生命科学関連特許情報
| タイトル： | 再公表特許(A1)_非特異反応抑制剤 |
| 出願番号： | 2008065032 |
| 年次： | 2010 |
| IPC分類： | G01N 33/543 |
特許情報キャッシュ
高木 義和 新谷 雄一 JP WO2009025364 20090226 JP2008065032 20080822 非特異反応抑制剤 三菱化学メディエンス株式会社 591122956 森田 憲一 100090251 山口 健次郎 100139594 高木 義和 新谷 雄一 JP 2007216750 20070823 G01N 33/543 20060101AFI20101029BHJP JPG01N33/543 581JG01N33/543 581D AP(BW,GH,GM,KE,LS,MW,MZ,NA,SD,SL,SZ,TZ,UG,ZM,ZW),EA(AM,AZ,BY,KG,KZ,MD,RU,TJ,TM),EP(AT,BE,BG,CH,CY,CZ,DE,DK,EE,ES,FI,FR,GB,GR,HR,HU,IE,IS,IT,LT,LU,LV,MC,MT,NL,NO,PL,PT,RO,SE,SI,SK,TR),OA(BF,BJ,CF,CG,CI,CM,GA,GN,GQ,GW,ML,MR,NE,SN,TD,TG),AE,AG,AL,AM,AO,AT,AU,AZ,BA,BB,BG,BH,BR,BW,BY,BZ,CA,CH,CN,CO,CR,CU,CZ,DE,DK,DM,DO,DZ,EC,EE,EG,ES,FI,GB,GD,GE,GH,GM,GT,HN,HR,HU,ID,IL,IN,IS,JP,KE,KG,KM,KN,KP,KR,KZ,LA,LC,LK,LR,LS,LT,LU,LY,MA,MD,ME,MG,MK,MN,MW,MX,MY,MZ,NA,NG,NI,NO,NZ,OM,PG,PH,PL,PT,RO,RS,RU,SC,SD,SE,SG,SK,SL,SM,ST,SV,SY,TJ,TM,TN,TR,TT,TZ,UA,UG,US,UZ,VC,VN,ZA,ZM,ZW 再公表特許(A1) 20101125 2009529077 23 本発明は、免疫測定法において、微量物質を正確に検出、定量する際の障害となる非特異反応を抑制するための非特異反応抑制剤に関する。 従来より抗原・抗体反応を利用する特異性の高い免疫学的測定法であっても、試料によっては測定しようとする抗原が存在しない場合であっても陽性の測定値を示し、真値とは異なる測定値を示す問題があった。非特異反応と呼ばれる現象である。 測定する抗原に特異的に結合する抗体を不溶性担体へ固相化する免疫学的測定方法として、ラテックス凝集光学的測定法やエンザイムイムノアッセイ法がある。当該測定法を使用し、試料中の抗原濃度を測定する場合、測定対象とする試料によっては、抗原以外にも固相化抗体を認識しこれに反応する因子（非特異反応因子）が存在する場合がある。この場合、測定しようとする抗原が試料中に存在しない場合であっても陽性の測定値を示し、真値とは異なる測定値を示す問題が生じる。 試料中に存在する非特異反応因子としては、測定対象とする抗原以外であって、抗体を固相化した担体に反応するものであれば、特に限定されないが、発生頻度が高い因子としてＩｇＭ、ＩｇＧ、ＩｇＡの自然抗体を挙げることができる。試料がヒト体液、例えば、血清や血漿である場合には、ヒトＩｇＭやヒトＩｇＧが非特異反応に高い頻度で関与し、ラテックス凝集光学的測定法においては非特異的なラテックス担体の凝集を発生させる。 当該非特異反応因子による非特異反応を抑制する方法として、抗ヒトＩｇＭ、抗ヒトＩｇＧ抗体等を測定試薬に共存させ、ヒトＩｇＭやヒトＩｇＧによる影響を回避する方法がある。この場合具体的に添加される抑制剤として、ヒト以外の動物種より得られる血清成分が提案されている（特許文献１）。また、特許文献２には、非特異反応因子を何れかの動物に免疫することで得られた抗体を測定試薬に共存させる方法が記載されている。この種の抗体を測定試薬に共存させることで、非特異反応を低減させることは可能である。 しかしながら、動物血清より得られるＩｇＧやＩｇＭは抗原を認識する部位を複数箇所含有する。例えば、１分子のＩｇＧには２箇所、ＩｇＭにおいては少なくとも１０箇所の抗原認識部位を有する。それに加えＩｇＧやＩｇＭは、他のタンパク質に比べ疎水性が高い特徴がある。これらの理由により、ＩｇＧあるいはＩｇＭと、その標的となる抗原とを同反応液中で共存させた場合、免疫比ろう反応が生じる。免疫比ろう反応とは、複数の抗原がＩｇＧやＩｇＭにより架橋され、巨大な免疫複合体を形成し、光学的に濁度として検出される程度の濁りが発生する現象である。例えば、ヒトＩｇＭに結合する抗体を含む反応液に、ヒトＩｇＭを添加すると免疫比ろう反応が生じ、反応液に濁りが発生する。この場合、光学的に濁度を測定し抗原量を測定するラテックス凝集光学的測定法においては、免疫比ろう反応により正確な測定値を示さない場合がある。そのため、非特異反応因子による非特異反応は回避が可能であるが、当該回避により二次的に生じる免疫比ろう反応が新たに発生するという問題が残る。これらに加え、ＩｇＧやＩｇＭ分子は、リウマチ因子が試料中に存在する場合、抗体分子内のＦｃ領域にリウマチ因子が結合し、免疫比ろう反応を更に増強するという問題点がある。 当該問題点の対処方法として、測定試薬に添加する抗体量を少なくすることが可能である。しかし、添加量が非特異反応因子による影響を十分に抑制する程度の添加量に達していない場合、非特異反応の抑制は不十分である。 このような背景の基で、非特異反応を抑制する物質として、「抗体」を分解することで得られる「抗体断片」を利用する方法を検討した。例えば、ＩｇＧ分子をタンパク質分解酵素であるペプシンにより分解し得られるＦ（ａｂ’）２を非特異反応抑制剤として利用する方法を挙げることができる。ＩｇＧ分子やＩｇＭ分子は疎水性の高いＦｃ領域を有する一方、Ｆ（ａｂ’）２においてはＦｃ領域を含まない。このため、Ｆ（ａｂ’）２は抗体の添加で認められる免疫比ろう反応は生じにくくなり、測定薬への多量の添加が可能である。また、Ｆｃ領域を有しないために、前記リウマチ因子からの影響も解消する。従って、ＩｇＧの添加で問題となった、免疫比ろう反応、リウマチ因子の影響はＦ（ａｂ’）２を利用することで回避することができる。また、Ｆ（ａｂ’）２の非特異反応の抑制効果は、ＩｇＧと同程度であった。以上の点より、抗体断片であるＦ（ａｂ’）２を非特異反応抑制剤として利用する方法は、前記抗体を利用する発明に比し、更に実用性の高い方法である。一方、当該抑制剤を含む測定薬についての有用性を評価したところ、測定薬の非特異抑制効果の持続性が不良と判明した。 Ｆ（ａｂ’）２分子は、ヒンジ部領域のジスルフィド結合を介し２分子のＦａｂ’が結合した分子である。Ｆ（ａｂ’）２の特徴として、酸化還元反応に感受性が高い性質が挙げられる。Ｆ（ａｂ’）２は容易に還元され、２分子のＦａｂ’へ分解される。