原料として微生物を生育させるとは、糖液に含まれる糖成分あるいはアミノ源を微生物の栄養素として利用し、微生物の増殖、生育維持を行うことを意味している。化学品の具体例としては、アルコール、有機酸、アミノ酸、核酸など発酵工業において大量生産されている物質を挙げることができる。こうした化学品は、糖液中の糖成分を炭素源として、その代謝の過程において生体内外に化学品として蓄積生産する。微生物によって生産可能な化学品の具体例として、エタノール、１，３−プロパンジオール、１，４−ブタンジオール、グリセロールなどのアルコール、酢酸、乳酸、ピルビン酸、コハク酸、リンゴ酸、イタコン酸、クエン酸などの有機酸、イノシン、グアノシンなどのヌクレオシド、イノシン酸、グアニル酸などのヌクレオチド、カダベリンなどのアミン化合物を挙げることができる。さらに、本発明の糖液は、酵素、抗生物質、組換えタンパク質などの生産に適用することも可能である。こうした化学品の製造に使用する微生物に関しては、目的の化学品を効率的に生産可能な微生物であればよく、大腸菌、酵母、糸状菌、担子菌などの微生物を使用することができる。 本発明の糖液および／または濃縮糖液を化学品製造のための発酵原料に使用する場合、必要に応じて、窒素源、無機塩類、及び必要に応じてアミノ酸、ビタミンなどの有機微量栄養素を適宜含有させてもよい。さらに場合によっては、キシロースに加え、炭素源として、グルコース、スクロース、フラクトース、ガラクトース、ラクトース等の糖類、これら糖類を含有する澱粉糖化液、甘藷糖蜜、甜菜糖蜜、ハイテストモラセス、あるいは酢酸等の有機酸、あるいはエタノールなどのアルコール類、グリセリンなどを追加して、発酵原料として使用してもよい。窒素源としては、アンモニアガス、アンモニア水、アンモニウム塩類、尿素、硝酸塩類、その他補助的に使用される有機窒素源、例えば油粕類、大豆加水分解液、カゼイン分解物、その他のアミノ酸、ビタミン類、コーンスティープリカー、酵母または酵母エキス、肉エキス、ペプトン等のペプチド類、各種発酵菌体およびその加水分解物などが使用される。無機塩類としては、リン酸塩、マグネシウム塩、カルシウム塩、鉄塩、マンガン塩等を適宜添加することができる。 微生物の培養方法は、バッチ培養、フェドバッチ培養、連続培養など公知の発酵培養方法が利用できる。特に本発明の糖液および／または濃縮糖液は、限外濾過膜等によって固形物が完全に除去されているという特徴を有しており、発酵に使用した微生物を遠心分離、膜分離などの手法により分離回収し、再利用を行うことができる。こうした微生物の分離回収および再利用は、培養期間中に新たな糖液および／または濃縮糖液を添加しながら、連続的に微生物を分離回収してもよく、また、培養終了後に微生物を分離回収し、次バッチの培養に再利用してもよい。 ［糖液製造装置構成］ 次に本発明の糖液の製造方法に関し、使用する装置について、略図を使用して説明する。 図１は、本発明の工程概略フロー図であり、詳細は前述の通りである。 図２は、本発明を実施する装置略図である。セルロース前処理物および糸状菌由来セルラーゼは、加水分解反応槽（２）に投入され、ここで加水分解を行う。加水分解を効率的に行うために、保温装置（１）および混合装置（３）を加水分解槽（２）に具備されてなることが好ましい。加水分解終了後、加水分解反応槽（２）に対し、廃糖蜜が添加される。添加する廃糖蜜は、ハンドリングの容易さを考え、事前に希釈されたものであってもよい。廃糖蜜を加水分解物に添加後、混合装置（３）を使用して混合することが好ましい。また、糸状菌由来セルラーゼの回収効率を高めるために、保温装置（１）を使用して、加水分解槽温度を４０〜６０℃の範囲に保持してもよい。次に、加水分解槽（２）で調製調製した混合糖液は、固液分離装置（５）に送液ポンプ（４）などの移液手段を使用して投入する。固液分離装置（５）は、遠心分離、プレスフィルター、スクリュープレス、ロータリードラムフィルター、ベルトフィルターなどの公知の固液分離装置を使用できる。好ましくは、分離膜を使用する濾過法の方が好ましい。固液分離装置（５）を使用して、得られた溶液成分は、さらに精密濾過膜装置（６）を使用して濾過してもよい。