また、血清成分にはＦ（ａｂ’）２のヒンジ部にてペプチド結合を切断する、タンパク質分解酵素が含まれており、血清からＦ（ａｂ’）２の精製が不充分であった場合、あるいは測定試薬にタンパク質分解酵素等がコンタミネーションする場合ではＦ（ａｂ’）２は分解される。そのため、測定試薬とＦ（ａｂ’）２を共存させた場合、測定試薬の保存方法により、容易にＦ（ａｂ’）２の分解が生じる。Ｆａｂ’の非特異反応を抑制する効果については、抗体あるいはＦ（ａｂ’）２に比し非常に弱いことから、測定試薬中でのＦ（ａｂ’）２の分解が非特異抑制効果の持続性の悪さの原因と予想された。実際Ｆａｂ’を非特異抑制の目的で添加した測定試薬では、有意な非特異抑制効果は示さなかった。 一方、これまで述べた免疫学的測定における非特異反応抑制とは別の技術として、化学修飾したＦａｂ’を抗腫瘍剤として使用することが公知である。例えば、ＤｅｌｇａｄｏＣ．等の文献（非特許文献１）においては、Ｆａｂ’にポリエチレングリコールを化学修飾した、抗腫瘍剤の実施例が報告されている。更に、特許文献３においては、Ｆａｂ’のチオール基を介して薬剤およびポリマーを結合させた抗腫瘍剤が開示されている。特開２００６−３８８２３号公報特開平１１−２８７８０１号公報米国特許５，５４１，２９７号明細書「ブリティッシュ・ジャーナル・オブ・キャンサー（British Journal of Cancer）」，（英国），1996年，第73巻，第2号，p. 175-182 先に述べたとおり、非特異反応抑制剤としての抗体の添加では免疫比ろう反応の影響があった。Ｆ（ａｂ’）２添加では非特異抑制効果の持続性に問題点があった。上記現状に鑑み、本発明では上記問題点を解決し、かつ経済効率の観点からより少量の添加で効果を示す非特異反応抑制剤を提供することを目的とする。 ＩｇＧやＦ（ａｂ’）２は非特異抑制効果を保有する一方、Ｆａｂ’においては非特異抑制能が非常に低かった。この原因として、（１）Ｆａｂ’は抗原結合部位を１つしか持たないこと、（２）Ｆａｂ’は抗原に結合することはできても非特異抑制能を示さない、すなわち、ある程度の分子サイズがなければ、非特異反応因子に結合可能であっても、非特異反応因子による非特異反応を抑制することができない可能性が示唆された。そこで、本発明者は、Ｆａｂ’に様々な高分子を結合させ、巨大化し、非特異抑制効果を回復するのかを検討した。その結果、高分子を修飾する際の結合様式は問わず、ポリエチレングリコール、デキストラン、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）、ポリグルタミン酸のいずれにおいても該高分子の修飾を施すことにより、Ｆａｂ’の非特異抑制効果が回復した。この事実より、Ｆａｂ’が非特異抑制効果を消失する原因は後者の仮説（２）が主因であることが明らかとなった。特にポリエチレングリコールを結合させたＦａｂ’は、ＩｇＧやＦ（ａｂ’）２に比し、１／５ないし１／１０程度少量の添加で非特異抑制効果を示すことがわかった。また、免疫比ろう反応を生じにくい性質を示すことが明らかとなった。 従来より、タンパク質をポリエチレングリコールで修飾することが行われてきた。その殆どがタンパク質の安定性を向上させることを目的とするものである。タンパク質を治療薬としてヒトやその他動物に投与する場合に、体内のプロテアーゼの影響の回避する目的や、血中半減期を伸ばすことを目的としてポリマー修飾が実施される場合が多い。しかし、本発明でのポリマー修飾の目的は、抗体断片を巨大化することにあり、安定性向上を目的とした従来のポリマー修飾物とは、目的を異にする点が特徴である。 タンパク質をポリマーにより化学修飾する方法は公知技術である。ＲｏｂｅｒｔｓＭ．Ｊ．等の総説（Advanced Drug Delivery Reviews 2002, 54, 459-476）やＦｒａｎｃｅｓｃｏ Ｍ．等の総説（Biomaterials 2001, 22, 405-417）にその主要な方法が記載されている。例えば、タンパク質を構成するアミノ酸の側鎖のアミノ基、システイン残基のチオール基、カルボキシル基末端のカルボキシル基、またはアミノ基末端のアミノ基、セリン残基又はスレオニン残基等のヒドロキシル基を標的として、ポリマーを結合する方法が挙げられている。また、抗体あるいは抗体断片へポリマーを結合させる方法も公知技術である。特に抗体を化学修飾する場合には、抗体活性、すなわち、抗原に結合する能力を消失させない方法で、化学修飾体を調製することが有用と考えられている。ＡｎｄｒｅｗＰ．等の総説（Advanced Drug Delivery Reviews, 2002, 54, 531-545）に記載されているように、アミノ基やカルボキシル基は抗原認識部位にも存在するため、それらの官能基を標的としてポリマーを結合させた場合、抗原の認識部位がポリマーによりマスクされ、結果として化学修飾により抗体活性を低減するケースが多い。こうしたポリマー修飾による不利益を回避する目的で、例えばＦａｂ’のヒンジ部のチオール基、または還元したＩｇＧのチオール基を標的としてポリマーを結合させる方法がある。実際、ＳｌｉｎｋｉｎＭ．Ａ．等の文献（Bioconjug Chem. 1992, 3(6), 477-483）では、抗体断片のＦａｂ’のチオール基へポリマーを結合させた実施例が報告がされている。また、ＤｅｌｇａｄｏＣ．等の文献（Br J Cancer. 1996, 73(2), 175-182）においては、Ｆａｂ’にポリエチレングリコールを化学修飾した、抗腫瘍剤の実施例が報告されている。更に米国特許５，５４１，２９７号明細書においては、Ｆａｂ’のチオール基を介して薬剤およびポリマーを結合させた抗腫瘍剤が開示されている。 診断や治療は、体内へ投与する場合（イン・ビボ）と試験管内等の体外で行われる場合（イン・ビトロ）に、一般に分類できる。ポリマー修飾化抗体の用途は、イン・ビボの治療や診断で利用するケースが殆どである。例えば、抗体に薬物またはアイソトープを結合させ、腫瘍等の病変の治療剤あるいは検出剤として体内へ投与する際、ポリマー修飾が施される。その一方でイン・ビトロ診断では、ポリマー修飾化抗体の利用用途が見出されず、利用されてこなかった。イン・ビボと異なりイン・ビトロでは体内へ投与されない。従って、利用を検討する場合、安定性の向上以外で著しい利点が必要であった。従って、本発明は、「非特異反応抑制剤」としての有用性を新たに見出すことで、イン・ビトロの診断での利用用途を新たに提供するものである。 すなわち、本発明は、「非特異反応抑制剤」としての新たな用途を提供するものであり、かつ従来の非特異反応抑制技術より優れた効果を示すものである。 本発明者は、非特異反応抑制剤について鋭意研究した結果、非特異反応物質に対する抗体又はその断片にポリマーを化学結合させることで、免疫比ろう反応、保存における持続性の問題を解消し、かつ少量で非特異抑制効果を示すことを見出した。 本発明は、非特異反応因子に特異的に結合する抗体又はその断片と高分子化合物との複合体を含む、免疫学的測定用の非特異反応抑制剤に関する。 本発明の非特異反応抑制剤の好ましい態様によれば、前記高分子化合物が、多糖類、タンパク質、及び有機高分子重合体からなる群から選んだ化合物であり、ポリエチレングリコールが特に好ましい。 