このように固液分離工程として、固液分離装置（５）および精密濾過膜装置（６）を通じて得られた溶液成分は、溶液回収槽（７）に回収される。溶液回収槽（７）は、限外濾過膜ポンプ（８）を通じて、限外濾過膜（９）に連結しており、ここで糸状菌由来セルラーゼと糖液に分離される。限外濾過膜（９）は、スパイラルモジュールなどのモジュール状に加工されてなるものが好ましく使用できる。限外濾過膜（９）で分離された糸状菌由来セルラーゼは、非透過液として、溶液回収槽（７）を通じて回収される。一方、限外濾過膜（９）の透過液は、糖液として回収でき、化学品製造などに使用することができる。 図３は、本発明の糖液をさらに濃縮する装置略図である。本発明の糖液は、糖液回収槽（１０）に保持され、高圧ポンプ（１１）を通じて、ナノ濾過膜および／または逆浸透膜（１２）に連結してなる。本発明の糖成分は、ナノ濾過膜および／または逆浸透膜（１２）の非透過液として回収され、糖液回収槽（１０）に濃縮糖液として回収される。また、ナノ濾過膜および／または逆浸透膜（１２）の透過液としては、発酵阻害物質が余剰水とともに除去される。 図４は、本発明の糖液および／または濃縮糖液を使用して、化学品を製造する装置略図である。本発明の糖液および／または濃縮糖液は、攪拌装置（１５）および保温装置（１３）を具備する発酵槽（１４）に投入される。微生物は、発酵槽に投入され、生育することにより化学品を製造するとともに、培養終了時、あるいは培養過程において、微生物分離装置（１６）によって、微生物と化学品を含む培養液を分離することができる。微生物分離装置（１６）によって分離された微生物は、発酵槽（１４）に回収される。 図５は、本発明の糖液製造装置を含む糖液プラントを既存製糖プラント脇に建設した際の装置構成略図である。既存製糖プラントとして、製糖原料としてサトウキビを使用した際の実施形態一例を示す図面である。製糖プラントには、サトウキビを裁断するためのシュレッダー（裁断工程）（１７）、サトウキビジュースを搾汁する圧搾機（搾汁工程）（１８）、サトウキビジュースを貯留するジュースタンク（１９）、サトウキビジュースを濃縮する効用缶（多重効用缶）（濃縮工程）（２０）、濃縮液に含まれる糖を結晶化する晶析装置（結晶化工程）（２１）、結晶化した原料糖を分離する分離装置（２２）、が含まれる。本発明で使用する廃糖蜜は、晶析装置（２１）、あるいは分離装置（２２）より排出される。圧搾機（１８）で排出されたサトウキビバガスは、コンベアーなどの輸送装置（２３）によって糖液プラントに輸送される。サトウキビバガスは、前処理工程の前段階に粉砕機（２４）によって粉砕される。粉砕機は、グラインダーミル、カッターミル、ハンマーミルなどを使用することができ、また複数の組み合わせであってもよい。粉砕されたサトウキビバガスは、少なくとも加熱機能を有する加熱装置（２５）にて前処理される（前処理工程）。前処理は、前述したように、酸、アルカリ、希硫酸、アンモニア、苛性ソーダなどを添加してもよい。セルロース前処理物は、前述した図２の装置にて、糸状菌由来セルラーゼによる加水分解を行う（工程１）。その後、製糖プラントより排出される廃糖蜜（モラセス）を工程（１）の加水分解物に添加する。廃糖蜜は、輸送ライン（２６）にて図２の装置に連結されていればよい。図２の装置の後に、糖濃縮のための図３の装置を加えてもよい。また、前述のように本発明の糖液は、食用、飼料用途、発酵原料などに使用できる。 以下に、実施例を挙げて本発明を具体的に説明する。ただし、本発明はこれらに限定されるものではない。 （参考例１）セルロース前処理物の調製調製（水熱処理） セルロース含有バイオマスとして、サトウキビバガスを使用した。前記セルロース含有バイオマスを水に浸し、撹拌しながら１８０℃で２０分間オートクレーブ処理（日東高圧株式会社製）した。処理後は溶液成分とセルロース前処理物に遠心分離（３０００Ｇ）を用いて固液分離した。得られたセルロース前処理物を以下実施例に使用した。 （参考例２）糖濃度の測定 糖液に含まれるスクロース、グルコースおよびキシロース濃度は、下記に示すＨＰＬＣ条件で、標品との比較により定量した。 