また、本発明の非特異反応抑制剤の別の好ましい態様によれば、前記高分子化合物の分子量が２００Ｄａ〜１０００ｋＤａである。 本発明の非特異反応抑制剤の更に別の好ましい態様によれば、抗体断片が、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆａｂ’、Ｆａｂ、Ｆｄ、Ｌ鎖、Ｈ鎖、又は還元型ＩｇＧ（ｒＩｇＧ）である。 本発明の非特異反応抑制剤の更に別の好ましい態様によれば、抗体又はその断片と高分子化合物との結合が、チオール基、アミノ基、ヒドロキシル基、若しくはカルボキシル基を利用する化学修飾、又はビオチン−アビジン結合によるものである。 更に、本発明は、非特異反応因子に特異的に結合する抗体又はその断片と高分子化合物との複合体を用いることを特徴とする、免疫学的測定方法に関する。 本発明の免疫学的測定方法の好ましい態様によれば、免疫学的測定方法が、ラテックス凝集光学的測定法、エンザイムイムノアッセイ、免疫比ろう法、酵素免疫測定法、蛍光免疫測定法、又は放射免疫測定法である。 本発明によれば、抗非特異反応因子抗体断片又はその断片にポリマーを結合させると、非特異抑制効果が著しく増強され、従来の修飾を施さない抗体に比し、５分の１ないし１０分の１程度の少ない添加量で抑制が可能となる。同時に、本発明によれば、従来抗体の添加で問題であった免疫比ろう反応の発生の問題や持続性の問題も解消する。実施例１で調製したＦａｂ’Ｍａｌ及びチオール基封鎖Ｆａｂ’のＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）の結果を示す、図面である。本発明の非特異反応抑制剤である、２０ｋＤａのポリエチレングリコールで修飾したＦ（ａｂ’）２Ｓｕｃ、Ｆａｂ’Ｓｕｃ、及びＦａｂ’Ｍａｌの非特異反応抑制効果（被検試料＝試料Ａ）を、未修飾のＦ（ａｂ’）２と比較して示すグラフである。本発明の非特異反応抑制剤である、２０ｋＤａのポリエチレングリコールで修飾したＦ（ａｂ’）２Ｓｕｃ、Ｆａｂ’Ｓｕｃ、及びＦａｂ’Ｍａｌの非特異反応抑制効果（被検試料＝試料Ｂ）を、未修飾のＦ（ａｂ’）２と比較して示すグラフである。本発明の非特異反応抑制剤である、２０ｋＤａのポリエチレングリコールで修飾したＦａｂ’Ｍａｌの非特異反応抑制効果を、未修飾のＩｇＧ及びＦ（ａｂ’）２と比較して示すグラフである。本発明の非特異反応抑制剤である、２０ｋＤａのポリエチレングリコールで修飾したＦａｂ’Ｍａｌの免疫比ろう反応を、吸光度の変化により検出し、未修飾のＩｇＧと比較して示すグラフである。本発明の非特異反応抑制剤である、２０ｋＤａのポリエチレングリコールで修飾したＦａｂ’Ｍａｌの保存安定性を、未修飾のＦ（ａｂ’）２と比較して示すグラフである。実施例６で調製したＦａｂ’ＢＳＡのＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）の結果を示す、図面である。 本発明の非特異反応抑制剤は、非特異反応因子に特異的に結合する抗体（抗非特異反応因子抗体）又はその断片と高分子化合物との複合体（以下、高分子化抗体と称することがある）を含む。 本明細書における「非特異反応因子」とは、抗原抗体反応を利用する免疫学的測定法において非特異的な反応を惹起する物質である。具体的な因子としては、ヒト体液を試料とする場合、ヒトＩｇＭ、ヒトＩｇＧ、ヒトＩｇＡ、ヒトＩｇＥ、ヒトＩｇＤおよび当該抗体に結合する因子、例えば、補体、リウマチ因子、Ｆｃ受容体等が挙げられ、ヒト以外の動物の体液を試料とする場合は、当該動物のＩｇＭ、ＩｇＧ、ＩｇＡ、ＩｇＥ、および当該抗体に結合する因子等が挙げられる。非特異反応因子に対する抗体は、例えば、ＩｇＭ型の非特異反応因子の場合には、抗ヒトＩｇＭ抗体である。またＩｇＡ型の非特異反応因子の場合は、抗ヒトＩｇＡ抗体である。本発明の非特異反応抑制剤を免疫測定試薬へ添加する場合であって、複数の非特異反応因子が非特異反応を起こすと想定する場合、例えば、ＩｇＭ、ＩｇＧ、ＩｇＡが非特異反応因子であると想定する場合は、抗ＩｇＭ抗体、抗ＩｇＧ抗体、抗ＩｇＡ抗体から調製した本発明の非特異反応抑制剤を添加することが望ましい。従って、１種類のみの非特異反応抑制剤を添加するように限定はしない。 上記免疫学的測定法としては、例えば、ラテックス凝集光学的測定法、エンザイムイムノアッセイ、免疫比ろう法、酵素免疫測定法、蛍光免疫測定法、放射免疫測定法等が挙げられる。何れも抗原抗体反応を利用するが、標的抗原を検出する抗体には、ポリクローナル抗体とモノクローナル抗体がある。 非特異反応因子に特異的に結合する抗体は、非特異反応因子を動物に免疫して得られる抗血清および血漿、正常動物血清、非特異反応因子を認識するモノクローナル抗体、非特異反応因子を認識する遺伝子工学的に作製された抗体（キメラ抗体を含む）等を、一般的に用いられる方法で精製することにより調製することができる。抗体には、ポリクローナル抗体と、モノクローナル抗体がある。抗体のクラスは、各動物種ごとで異なるが、ＩｇＧ、ＩｇＭ、ＩｇＡ等がある。上記動物としては、例えばウサギ、ヤギ、ウシ、マウス、ラット、ブタ、ニワトリ等が挙げられる。上記精製方法としては、例えば、塩析方法、電気泳動法、ゲルろ過法、疎水性クロマトグラフィー法、アフィニティークロマトグラフィー法等が挙げられる。 抗体断片は、上記抗体を、例えば、酵素、還元剤、または酵素と還元剤を組み合わせて反応させて得られる抗体の一部分であって、非特異抑制因子に結合することができる限り、特に限定されるものではない。抗体断片の作製は、酵素（例えば、パパイン、ペプシン、トリプシン等）による消化、あるいは、還元剤によるジスルフィド結合の切断、あるいは、これらを組み合わせた公知の方法で行うことができる。例えば、抗体（完全抗体）をパパインで消化すると、ＦａｂとＦｃ断片に切断することができる。ペプシンで消化すると、Ｆ（ａｂ’）２が得られ、更に、還元剤（例えば、ジチオスレイトール、２−メルカプトエタノール、ＴＣＥＰ・ＨＣｌ［Tris(2-carboxyethyl)phosphine hydrochloride］、２−メルカプトエチルアミン等）で還元すればＦａｂ’断片が得られる。次いで、ＳＨ試薬（例えば、ヨードアセトアミド）で処理すれば、Ｌ鎖とＦｄに切断できる。抗体（完全抗体）を還元剤（例えば、ジチオスレイトール、２−メルカプトエタノール、ＴＣＥＰ・ＨＣｌ［Tris(2-carboxyethyl)phosphine hydrochloride］、２−メルカプトエチルアミン等）で還元し、次いで、ＳＨ試薬（例えば、ヨードアセトアミド）で処理すればＬ鎖、Ｈ鎖、あるいはＨ鎖間のみが切断されたｒＩｇＧを調製することができる。 本発明で使用する抗体断片は、非特異抑制因子に結合することができればよく、例えば、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆａｂ’、Ｆａｂ、Ｆｄ、Ｌ鎖、Ｈ鎖、ｒＩｇＧは抗原結合能を保有する抗体断片である。実施例で具体的に記載したＦ（ａｂ’）２、Ｆａｂ’以外の抗体断片である、例えば、Ｆａｂ、Ｆｄ、Ｌ鎖、Ｈ鎖、ｒＩｇＧであっても、例えば、保有するチオール基、アミノ基、カルボキシル基を標的としてポリマーを結合させたものは、本発明の非特異反応抑制剤の有効成分として使用することができる。なお、本発明においてはＦａｂ’にポリマーを修飾させたものを非特異反応抑制剤の有効成分として用いるのが好ましい。 本発明の非特異反応抑制剤の有効成分として用いる高分子化抗体（すなわち、抗非特異反応因子抗体又はその断片と高分子化合物との複合体）としては、例えば、抗非特異反応因子抗体又はその断片を高分子化合物で化学修飾した化学修飾化抗体、あるいは、ビオチン−アビジン結合で結合された、抗非特異反応因子抗体又はその断片と高分子化合物との複合体を挙げることができる。 上記化学修飾では、例えば、チオール基、アミノ基、ヒドロキシル基、あるいはカルボキシル基を標的として、「反応性誘導体」を介して結合させることができる。 チオール基を標的とする修飾で使用される「反応性誘導体」とは、例えば、マレイミド類やビニルスルホン類などのチオール基選択的な反応基を含む。また、ポリマーに直接反応性誘導体が結合したものを利用してもよいし、反応性誘導体を含む架橋剤を利用してもよい。 アミノ基を標的とする修飾で使用される「反応性誘導体」とは、例えば、Ｎ−ヒドロキシスクシニミド（ＮＨＳ）エステルやＮ−ヒドロキシスルフォスクシミド（Ｓｕｌｆｏ−ＮＨＳ）エステル等を含む。また、アルデヒド基を含有する化合物（例えば、グルタルアルデヒド）や、ポリマーであって予めアルデヒド基を含有するポリマー等がある。 カルボキシル基を標的とする修飾では、例えば、カルボジイミド（1-Ethyl-3-[3-dimethylaminopropyl]carbodiimidehydrochloride）を触媒としてアミノ基と反応させる方法で得られる複合体を含む。 ヒドロキシル基を標的とする修飾では、例えば、イソシアン酸誘導体を含有する化合物を用いて調製することができる。 なお、反応性誘導体が導入されたポリマーは、市販品（例えば、日油株式会社）として取得してもよいし、通常の化学的手法を用いて調製してもよい。 また、ビオチンとアビジンの様に、抗体とポリマーの結合様式が共有結合による結合ではないが、高い親和性を有する結合様式を利用する方法も本発明に含む。 本発明で用いることのできる高分子化合物としては、例えば、多糖類、タンパク質、有機高分子重合体を挙げることができる。 上記多糖類には、例えば、デキストラン、デキストリン、アガロース、カルボキシメチル（ＣＭ）−セルロース、ヘパリン、可溶性澱粉等を含む。多糖類は直鎖であっても分技鎖を有するものであっても構わない。多糖類を用いてタンパク質に修飾するには、従来から知られている過ヨウ素酸酸化法、臭化シアン法、カルボジイミド法、塩化シアヌル法、エピクロルヒドリン法、ＳＰＤＰ（N-Succinimidyle 3-[2-pyridyldithio]propionate）試薬法、活性エステル法などを使用することができる。なお、反応性誘導体が導入された多糖類は市販品として取得してもよいし、通常の化学的手法を用いて調製してもよい。 上記タンパク質は、複数のアミノ酸がペプチド結合で結合した複合体であって、動物から精製したものであってもよいし、遺伝子工学で人工的に調製されたものであってもよいし、合成ペプチドのように化学合成により調製されたものでもよい。タンパク質には、例えば、カゼイン、ミルクカゼイン、ゼラチン、リコンビナントのアルブミンなどが含まれる。ポリアミノ酸としては、アルギニン、リジン、グルタミン酸などのホモポリマー、リジンとグリシン、リジンとセリンなどのランダムポリマーを含む。タンパク質の結合方法の例として、タンパク質のアミノ基、カルボキシル基、スルフィド基等を標的として架橋剤を結合させ、当該架橋剤を介して抗体へ結合させる方法がある。また、カルボジイミドを触媒として用い、抗体とタンパク質を結合させる方法もある。本発明では、タンパク質のアミノ基にＥＭＣＳ［N-(6-Maleimidocaproyloxy)succinimide；dojin社］やＳＭＣＣ［succinimdyl 4-(N-maleimidomethyl)cyclohexane carbonate；dojin社］などの架橋剤を反応させ、抗体断片のスルフィド基へ当該架橋剤を結合させる方法が好ましい。なお、本発明品を調製する際に用いる、反応性誘導体が導入されたタンパク質は市販品として取得してもよいし、通常の化学的手法を用いて調製してもよい。 上記有機高分子重合体の例としては、例えば、ポリエチレングリコール、ポリビニルアルコール、ポリアクリルアルコール、ポリエチレンイミン、ポリメタクリル酸メチル、ポリアクリル酸、ポリアリルアミン、ポリサッカライドを挙げることができる。有機高分子重合体は直鎖であっても分技鎖を有してもよいし、複数種類のランダム共重合体であってもよい。また、デンドリマーのような球状構造の合成高分子でもよい。高分子は合成品であっても天然由来であってもよい。 ポリエチレングリコールは、エチレングリコールが重合した構造を基本とする高分子化合物である。ポリエチレングリコールの水酸基に他の官能基を導入し、その官能基を利用して抗体へ結合させることができる。ポリエチレングリコールと抗体を結合させる際に行う活性化には、例えば、塩化シアヌル、カルボジイミダゾール、Ｎ−ヒドロキシコハク酸イミド、カルボジイミドなどを用いる方法が挙げられる。官能基の導入されたポリエチレングリコールとして、市販品を利用することができる。ポリエチレングリコールにマレイミド基、スクシミド基、アミノ基、スルフィド基等を導入された市販品を利用すると、効率よく調製することができる。マレイミド基、スクシミド基が導入されたポリエチレングリコールは抗体との結合効率もよく、より好ましい。なお、ポリエチレングリコールは直鎖であっても分技鎖を含むものであってもよいし、ポリエチレングリコールの一部が他の化学構造で置換されたものやポリエチレングリコールに他のポリマーや化合物が修飾されたものも含む。 ポリエチレングリコール以外の有機高分子重合体による化学修飾の方法として、上記ポリエチレングリコールの化学修飾の方法と同様に、有機高分子重合体に官能基を導入して抗体へ結合させる方法がある。なお、既に反応性誘導体を含有する有機高分子重合体であっては、調製段階で有機高分子重合体への新たな官能基の導入を要しない場合もある。本発明においては、マレイミド基、スクシミド基、アミノ基、カルボキシル基を導入したポリマーを用いることが好ましい。なお、反応性誘導体が導入された有機高分子重合体は、市販品として取得してもよいし、通常の化学的手法を用いて調製してもよい。 上記の高分子化合物の分子サイズは、特に限定されるものではないが、一般には平均分子量が約２００Ｄａ〜１０００ｋＤａ、例えば、１ｋＤａ〜１０００ｋＤａ、好ましくは１０ｋＤａ〜１００ｋＤａである。ポリエチレングリコールの場合は、好ましくは２０ｋＤａ〜２００ｋＤａである。用いるポリマーの種類に応じて、親水性、立体構造、非特異抑制効果などを考慮して、分子サイズを適宜選択することができる。 