カラム：Ｌｕｎａ ＮＨ２（Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ社製） 移動相：ミリＱ：アセトニトリル＝２５：７５（流速０．６ｍＬ／分） 反応液：なし 検出方法：ＲＩ（示差屈折率） 温度：３０℃。 （参考例３）発酵阻害物質の分析 芳香族化合物・フラン系化合物は下記に示すＨＰＬＣ条件で、標品との比較により定量した。なお各分析サンプルは、３５００Ｇで１０分間遠心分離を行い、その上清成分を下記分析に供した。 カラム：Ｓｙｎｅｒｇｉ ＨｉｄｒｏＲＰ ４．６ｍｍ×２５０ｍｍ（Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ製） 移動相：アセトニトリル−０．１％ Ｈ３ＰＯ４（流速１．０ｍＬ／ｍｉｎ） 検出方法：ＵＶ（２８３ｎｍ） 温度：４０℃ 酢酸、ギ酸は下記に示すＨＰＬＣ条件で、標品との比較により定量した。なお各分析サンプルは、３５００Ｇで１０分間遠心分離を行い、その上清成分を下記分析に供した。 カラム：Ｓｈｉｍ−ＰａｃｋとＳｈｉｍ−Ｐａｃｋ ＳＣＲ１０１Ｈ（株式会社島津製作所製）の直列 移動相：５ｍＭ ｐ−トルエンスルホン酸（流速０．８ｍＬ／ｍｉｎ） 反応液：５ｍＭ ｐ−トルエンスルホン酸、２０ｍＭ ビストリス、０．１ｍＭ ＥＤＴＡ・２Ｎａ（流速０．８ｍＬ／ｍｉｎ） 検出方法：電気伝導度 温度：４５℃。 （参考例４）トリコデルマ由来セルラーゼの調製 トリコデルマ由来セルラーゼは以下の方法で調製した。［前培養］ コーンスティップリカー５％（ｗ／ｖｏｌ）、グルコース２％（ｗ／ｖｏｌ）、酒石酸アンモニウム０．３７％（ｗ／ｖｏｌ）、硫酸アンモニウム０．１４（ｗ／ｖｏｌ）、リン酸二水素カリウム０．２％（ｗ／ｖｏｌ）、塩化カルシウム二水和物０．０３％（ｗ／ｖｏｌ）、硫酸マグネシウム七水和物０．０３％（ｗ／ｖｏｌ）、塩化亜鉛０．０２％（ｗ／ｖｏｌ）、塩化鉄(ＩＩＩ)六水和物０．０１％（ｗ／ｖｏｌ）、硫酸銅(ＩＩ)五水和物０．００４％（ｗ／ｖｏｌ）、塩化マンガン四水和物０．０００８％（ｗ／ｖｏｌ）、ホウ酸０．０００６％（ｗ／ｖｏｌ）、七モリブデン酸六アンモニウム四水和物０．００２６％（ｗ／ｖｏｌ）となるよう蒸留水に添加し、１００ｍＬを５００ｍＬバッフル付き三角フラスコに張り込み、１２１℃で１５分間オートクレーブ滅菌した。放冷後、これとは別にそれぞれ１２１℃で１５分間オートクレーブ滅菌したＰＥ−ＭとＴｗｅｅｎ８０をそれぞれ０．０１％（ｗ／ｖｏｌ）添加した。この前培養培地にトリコデルマ・リーセイＰＣ３−７を１×１０５個／ｍＬになるように植菌し、２８℃、７２時間、１８０ｒｐｍで振とう培養し、前培養とした（振とう装置：ＴＡＩＴＥＣ社製 ＢＩＯ−ＳＨＡＫＥＲ ＢＲ−４０ＬＦ）。 ［本培養］ コーンスティップリカー５％（ｗ／ｖｏｌ）、グルコース２％（ｗ／ｖｏｌ）、セルロース（アビセル）１０％（ｗ／ｖｏｌ）、酒石酸アンモニウム０．３７％（ｗ／ｖｏｌ）、硫酸アンモニウム０．１４％（ｗ／ｖｏｌ）、リン酸二水素カリウム０．２％（ｗ／ｖｏｌ）、塩化カルシウム二水和物０．０３％（ｗ／ｖｏｌ）、硫酸マグネシウム七水和物０．０３％（ｗ／ｖｏｌ）、塩化亜鉛０．０２％（ｗ／ｖｏｌ）、塩化鉄(ＩＩＩ)六水和物０．０１％（ｗ／ｖｏｌ）、硫酸銅(ＩＩ)五水和物０．００４％（ｗ／ｖｏｌ）、塩化マンガン四水和物０．０００８％（ｗ／ｖｏｌ）、ホウ酸０．０００６％（ｗ／ｖｏｌ）、七モリブデン酸六アンモニウム四水和物０．００２６％（ｗ／ｖｏｌ）となるよう蒸留水に添加し、２．５Ｌを５Ｌ容撹拌ジャー（ＡＢＬＥ社製 ＤＰＣ−２Ａ）容器に張り込み、１２１℃で１５分間オートクレーブ滅菌した。放冷後、これとは別にそれぞれ１２１℃で１５分間オートクレーブ滅菌したＰＥ−ＭとＴｗｅｅｎ８０をそれぞれ０．１％添加し、あらかじめ前記の方法にて液体培地で前培養したトリコデルマ・リーセイＰＣ３−７を２５０ｍＬ接種した。その後、２８℃、８７時間、３００ｒｐｍ、通気量１ｖｖｍにて培養を行い、遠心分離後、上清を膜濾過（ミリポア社製 ステリカップ−ＧＶ 材質：ＰＶＤＦ）した。