本発明の非特異反応抑制剤は、その有効成分である高分子化抗体（例えば、ポリマー修飾された抗非特異反応因子抗体又はその断片）を免疫測定系に添加することにより使用することができる。具体的には、修飾した非特異反応因子に対する抗体断片の溶液を用意し、測定しようとする抗原に対する抗体を抗原と反応させる前に、予め試料に前記の溶液を添加して、非特異反応因子とそれに対する抗体を反応させることにより、非特異反応因子による非特異反応を抑制してもよいし、測定しようとする抗原に対する抗体の溶液中に修飾した非特異反応因子に対する抗体断片を含ませ、この溶液を試料に添加して、非特異反応因子とそれに対する抗体を反応させることにより、非特異反応因子による非特異反応を抑制してもよい。 免疫測定試薬の測定項目としては、例えば、エラスターゼ、シスタチンＣ、ｓＥｓ（可溶性Ｅセレクチン）、ＳＦ（可溶性フィブリン）、ＰＣ（プロテインＣ）、ＰＰＩ（プラスミンプラスミンインヒビター）、ｃＴｎ（トロンボモジュリン）、ミオグロビン、ＣＫ−ＭＢ、ＢＮＰ（Ｂ型ナトリウム利尿ペプチド）、ＡＦＰ（α−フェトプロテイン）、β２ｍ（β−２−ミクログロブリン）、ＣＥＡ（癌胎児性抗原）、フェリチン、ＣＡ１９−９（糖質抗原１９−９）、ＰＡＰ（前立腺酸性フォスファターゼ）、ＰＳＡ（前立腺特異性抗原）、ＣＲＰ（Ｃ−反応性タンパク質）、Ｍｂ（ミオグロビン）、ＲＦ（リウマチ因子）、ＡＳＯ（抗ストレプトリジン−Ｏ）、ＦＤＰ（フィブリン分解生成物）、ＡＴIII（抗トロンビンIII）、プラスミノーゲン、α２ＰＩ（α−２−プラスミンインヒビター）、Ｄ−ダイマー（フィブリン分解生成物Ｄ−フラグメント二量体）、ＩｇＧ（免疫グロブリンＧ）、ＩｇＡ（免疫グロブリンＡ）、ＩｇＭ（免疫グロブリンＭ）、ＩｇＥ（免疫グロブリンＥ）、Ｃ３（補体第３成分）、Ｃ４（補体第４成分）、尿アルブミン、ｈＣＧ（ヒト絨毛性性腺刺激ホルモン）、ｈＰＬ（ヒト胎盤性ラクトゲン）、インスリン、ＨＢｓ抗原（Ｂ型肝炎表面抗原）、ＨＢｓ抗体（抗Ｂ型肝炎表面抗原抗体）、ＨＢｃ抗体（抗Ｂ型肝炎コア抗原抗体）、ＨＣＶ抗体（抗Ｃ型肝炎ウィルス抗体）、トレポネーマ（抗梅毒トレポネーマ抗体）、ＴＳＨ（甲状腺刺激ホルモン）、ＬＨ（黄体形成ホルモン）、ＦＳＨ（卵胞刺激ホルモン）、ジゴキシン、ジギトキシン、キニジン、プロカインアミド、ＮＡＰＡ（Ｎ−アセチルプロカインアミド）、テオフィリン、フェニトイン、フェノバルビタール、カルバマゼピン、バルプロン酸、エトスクシイミド、ゲンタマイシン、トブラマイシン、アミカシン、ジンコマイシン、シクロスポリンＡ、Ｂ１２（ビタミンＢ１２）、葉酸、Ｔ３（トリヨードチロニン）、Ｔ４（チロキシン）、エストロゲンが含まれる。 以下、実施例によって本発明を具体的に説明するが、これらは本発明の範囲を限定するものではない。《実施例１》［目的］ 抗非特異反応因子のＩｇＧやＦ（ａｂ’）２は良好な非特異抑制効果を有するが、Ｆａｂ’においてはその効果が弱い。その原因として、（１）非特異抑制効果を示すには１分子中に複数の抗原認識部位が必要である可能性、（２）非特異反応抑制剤の分子サイズが抑制効果に影響する可能性が考えられた。本実施例は、これらの仮説を検証する目的で実施した。Ｆａｂ’のように抗原認識部位が１つであっても、非特異抑制効果を示せば、（１）の可能性を否定することができる。また、後者については、様々な大きさの高分子の修飾を施し、非特異抑制効果を検討すれば検証が可能である。［方法］ ヒトＩｇＭに結合するＩｇＧの抗体の断片（Ｆａｂ’）を用い、ポリエチレングリコール修飾による非特異抑制効果を検討する目的で、ポリエチレングリコール修飾Ｆａｂ’（以下、Ｆａｂ’Ｍａｌと称する）の調製を実施した。ポリエチレングリコールの修飾様式は、１分子のＦａｂ’に、ヒンジ部のチオール基を介して１分子のポリエチレングリコールを結合させることとした。これは、ポリエチレングリコールがＦａｂ’の抗原認識部に結合する状況を回避するためである。Ｆａｂ’の動物種はウサギを選択し、片側の末端のみにマレイミド基を有するポリエチレングリコールを修飾剤として用いることとした。更に、修飾するポリエチレングリコールの長さ（分子量）の違いによる非特異抑制効果の違いを調べる目的で、２ｋＤａ、５ｋＤａ、１２ｋＤａ、２０ｋＤａ、３０ｋＤａの各長さのポリエチレングリコールを修飾剤として用い、各種分子量のＦａｂ’Ｍａｌを調製した。陰性コントロールとしては、Ｆａｂ’からＦ（ａｂ’）２への可逆反応を阻止する目的で、チオール基をＮ−エチルマレイミドにて封鎖したＦａｂ’（以下、チオール基封鎖Ｆａｂ’と称する）を利用することとした。チオール基封鎖Ｆａｂ’、２ｋＤａのＦａｂ’Ｍａｌ、５ｋＤａのＦａｂ’Ｍａｌ、１２ｋＤａのＦａｂ’Ｍａｌ、２０ｋＤａのＦａｂ’Ｍａｌ、３０ｋＤａのＦａｂ’Ｍａｌの各々についてその非特異抑制効果を調べることとした。［Ｆａｂ’Ｍａｌの調製］ ウサギ抗ヒトＩｇＭポリクローナルＩｇＧ（自家製）をペプシンにて消化し、Ｆ（ａｂ’）２を調製した。Ｆ（ａｂ’）２は、１５０ｍｍｏｌ／Ｌ ＮａＣｌ含有２００ｍｍｏｌ／Ｌトリス（ヒトロキシメチル）アミノメタン緩衝液（ｐＨ８．２）にて５ｍｇ／ｍＬに調製した。Ｆ（ａｂ’）２は、１０ｍｍｏｌ／Ｌ ２−メルカプトエチルアミンにて３７℃で３０分間還元し、５ｍｍｏｌ／Ｌ ＥＤＴＡ含有５０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸緩衝液（ｐＨ６．０）をランニングバッファーとしてゲルろ過し、Ｆａｂ’分画を回収した。５ｍｇ／ｍＬ Ｆａｂ’溶液に、マレイミド基が結合した３０ｋＤａのポリエチレングリコール（日油社製）を加え、４℃で４時間攪拌しながら反応させた。反応液はゲルろ過し、Ｆａｂ’Ｍａｌの分画を回収し、５ｍｇ／ｍＬ程度まで濃縮した。同方法により、２ｋＤａ、５ｋＤａ、１２ｋＤａ、２０ｋＤａの各分子量のＦａｂ’Ｍａｌを調製した。［チオール基封鎖のＦａｂ’の調製］ ウサギ抗ヒトＩｇＭポリクローナルＩｇＧ（自家製）をペプシンにて消化し、Ｆ（ａｂ’）２を調製した。Ｆ（ａｂ’）２は、１５０ｍｍｏｌ／Ｌ ＮａＣｌ含有２００ｍｍｏｌ／Ｌトリス（ヒトロキシメチル）アミノメタン緩衝液（ｐＨ８．２）にて５ｍｇ／ｍＬに調製した。Ｆ（ａｂ’）２は、１０ｍｍｏｌ／Ｌ ２−メルカプトエチルアミンにて３７℃で３０分間還元し、５ｍｍｏｌ／Ｌ ＥＤＴＡ含有５０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸緩衝液（ｐＨ６．０）をランニングバッファーとしてゲルろ過し、Ｆａｂ’分画を回収した。５ｍｇ／ｍＬ Ｆａｂ’溶液に、５ｍｍｏｌ／Ｌ Ｎ−エチルマレイミド（シグマアルドリッチ社製）を４℃で４時間攪拌しながら反応させた。反応液はゲルろ過し、チオール基封鎖Ｆａｂ’の分画を回収し、５ｍｇ／ｍＬ程度まで濃縮した。 得られたＦａｂ’Ｍａｌ及びチオール基封鎖Ｆａｂ’のＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）の結果を図１に示す。図１において、左のレーンより、マーカー、チオール基封鎖Ｆａｂ’、３０ｋＤａ Ｆａｂ’Ｍａｌ、２０ｋＤａ Ｆａｂ’Ｍａｌ、１２ｋＤａ Ｆａｂ’Ｍａｌ、５ｋＤａ Ｆａｂ’Ｍａｌ、２ｋＤａ Ｆａｂ’Ｍａｌ、チオール基封鎖Ｆａｂ’、マーカーを示す。［非特異反応抑制剤の効果を評価するアッセイ条件］ Ｆａｂ’Ｍａｌ及びチオール基封鎖Ｆａｂ’による非特異抑制効果をラテックス凝集光学的測定法により検討した。利用した測定抗原はＤダイマーであり、Ｄダイマー測定試薬［エルピアエースＤダイマーII；三菱化学メディエンス］において上記記載の非特異反応を呈するヒト血漿であって、非特異反応物質がＩｇＭであることを特徴とする２種類の試料（試料Ａ及びＢ）を披検試料として用いた。測定は自動分析装置のＨＩＴＡＣＨＩ７１７０（日立ハイテクノロジー社製）によるオートメーション操作で実施した。ＨＩＴＡＣＨＩ７１７０による測定においては、主に２つの操作を実施させた。第一操作では、測定対象の試料を第一試薬（以下、Ｒ１と称する）により希釈させた。第二操作では、Ｄダイマーに反応する抗体が固相化されたラテックス粒子を含有することを特徴とする第二試薬（以下、Ｒ２と称する）を前記反応液に添加させ、ラテックスの凝集反応を生じさせた。当該凝集反応を光学的にモニターすることで、披検体中のＤダイマーあるいは非特異反応因子を定量することとした。本実施例においては、Ｒ１にＦａｂ’Ｍａｌ又はチオール基封鎖Ｆａｂ’を添加し、第一操作中に非特異反応物質を吸収することとした。Ｒ１にはＦａｂ’Ｍａｌ又はチオール基封鎖Ｆａｂ’が１００ｍｇ／Ｌとなるように添加した。なお、本実施例にて用いたＦａｂ’Ｍａｌ及びチオール基封鎖Ｆａｂ’は、アフィニティークロマトグラフィーにより、フィブリン分解産物（Ｄダイマーを含む）に反応する成分を除去する操作を施した。測定試料、Ｒ１、Ｒ２の混合比は、７μＬ：１２５μＬ：１２５μＬとした。ラテックスの凝集は８００ｎｍの波長で検出した。測定値は濃度既知のＤダイマーを測定して得られた検量線から、吸光度の比較により測定値を算出した。［Ｄダイマー測定用Ｒ２］ 三菱化学メディエンス株式会社が販売する体外診断用試薬「エルピアエースＤダイマーII」の構成試薬のラテックス試薬をＲ２試薬として用いた。当該製品は、Ｄダイマーに対し特異的な結合能を有するモノクローナル抗体を化学結合により結合された不溶性担体を構成成分とする試薬である。［試験結果］ 結果を表１に示す。表１に示すように、何れの分子量のＦａｂＭａｌ’でも非特異反応の抑制効果を示した。また、Ｆａｂ’Ｍａｌによる効果は分子量の大きさに依存する結果を示し、ポリエチレングリコールの修飾を施す場合、高分子のポリエチレングリコールを修飾させるほど非特異抑制効果が高いことが明らかとなった。《実施例２》［目的］ 実施例１の結果から、Ｆａｂ’のように抗原認識部位が１つであっても、ポリエチレングリコールによる修飾を施すと非特異抑制効果を示すことが明らかとなった。また、修飾する分子量が大きい程、該効果は増強した。そこで本実施例においては、高分子を抗体断片に修飾すると、修飾しない場合に比し、非特異抑制効果が増すかを検討する目的で実施した。［方法］ 非特異反応因子に反応するＦ（ａｂ’）２を用い、スクシミド基を片側末端に含有する２０ｋＤａのポリエチレングリコールで化学修飾した、ポリエチレングリコール修飾Ｆ（ａｂ’）２［以下、Ｆ（ａｂ’）２Ｓｕｃと称する］を調製した。同様にチオール基封鎖Ｆａｂ’に、同ポリエチレングリコールで化学修飾した複合物（以下、Ｆａｂ’Ｓｕｃと称する）を調製した。抑制効果の比較は、本発明品であるＦ（ａｂ’）２Ｓｕｃ、Ｆａｂ’Ｓｕｃ、及びＦａｂ’Ｍａｌと、Ｆ（ａｂ’）２とを比較して実施した。なお、本実施例にて用いた抗体断片あるいは化学修飾を施した抗体断片は、同一のロットの抗体より調製した。［Ｆ（ａｂ’）２Ｓｕｃ及びＦａｂ’Ｓｕｃの調製］ ウサギ抗ヒトＩｇＭポリクローナルＩｇＧ（自家製）をペプシンにて消化し、Ｆ（ａｂ’）２を調製した。また、実施例１記載の方法により、チオール基封鎖Ｆａｂ’を調製した。Ｆ（ａｂ’）２及びチオール基封鎖Ｆａｂ’は、５ｍｍｏｌ／Ｌ ＥＤＴＡ含有５０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸緩衝液（ｐＨ６．０）を外液として透析を実施した。５ｍｇ／ｍＬ Ｆ（ａｂ’）２又はチオール基封鎖Ｆａｂ’溶液に、スクシミド基が結合した２０ｋＤａのポリエチレングリコール（日油社製）を加え、４℃にて１２時間攪拌しながら反応させた。反応液はゲルろ過し、目的物であるＦ（ａｂ’）２Ｓｕｃ及びＦａｂ’Ｓｕｃの分画を回収し、５ｍｇ／ｍＬ程度まで濃縮した。[非特異反応抑制剤の効果を評価するアッセイ条件] 実施例１記載のアッセイ条件と同様の方法にて、ポリエチレングリコール修飾を施した抗体断片と、施さないＦ（ａｂ’）２を比較することで非特異抑制効果を検討した。但し、本実施例においては、非特異反応抑制剤の添加濃度が０ｍｇ／Ｌ、２０ｍｇ／Ｌ、５０ｍｇ／Ｌ、１００ｍｇ／ＬのＲ１において効果の評価をした。また、被検体として、実施例１で用いたのと同じ試料Ａ及びＢを使用した。［試験結果］ 結果を図２（試料Ａ）及び図３（試料Ｂ）に示す。図２に示すように、修飾を施さないＦ（ａｂ’）２に比べ、２０ｋＤａのポリエチレングリコールを施したＦ（ａｂ’）２Ｓｕｃ、Ｆａｂ’Ｓｕｃ、及びＦａｂ’Ｍａｌにおいては、著しく非特異抑制効果が増すことが明らかとなった。《実施例３》［目的］ 実施例２の結果が示すように、抗体断片をポリエチレングリコールにて修飾を施した場合、施さない場合に比べ顕著に非特異抑制効果が増強することが明らかとなった。そこで本実施例は、従来技術であるＩｇＧの添加による効果と比較し、本発明の効果を明確にすることを目的とする。［方法］ ２０ｋＤａのＦａｂ’Ｍａｌ、ＩｇＧ、Ｆ（ａｂ’）２とで抑制効果の比較を実施した。上記３種類の物質は、同一のロットのＩｇＧより調製した。［非特異反応抑制剤の効果を評価するアッセイ条件］ 実施例１記載のアッセイ条件と同様の方法にて、非特異反応抑制効果の検討を実施した。但し、実施例３においてはＩｇＧ、Ｆ（ａｂ’）２、２０ｋＤａのＦａｂ’Ｍａｌをそれぞれ５０ｍｇ／Ｌの濃度でＲ１へ添加し、検討に用いることとした。［試験結果］ 結果を図４に示す。図４に示すように、高分子を修飾したＦａｂ’Ｍａｌは、ＩｇＧやＦ（ａｂ’）２に比べ、非特異抑制効果は著しく高いことが判明した。このことより、本発明品は少なくとも従来技術の、修飾されていないＩｇＧよりも、非特異抑制効果の能力が高いことが示された。《実施例４》［目的］ 本発明の非特異反応抑制剤であるＦａｂ’Ｍａｌは、ＩｇＧやＦ（ａｂ’）２より非特異抑制効果が高いことが明らかとなった。次に従来技術で問題となった、免疫比ろう反応について検討することを目的として実施した。［方法］ 免疫比ろう反応は、抗原とその抗体が高濃度で共存した場合に発生し易い。本実施例では、抗原としてヒトＩｇＭ（自家製）を用い、抗体に相当するものとして２０ｋＤａのＦａｂ’Ｍａｌを用いることとした。ＩｇＧまたはＦａｂ’Ｍａｌを、Ｄダイマー測定試薬のＲ１へ２００ｍｇ／Ｌの濃度で添加した。