この前述条件で調製した培養液に対し、βグルコシダーゼ（Ｎｏｖｏｚｙｍｅ１８８）をタンパク質重量比として、１／１００量添加し、これをトリコデルマ由来セルラーゼとして、以下、実施例に使用した。 （参考例５）糸状菌由来セルラーゼの回収酵素量の測定方法 工程（３）で回収できる糸状菌由来セルラーゼの回収酵素量は、１）結晶セルロース分解活性、２）セロビオース分解活性、３）キシラン分解活性、の３種の分解活性（以下、活性値という。）を測定することにより定量した。 １）結晶セルロース分解活性 酵素液（所定条件で調製）に対し、結晶セルロースであるアビセル（Ｍｅｒｃｈ社製、Ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ Ｍｉｃｒｏｃｒｙｓｔａｌｌｉｎｅ）を１ｇ／Ｌ、酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ ５．０）を１００ｍＭとなるよう添加し、５０℃で２４時間反応させた。反応液は１ｍＬチューブで調製し、前記条件にて回転混和しながら反応を行った。反応後、チューブを遠心分離し、その上清成分のグルコース濃度を測定した。グルコース濃度は、参考例２に記載の方法に準じて測定した。結晶セルロース分解活性は、生成したグルコース濃度（ｇ／Ｌ）をそのまま活性量として使用し、回収酵素量の比較に使用した。 ２）セロビオース分解活性 酵素液に対し、セロビオース（和光純薬）５００ｍｇ／Ｌ、酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ ５．０）を１００ｍＭとなるよう添加し、５０℃で０．５時間反応させた。反応液は１ｍＬチューブで調製し、前記条件にて回転混和しながら反応を行った。反応後、チューブを遠心分離し、その上清成分のグルコース濃度を測定した。グルコース濃度は、参考例２に記載の方法に準じて測定した。セロビオース分解活性は、生成したグルコース濃度（ｇ／Ｌ）をそのまま活性量として使用し、回収酵素量の比較に使用した。 ３）キシラン分解活性 酵素液に対し、キシラン（Ｂｉｒｃｈ ｗｏｏｄ ｘｙｌａｎ、和光純薬）１０ｇ／Ｌ、酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ ５．０）を１００ｍＭとなるよう添加し、５０℃で４時間反応させた。反応液は１ｍＬチューブで調製し、前記条件にて回転混和しながら反応を行った。反応後、チューブを遠心分離し、その上清成分のキシロース濃度を測定した。キシロース濃度は、参考例２に記載の方法に準じて測定した。キシロース分解活性は、生成したキシロース濃度（ｇ／Ｌ）をそのまま活性量として使用し、回収酵素量の比較に使用した。 （参考例６）無機イオン濃度の測定 糖液に含まれるカチオンおよびアニオン濃度は、下記に示すＨＰＬＣ条件で、標品との比較により定量した。 １）カチオン分析 カラム：Ｉｏｎ Ｐａｃ ＡＳ２２（ＤＩＯＮＥＸ社製） 移動相：４．５ｍＭ Ｎａ２ＣＯ３／１．４ｍＭ ＮａＨＣＯ３（流速１．０ｍＬ／分） 反応液：なし 検出方法：電気伝導度（サプレッサ使用） 温度：３０℃ ２）アニオン分析 カラム：Ｉｏｎ Ｐａｃ ＣＳ１２Ａ（ＤＩＯＮＥＸ社製） 移動相：２０ｍＭメタンスルホン酸（流速１．０ｍＬ／分） 反応液：なし 検出方法：電気伝導度（サプレッサ使用） 温度：３０℃ （参考例７）廃糖蜜の成分分析 廃糖蜜として、「廃糖蜜（Ｍｏｌａｓｓｅｓ Ａｇｒｉ）」（製造元：オーガニックランド株式会社）を使用した。本廃糖蜜の原料は、サトウキビ由来粗糖である。廃糖蜜の糖成分、有機酸、芳香族・フラン系化合物、無機イオンの分析結果を表１〜表４に示す。また前記各成分に関し、成分別で累計した濃度を表５に示す。なお各成分の分析は、参考例２、参考例３、参考例６に順じて実施した。 （参考例８）エタノール濃度分析 エタノール蓄積濃度の測定には、ガスクロマトグラフ法により定量した。Ｓｈｉｍａｄｚｕ ＧＣ−２０１０キャピラリーＧＣ ＴＣ−１（ＧＬ ｓｃｉｅｎｃｅ） １５ ｍｅｔｅｒ Ｌ．＊０．５３ｍｍ Ｉ．Ｄ．，ｄｆ１．５μｍを用いて、水素塩イオン化検出器により検出・算出して評価した。 （比較例１）加水分解物に廃糖蜜を添加混合しない糖液製造 工程（１）： 参考例１で調製したセルロース前処理物（０．５ｇ）に蒸留水を加え、参考例４で調製したトリコデルマ由来セルラーゼ０．５ｍＬを添加し、総重量が１０ｇとなるようさらに蒸留水を添加した。さらに本組成物のｐＨが４．５〜５．３の範囲となるよう希釈硫酸あるいは希釈苛性ソーダで調製した。ｐＨを調製した本組成物を枝付試験管に移し（東京理化器械株式会社製 φ３０ ＮＳ１４／２３、小型メカニカルスターラー ＣＰＳ−１０００、変換アダプター、三方コック付添加口、保温装置 ＭＧ−２２００）、５０℃にて２４時間保温および攪拌し、加水分解物を得た。 工程（２）： 比較例のため実施せず。 工程（３）： 工程（１）で得た加水分解物を遠心分離（３０００Ｇ、１０分）にて固液分離し、溶液成分（６ｍＬ）と固形物に分離した。また、溶液成分は、さらにマイレクスＨＶフィルターユニット（３３ｍｍ、ＰＶＤＦ製、細孔径０．４５μｍ）を使用して濾過を行った。得られた溶液成分の糖濃度（グルコースおよびキシロース濃度）は、参考例２記載の方法で測定した。測定した糖濃度を表６に示す。得られた溶液成分は、分画分子量１００００の限外濾過膜（Ｓａｒｔｏｒｉｕｓ ｓｔｅｄｉｍ ｂｉｏｔｅｃｈ社製 ＶＩＶＡＳＰＩＮ ２０ 材質：ＰＥＳ）で濾過し、膜画分が１ｍＬになるまで４５００Ｇにて遠心した。蒸留水１０ｍＬを膜画分に添加し、再度膜画分が１ｍＬになるまで４５００Ｇにて遠心した。この操作を再度行った後、膜画分から回収酵素液を回収した。回収酵素量は、参考例５に準じて各活性値を測定することにより定量した。なお、本比較例１で測定した活性値は、「１（基準）」として、後述比較例２および実施例１との回収酵素量の比較のために使用した（表７）。 （比較例２）加水分解物に試薬糖液を添加する糖液製造 工程（１）： 比較例１の工程（１）と同じ手順で実施した。 工程（２）： 廃糖蜜ではない試薬糖液を工程（１）の加水分解物に添加混合した。試薬糖液は、参考例７に記載の廃糖蜜と同じ糖濃度となるように調製した。すなわち、試薬糖液は、グルコース１４８ｇ、フルクトース１６３ｇ、スクロース３７１ｇをＲＯ水１Ｌに完全に溶解させ調製し、試薬糖液とした。こうして得た試薬糖液０．５ｍＬを工程（１）の加水分解物添加した。添加後、均一になるよう室温（２５℃）で５分程度混合した後、これを混合糖液とした。 工程（３）： 工程（２）で得られた混合糖液を使用して、比較例１の工程（３）と同じ手順で、固液分離および限外濾過膜処理を行った。得られた糖濃度を表６に示す。また測定した活性値は、比較例１の活性値で除した値を比較例２の回収酵素量として表７に示す。 （実施例１）セルロース加水分解物に廃糖蜜を添加混合する糖液の製造方法 工程（１）： 比較例１の工程（１）と同じ手順で実施した。 工程（２）： 工程（１）で得られた加水分解物（１０ｍＬ）に対し、廃糖蜜（参考例７：糖濃度６８９ｇ／Ｌ）を、０．５ｇ添加した。添加後、均一になるよう、室温（２５℃）で５分程度混合した後、これを混合糖液とした。 工程（３）： 工程（２）で得られた混合糖液を使用して、比較例１の工程（３）と同じ手順で、固液分離および限外濾過膜処理を行った。得られた糖濃度を表６に示す。また測定した活性値は、比較例１の活性値で除した値を実施例１の回収酵素量として表７に示す。 比較例１、比較例２、実施例１を比較したところ、実施例１では、比較例１よりも回収酵素量が増大することから、廃糖蜜成分に回収酵素量を増加させる成分が含まれていることが示唆された。また比較例２の回収酵素量は、比較例１とほぼ同程度であることから、廃糖蜜に含まれる糖成分（スクロース、グルコース、フルクトース）が、回収酵素量に影響することはなく、それ以外の成分が酵素回収増加に関与することが示唆された。 （実施例２）廃糖蜜の添加量と回収酵素量との関係 実施例１の工程（２）において、廃糖蜜の添加量０．１ｇ（実施例１）、０．５ｇ、１ｇ、２ｇ、５ｇをそれぞれ添加した際、回収できる糸状菌由来セルラーゼの回収酵素量を比較した。各実験区からの回収酵素の活性値を比較例１の活性値で除した値を回収酵素量（相対値）として表８に示す。