一方、測定試料は、図５に示すように、ヒトＩｇＭを０．９９ｍｇ／ｍＬ〜５．９ｍｇ／ｍＬの範囲で含む試料を用いた。一般に健常人のＩｇＭ濃度は１．００ｍｇ／ｍＬ〜１．５ｍｇ／ｍＬとされている。本実施例では実際にヒト血漿あるいは血清を測定する場合に想定されるＩｇＭ濃度領域を含有する。免疫比ろう反応の影響はＨＩＴＡＣＨＩ７１７０にて８００ｎｍの波長で光学的に測定した。［免疫比ろう反応を評価するアッセイ条件］ ＨＩＴＡＣＨＩ７１７０にて、試料、Ｒ１、Ｒ２をそれぞれ１０μＬ、１８０μＬ、１８０μＬの割合で反応させ、８００ｎｍの波長で検出し、吸光度の上昇を測定した。［試験結果］ 結果を図５に示す。図５には、被検体の試料とＲ１液の混和開始からＲ２液が添加される直前までの吸光度の変化を示した。本条件では、吸光度の上昇が認められた場合に免疫比ろう反応が生じていると判断できる。 なお、８００ｍｇ／Ｌの高濃度のＦａｂ’Ｍａｌにおいても吸光度の上昇は認められないことを確認した。《実施例５》［目的］ 実施例４より、Ｆａｂ’Ｍａｌは免疫比ろう反応が生じにくいことが明らかとなった。次に本発明の保存に対する持続性について検討した。 １分子のＦ（ａｂ’）２は２分子のＦａｂ’へ分解する。特にＦ（ａｂ’）２をＲ１へ添加して保存した場合、容易にＦａｂ’へ分解される為、問題となる。Ｆａｂ’は非特異抑制効果が弱く、非特異反応を起こす検体を測定した場合、経時的な値の上昇を認めるからである。実施例５においては、Ｆａｂ’Ｍａｌの保存安定性を明らかにする目的で、３７℃で保存した場合の非特異抑制効果を検討した。一般に免疫学的測定用試薬は、４℃にて保存するのが適切な保存方法である。試薬を３７℃で保存した場合、非特異抑制効果の劣化は４℃保存に比し，短時間で観察することが可能である。これは、３０℃ないしは４０℃においてはＦａｂ’への分解が加速されやすい為である。該温度域では、Ｆａｂ’化の主要な因子である、プロテアーゼ様因子ないしは酸化還元反応の影響を受けやすい為である。本実施例においては、Ｆ（ａｂ’）２の分解が特に顕著であり、実際試薬の劣化で問題となる要因となる、３７℃での保存条件を選択し、Ｆａｂ’Ｍａｌの安定性を検討した例を示す。［方法］ Ｆ（ａｂ’）２またはＦａｂ’Ｍａｌを含有するＲ１試薬を調整し、当該Ｒ１試薬を３７℃にて保存した場合の非特異反応の抑制効果を検討した。該抑制効果は前記試料Ａの測定値を測定することにより評価した。［保存安定性を評価するアッセイ条件］ ２００ｍｇ／ＬのＦ（ａｂ’）２またはＦａｂ’Ｍａｌを含有させたＲ１を調整し、３７℃で保存した場合の差を検討した。 本実施例においては、Ｒ１試薬を３７℃にて１７日間保存し、０日、５日、１０日、１７日の保存時点で試料Ａを測定した。試料Ａの測定はＨＩＴＡＣＨＩ７１７０にて、実施例１記載の条件と同様に実施した。［試験結果］ 結果を図６に示す。図６に示すように、Ｆ（ａｂ’）２はＲ１へ添加し３７℃で保存した場合には試料Ａの測定値が経時的に上昇した。一方，Ｆａｂ’Ｍａｌにあっては、１７日まで測定値の経時的な上昇は認められなかった。このことより、Ｆａｂ’ＭａｌはＦ（ａｂ’）２で問題であった、保存性については安定であることが明らかとなった。《実施例６》［目的］ Ｆａｂ’Ｍａｌ以外の実施例について検討する目的で、ＢＳＡをＦａｂ’のヒンジ部チオール基を介して結合させた複合体（以下、Ｆａｂ’ＢＳＡと称する）を調製し、非特異抑制効果を検討した。［方法］ ＢＳＡの表面アミノ基を介して、マレイミド基とスクシミド基を構造に含む架橋剤であるＥＭＣＳ（ＤＯＪＩＮ社製）を反応させた。次に、Ｆａｂ’に、ＥＭＣＳ化を施したＢＳＡを結合させた。効果の測定は実施例１に記載の方法を準用した。但し、Ｆａｂ’ＢＳＡは、０ｍｇ／Ｌ、３３ｍｇ／Ｌ、６６ｍｇ／Ｌ、１３３ｍｇ／Ｌで添加したＲ１を使用した。［Ｆａｂ’ＢＳＡの調製方法］ ＢＳＡ（ＳＩＧＭＡ社製）を５ｍｍｏｌ／Ｌ ＥＤＴＡ含有５０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸緩衝液（ｐＨ６．０）で５ｍｇ／ｍＬに調製し、これに５ｍｍｏｌ／ＬとなるようにＥＭＣＳ（Ｄｏｊｉｎ社）を添加した。３７℃で１時間反応させ、ゲルろ過によりＢＳＡ分画を回収した。ゲルろ過のランニングバッファーは、２００ｍｍｏｌ／Ｌ Ｔｒｉｓ，１５０ｍＭｍｏｌ／Ｌ ＮａＣｌ含有のトリス緩衝液（ｐＨ８．２）を用いた。抗ヒトＩｇＭ抗体からのＦａｂ’の調製は、実施例１記載の方法により実施した。ＥＭＣＳ修飾させたＢＳＡと５ｍｇ／ｍＬのＦａｂ’を混和し、４℃で１６時間攪拌しながら反応させた。反応液はゲルろ過し、目的物であるＦａｂ’ＢＳＡの分画を回収し、５ｍｇ／ｍＬ程度まで濃縮した。ゲルろ過のランニングバッファーは５ｍｍｏｌ／Ｌ ＥＤＴＡ含有５０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸緩衝液（ｐＨ６．０）により調製した。 得られたＦａｂ’ＢＳＡのＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）の結果を図７に示す。図７において、左のレーンより、Ｆａｂ’ＢＳＡ、Ｆａｂ’ＢＳＡ、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆａｂ’、マーカーの各バンドを示す。［試験の結果］ 結果を表２に示すように、本発明の実施例の１つであるＦａｂ’ＢＳＡは濃度依存的に非特異抑制効果を示した。このことにより、Ｆａｂ’はポリエチレングリコール特有の効果でなくＢＳＡを結合させた場合においても同様の効果が得られることが明らかとなった。《実施例７》［目的］ Ｆａｂ’Ｍａｌ、Ｆａｂ’ＢＳＡ以外の実施例について検討する目的で、ポリグルタミン酸をＦａｂ’のヒンジ部チオール基を介して結合させた複合体（以下、Ｆａｂ’ＰＧと称する）を調製し、非特異抑制効果を検討した。［方法］ ポリグルタミン酸のアミノ基末端のアミノ基を介して、マレイミド基とスクシミド基を構造に含む架橋剤であるＥＭＣＳ（ＤＯＪＩＮ社製）を反応させた。次に、Ｆａｂ’に、ＥＭＣＳ化を施したポリグルタミン酸を結合させた。効果の測定は、実施例１に記載の方法を準用した。但し、Ｆａｂ’ＰＧは、０ｍｇ／Ｌ、５ｍｇ／Ｌ、５０ｍｇ／Ｌ、１００ｍｇ／Ｌで添加したＲ１を使用した。［Ｆａｂ’ＰＧの調製方法］ 分子量１５ｋＤａ〜５０ｋＤａのポリグルタミン酸（ＳＩＧＭＡ社製より購入）を５ｍｇ／ｍＬで５ｍｍｏｌ／Ｌ ＥＤＴＡ含有５０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸緩衝液（ｐＨ６．０）に溶解し、これに５ｍｍｏｌ／ＬとなるようにＥＭＣＳ（Ｄｏｊｉｎ社）を添加した。３７℃にて１時間反応させ、ゲルろ過によりポリグルタミン酸の分画を回収した。ゲルろ過のランニングバッファーには２００ｍｍｏｌ／Ｌ Ｔｒｉｓ，１５０ｍｍｏｌ／Ｌ ＮａＣｌ含有のトリス緩衝液（ｐＨ８．２）を用いた。抗ヒトＩｇＭ抗体からのＦａｂ’の調製は実施例１記載の方法により実施し、濃度が５ｍｇ／ｍＬになるように、５ｍｍｏｌ／Ｌ ＥＤＴＡ含有５０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸緩衝液（ｐＨ６．