その結果、廃糖蜜の添加量が増大するに伴い、回収酵素量、特に結晶セルロース分解活性に関与する酵素量が増大することが判明した。 （比較例３）試薬糖添加量と回収酵素量の関係 比較例２の工程（２）において、試薬糖液の添加量を０．１ｇ（比較例２）、０．５ｇ、１ｇ、２ｇ、５ｇと設定し、これらを添加した際、回収される糸状菌由来セルラーゼの酵素量を比較したところ、表９に示すように、実施例２の結果とは異なり、試薬糖の添加量が増えても、回収酵素量は、いずれも増大しないことが判明した。すなわち、廃糖蜜に含まれる糖以外の成分が、回収酵素量の増大に関与していることが判明した。 （実施例３）混合糖液の保温温度と回収酵素量の関係 実施例１の工程（２）において、廃糖蜜の添加量０．５ｇ添加、混合糖液とした後、保温する温度を、２５℃（実施例１）、４０℃、５０℃、６０℃、７０℃と設定し、各実験区での回収酵素量を回収酵素の活性値を測定することにより比較した（表１０）。その結果、混合糖液を４０〜６０℃の温度範囲で保温することにより、回収酵素量がさらに増大することが判明した。 （実施例４）ナノ濾過膜または逆浸透膜を使用して濃縮糖液を得る工程 ［糖液の調製］ 糖液（１Ｌ）を以下条件で調製した。 工程（１）： 参考例１で得られたセルロース前処理物（４００ｇ）にトリコデルマ由来セルラーゼ４ｇを添加し、総重量が８ｋｇとなるようさらに蒸留水を添加した。さらに本組成物のｐＨが４．５〜５．３の範囲となるよう希釈苛性ソーダで調製した。この液を液温が４５〜５０℃を保つよう保温しながら、かつｐＨが４．５〜５．３の範囲を保つように希釈硫酸、希釈苛性ソーダを添加して２４時間保温し、加水分解物８ｋｇを得た。 工程（２）： 工程（１）で得られた加水分解物８ｋｇに廃糖蜜０．４ｋｇを添加した。添加後、均一になるように５分混合した後、これを混合糖液とした。 工程（３）： 工程（２）で得られた混合糖液を固液分離および限外濾過膜処理を行った。固液分離は、小型フィルタプレス装置（薮田産業株式会社製フィルタプレス ＭＯ−４）を用いて行った。ろ布はポリエステル製織布（薮田産業株式会社製 Ｔ２７３１Ｃ）を使用した。混合糖液８Ｌを小型タンクの中に入れて下から圧縮空気で曝気しながら液投入口を開いてエアーポンプ（タイヨーインタナショナル製 ６６０５３−３ＥＢ）で徐々にろ室内にスラリー液を投入した。次にろ室に付設されているダイヤフラムを膨らませて圧搾工程を行った。徐々に圧搾圧力を上昇させていき、０．５ＭＰａまで上昇させてから約３０分間放置してろ液として溶液成分を回収した。得られた溶液成分の総量は６Ｌであった。残りの液成分については装置デッドボリュームのために損失した。次に固液分離の溶液成分は、精密濾過膜を使用して濾過を行った。精密濾過は、ステリカップＨＶ１０００ｍＬ（ミリポア社製、ＰＶＤＦ、平均細孔径０．４５μｍ）を使用して実施し、５Ｌのろ液を得た。得られたろ液（溶液成分）は、分画分子量１００００の限外濾過膜（ＧＥ製 ＳＥＰＡ ＰＷシリーズ 機能面材質：ポリエーテルスルホン）平膜をセットした小型平膜濾過装置（ＧＥ製 Ｓｅｐａ（登録商標） ＣＦ ＩＩ Ｍｅｄ／Ｈｉｇｈ Ｆｏｕｌａｎｔ Ｓｙｓｔｅｍ）を使用して実施した。原水側流速２．５Ｌ／分、膜フラックスが０．１ｍ／Ｄと一定になるように操作圧力を制御しながら５Ｌのうち４Ｌを濾過し、糖液を得た。 ［糖液のナノ濾過膜または逆浸透膜処理］ 前記工程（１）〜（３）で製造した糖液１Ｌを使用してナノ濾過膜濃縮または逆浸透膜濃縮を実施した。ナノ濾過膜は“ＤＥＳＡＬ−５Ｌ”（デザリネーション社製）を使用し、逆浸透膜は架橋全芳香族系逆浸透膜“ＵＴＣ８０”（東レ株式会社製）を使用し、それぞれの膜を小型平膜濾過装置（ＧＥ製 “Ｓｅｐａ”（登録商標） ＣＦ ＩＩ Ｍｅｄ／Ｈｉｇｈ Ｆｏｕｌａｎｔ Ｓｙｓｔｅｍ）にセットし、原水温度を２５℃、高圧ポンプの圧力を３ＭＰａで濾過処理を行った。この処理により、０．５Ｌのナノ濾過膜濃縮液濃縮液および０．５Ｌの透過液を得た（２倍濃縮）。ナノ濾過膜を使用して得た濃縮糖液を表１１に、逆浸透膜を使用して得た濃縮糖液を表１２にそれぞれ示す。表１１および表１２に示す通り、糖成分の濃縮は、ナノ濾過膜、逆浸透膜のいずれの膜でも実施可能であるものの、ナノ濾過膜で濃縮した場合、発酵阻害物質であるＨＭＦ、フルフラール、酢酸、カリウムイオンなどを除去できる効果が高いことが判明した。 （実施例５）糖液を発酵原料とするエタノール発酵試験 実施例４の糖液調製工程（工程（１）〜（３）実施）で得られた糖液を使用して、酵母（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｃｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ ＯＣ−２：ワイン酵母）を使用して、エタノール発酵試験を行った。比較のため、実施例４の糖液調製工程における工程（１）〜（２）までを実施して得られた混合糖液も発酵原料として使用した。前述酵母をＹＰＤ培地（２％グルコース、１％酵母エキス（Ｂａｃｔｏ Ｙｅａｓｔ Ｅｘｔｒａｃｔ／ＢＤ社）、２％ポリペプトン（日本製薬株式会社製）にて、１日間２５℃で前培養を行った。次に、得られた培養液を、糖液および混合糖液（糖濃度５７ｇ／Ｌ）に対し、１％（２０ｍＬ）となるように添加した。微生物を添加後、２５℃で２日間インキュベートした。この操作で得られた培養液を参考例８の手順でエタノール蓄積濃度を分析した。表１３に示すように、セルロース加水分解物と廃糖蜜を混合しただけの混合糖液のままでは、エタノール蓄積濃度が低いことが判明した。これは、本来、工程（３）で除去されるべき物質が発酵阻害要因として作用したことによるものと予想された。 （実施例６）濃縮糖液を発酵原料とするエタノール発酵試験 実施例５と同じ手順で、実施例４で得られたナノ濾過膜による濃縮糖液および逆浸透膜による濃縮糖液にＲＯ水にて２倍希釈したものを発酵培地として使用した。その結果、表１４に示すように、いずれの濃縮糖液も実施例５を上回る発酵成績であり、特にナノ濾過膜による濃縮糖液が発酵培地として優れることが判明した。 （実施例７）混合糖液のインベルターゼ処理 実施例１の工程（２）の加水分解物（１０ｍＬ）に対し、廃糖蜜（参考例７：糖濃度６８９ｇ／Ｌ）を、０．５ｇ添加した。添加後、均一になるよう、室温（５０℃）で５分程度混合した後、これを混合糖液とした。その後、酵母由来インベルターゼ１ｇ（Invertasesolution, from yeast、和光純薬工業）を添加し、さらに１時間放置した。 工程（３）： 工程（２）で得られた混合糖液を使用して、比較例１の工程（３）と同じ手順で、固液分離および限外濾過膜処理を行った。得られた糖濃度を表１５に示す。 表１５に示すように実施例１の糖濃度と比較として、スクロースの加水分解によって、グルコースおよびフルクトースの糖濃度が増加することが判明した。 （実施例８）インベルターゼ処理した糖液によるＬ−乳酸生産 ラクトコッカス・ラクティスＪＣＭ７６３８株を、実施例７の糖液５ｍＬに植菌し、２４時間、３７℃の温度で静置培養した。培養液に含まれるＬ−乳酸濃度を以下条件で分析した。カラム：Shim-Pack SPR-H（株式会社島津製作所製）移動相：５ｍＭ ｐ−トルエンスルホン酸（流速０．８ｍＬ／ｍｉｎ） 反応液：５ｍＭ ｐ−トルエンスルホン酸、２０ｍＭ ビストリス、０．１ｍＭ EDTA・２Na（流速０．８ｍＬ／ｍｉｎ）検出方法：電気伝導度温度：４５℃ 分析の結果、Ｌ−乳酸が２６ｇ／Ｌ蓄積していることが確認され、本発明の糖液により乳酸生産が可能であることが確認できた。 （比較例４）試薬糖液によるＬ−乳酸生産 比較のため表１５記載の糖濃度になるようにグルコース、キシロース、スクロース、フルクトースを混合した試薬糖液５ｍＬを調製した。ラクトコッカス・ラクティスＪＣＭ７６３８株を前述試薬糖液に植菌し、２４時間、３７℃の温度で静置培養したが、生育は確認されなかった。これは、実施例８の糖液には、乳酸菌生育のためのアミノ酸、ビタミンなど含まれるのに対して、試薬糖液には含まれないことが、その要因と考えられた。 （参考例９） セルロース含有バイオマスとして、サトウキビバガスを使用した。前記セルロース含有バイオマスを硫酸１％水溶液に浸し、１５０℃で３０分オートクレーブ処理（日東高圧株式会社製）した。処理後、固液分離を行い、硫酸水溶液（以下、希硫酸処理液）とセルロース前処理物（希硫酸）に分離した。 （比較例５）加水分解物に廃糖蜜を添加混合しない糖液製造 参考例９で調製したセルロース前処理物（希硫酸）を使用して、比較例１と同じ手順で、回収酵素液を回収した。回収酵素量は、参考例５に準じて各活性値を測定することにより定量した。なお、本比較例５で測定した活性値を「１（基準）」として、後述比較例６および実施例９との回収酵素量の比較のために使用した（表１６）。 （比較例６）加水分解物に試薬糖液を添加する糖液製造 工程（１）： 比較例１の工程（１）と同じ手順で実施した。 工程（２）：比較例２と同じ手順で実施した。 工程（３）： 工程（２）で得られた混合糖液を使用して、比較例１の工程（３）と同じ手順で、固液分離および限外濾過膜処理を行った。測定した活性値は、比較例５の活性値で除した値を比較例６の回収酵素量として表１６に示す。 （実施例９）セルロース加水分解物に廃糖蜜を添加混合する糖液の製造方法 工程（１）： 比較例１の工程（１）と同じ手順で実施した。 工程（２）： 実施例１と同じ手順で実施した。 工程（３）： 工程（２）で得られた混合糖液を使用して、比較例１の工程（３）と同じ手順で、固液分離および限外濾過膜処理を行った。測定した活性値は、比較例５の活性値で除した値を実施例９の回収酵素量として表１６に示す。 比較例５、比較例６、実施例９を比較したところ、実施例９では、比較例５よりも回収酵素量が増大することから、廃糖蜜成分に回収酵素量を増加させる成分が含まれていることが示唆された。また比較例６の回収酵素量は、比較例５とほぼ同程度であることから、廃糖蜜に含まれる糖成分（スクロース、グルコース、フルクトース）が、回収酵素量に影響することはなく、それ以外の成分が酵素回収増加に関与することが示唆された。本結果は、セルロース前処理に関係なく、廃糖蜜で回収酵素活性が増大することを示す結果である。 本発明によって、セルロースを含むバイオマスから、各種化学品を発酵製造するための発酵原料となる糖液を製造することができる。１ 保温装置２ 加水分解槽 ３ 混合装置４ 送液ポンプ５ 固液分離装置６ 精密濾過膜装置７ 溶液回収槽８ 限外濾過膜ポンプ９ 限外濾過膜１０ 糖液回収槽１１ 高圧ポンプ１２ ナノ濾過膜および／または逆浸透膜１３ 保温装置１４ 発酵槽１５ 攪拌装置１６ 微生物分離装置１７ シュレッダー１８ 圧搾機１９ ジュースタンク２０ 効用缶２１ 晶析装置２２ 分離装置２３ 輸送装置２４ 粉砕機２５ 加熱装置２６ 輸送ライン 以下の工程（１）〜（３）を含む、糖液の製造方法。工程（１）：セルロース前処理物に糸状菌由来セルラーゼを添加し、加水分解物を得る工程、工程（２）：前記加水分解物に廃糖蜜を添加混合し、混合糖液を得る工程、工程（３）：前記混合糖液を固液分離し、得られた溶液成分を限外濾過膜に通じて濾過し、非透過液として糸状菌由来セルラーゼを回収し、透過液として糖液を得る工程。 工程（１）の糸状菌由来セルラーゼがトリコデルマ由来セルラーゼである、請求項１に記載の糖液の製造方法。 工程（１）のセルロース前処理物が、水熱処理、希硫酸処理およびアルカリ処理の群から選ばれる１以上の処理物である、請求項１または２に記載の糖液の製造方法。 工程（２）において、加水分解物に廃糖蜜を添加混合し、混合糖液の糖濃度を４０〜２００ｇ／Ｌの範囲で調製する、請求項１から３のいずれかに記載の糖液の製造方法。 工程（２）において、混合糖液を４０〜６０℃の温度範囲で保温する工程を含む、請求項１から４のいずれかに記載の糖液の製造方法。 工程（３）の糖液を、ナノ濾過膜および／または逆浸透膜に通じて濾過し、透過液として発酵阻害物質を除去し、非透過液として糖濃縮液を得る工程を含む、請求項１から５のいずれかに記載の糖液の製造方法。 請求項１から６のいずれかに記載の糖液の製造方法により糖液を製造する工程、および該工程で得られる糖液を発酵原料として化学品を生産する能力を有する微生物を発酵培養する工程を含む、化学品の製造方法。