０）で調製した。ＥＭＣＳ修飾させたポリグルタミン酸とＦａｂ’を混和し、４℃で１６時間攪拌しながら反応させた。反応液はゲルろ過し、目的物であるＦａｂ’ＰＧの分画を回収し、５ｍｇ／ｍＬ程度まで濃縮した。ゲルろ過のランニングバッファーは５ｍｍｏｌ／Ｌ ＥＤＴＡ含有５０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸緩衝液（ｐＨ６．０）を用いた。［試験の結果］ 結果を表３に示す。表３に示すように、本発明の実施例の１つであるＦａｂ’ＰＧは、濃度依存的に非特異抑制効果を示した。このことにより、非特異抑制効果の獲得はポリエチレングリコール、ＢＳＡに特有の効果でなくポリグルタミン酸を結合させた場合においても同様の効果が得られることが明らかとなった。《実施例８》［目的］ Ｆａｂ’Ｍａｌ、Ｆａｂ’ＢＳＡ、Ｆａｂ’ＰＧ以外の実施例について検討する目的で、多糖類であるデキストランをＦａｂ’のアミノ基を介して結合させた複合体（以下、Ｆａｂ’ＤＸとする）を調製し、非特異抑制効果を検討した。［方法］ デキストランの官能基の一部をアルデヒド基に活性化された市販品を用い、当該アルデヒド基とチオール基封鎖したＦａｂ’のアミノ基を結合させ、Ｆａｂ’ＤＸを調製した。効果の測定は実施例１に記載の方法を準用した。ただしＦａｂ’ＤＸは、０ｍｇ／Ｌ、２７ｍｇ／Ｌ、５３ｍｇ／Ｌ、８０ｍｇ／Ｌ、１０１ｍｇ／Ｌ、１３３ｍｇ／Ｌ、１９５ｍｇ／Ｌで添加したＲ１を使用した。［Ｆａｂ’ＤＸの調製方法］ 分子量４０ｋＤａの活性化デキストランのカップリングキット（ピアス社製）を購入し、推奨されたプロトコールに準じてＦａｂ’とのカップリングを実施した。チオール基封鎖のＦａｂ’は実施例１記載の方法にて調製した。１０ｍｇの活性化デキストラン（リン酸緩衝液で５ｍｇ／ｍＬ溶解）と、５ｍｇのチオール基を封鎖したＦａｂ’（リン酸緩衝液で５ｍｇ／ｍＬ溶解）と、０．４ｍＬシアノボロハイドライド溶液（Cyanoborohydride solution）とを混和した。３７℃で２４時間攪拌反応させ、Ｔｒｉｓが終濃度２００ｍｍｏｌ／Ｌとなるように、１ｍｏｌ／Ｌ Ｔｒｉｓ緩衝液（ｐＨ７．２）を添加し、３７℃で１時間反応させた。反応液は、ゲルろ過し、目的物であるＦａｂ’ＤＸの分画を回収し、５ｍｇ／ｍＬ程度まで濃縮した。ゲルろ過のランニングバッファーは５ｍｍｏｌ／Ｌ ＭＥＤＴＡ含有５０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸緩衝液（ｐＨ６．０）を用いた。［試験の結果］ 結果を表４に示す。表４に示すＤダイマーの測定値の単位はμｇ／ｍＬである。表４に示すように、本発明の実施例の１つであるＦａｂ’ＤＸは濃度依存的に非特異抑制効果を示した。このことにより、非特異抑制効果の獲得はポリエチレングリコール、ＢＳＡ、ポリエチレングリコールに特有の効果でなくデキストランを結合させた場合においても同様の効果が得られることが明らかとなった。また、結合方法においてもＦａｂ’のアミノ基を標的としてポリマーを結合させた場合であっても効果を示すことができることを確認できた。《実施例９》［目的］ 実施例１〜８では、ＩｇＭに起因する非特異反応について実施例を示した。本実施例ではＩｇＡに起因する非特異反応における本発明品の効果を検討した。非特異反応抑制剤には、ヒトＬ鎖に親和性を示す抗体より得られたＦａｂ’をポリエチレングリコールにて修飾して得られる抗体断片複合体［以下、Ｆａｂ’（Ｌ）Ｍａｌとする］を用いた。ヒト免疫グロブリンのＬ鎖は、ＩｇＧ、ＩｇＭ、ＩｇＡ、ＩｇＥ型のいずれもの構成ドメインとして共通に保持されているため、ヒトＬ鎖への結合能を示す抗体は前記ヒト免疫グロブリンの何れにも結合し得る。従って、抗ヒトＬ鎖抗体は、ＩｇＭ、ＩｇＧ、ＩｇＡ等に起因する非特異反応の何れをも阻害することが期待される。本実施例においては、抗ＩｇＭ抗体以外の抗体を使用した場合の発明の実施例を示すと共に、当該抗体断片をポリエチレングリコールにより修飾することで、当該抗体断片による阻害効果が向上することの確認を行うことを目的とした。［方法］ Ｆａｂ’（Ｌ）Ｍａｌは、抗ヒトＬ鎖抗体のＦａｂ’から、実施例１記載のＦａｂ’Ｍａｌの調製方法と同様の方法を使用して調製した。ＩｇＡ型の非特異検体におけるＦａｂ’（Ｌ）Ｍａｌの抑制効果は、Ｆａｂ’（Ｌ）Ｍａｌの調製に用いた抗体断片のＦ（ａｂ’）２による効果と比較して検討した。測定試薬はＤダイマーとし、当該試薬のＲ１へ５０ｍｇ／Ｌの濃度で抗体タンパク質を添加し、非特異抑制効果の比較をした。測定試料には、ＩｇＡに起因する非特異反応を生じる試料Ｅを用いた。［試験の結果］ 結果を表５に示す。表５に示すＤダイマーの測定値の単位はμｇ／ｍＬである。本発明の実施例の１つであるＦａｂ’（Ｌ）Ｍａｌは試料Ｅに対し、非特異抑制効果を示した。またこの抑制効果は、同タンパク質量のＦ（ａｂ’）２を添加した場合と比較すると、著しく強い効果を示すことが明らかとなった。本実施例において、抗ＩｇＭ抗体以外の抗体より得られる本発明品であっても非特異抑制効果を示すことが明らかとなった。また従来技術より強い抑制効果を示すことが確認できた。試料ＥのＤダイマーの真値は、試料を予め抗ＩｇＡ抗体と接触させ、非特異反応の原因である抗体因子を除去したうえでＤダイマー値を測定し、得られた値を示す。 本発明の非特異反応抑制剤は、免疫学的測定の用途に適用することができる。 以上、本発明を特定の態様に沿って説明したが、当業者に自明の変形や改良は本発明の範囲に含まれる。 非特異反応因子に特異的に結合する抗体又はその断片と高分子化合物との複合体を含む、免疫学的測定用の非特異反応抑制剤。 前記高分子化合物が、多糖類、タンパク質、及び有機高分子重合体からなる群から選んだ化合物である、請求項１に記載の非特異反応抑制剤。 有機高分子重合体がポリエチレングリコールである、請求項１又は２に記載の非特異反応抑制剤。 前記高分子化合物の分子量が２００Ｄａ〜１０００ｋＤａである、請求項１〜３のいずれか一項に記載の非特異反応抑制剤。 抗体断片が、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆａｂ’、Ｆａｂ、Ｆｄ、Ｌ鎖、Ｈ鎖、又はｒＩｇＧである、請求項１〜４のいずれか一項に記載の非特異反応抑制剤。 抗体又はその断片と高分子化合物との結合が、チオール基、アミノ基、ヒドロキシル基、若しくはカルボキシル基を利用する化学修飾、又はビオチン−アビジン結合によるものである、請求項１〜５のいずれか一項に記載の非特異反応抑制剤。 非特異反応因子に特異的に結合する抗体又はその断片と高分子化合物との複合体を用いることを特徴とする、免疫学的測定方法。 免疫学的測定方法が、ラテックス凝集光学的測定法、エンザイムイムノアッセイ、免疫比ろう法、酵素免疫測定法、蛍光免疫測定法、又は放射免疫測定法である、請求項７に記載の免疫学的測定方法。 非特異反応因子に特異的に結合する抗体又はその断片と高分子化合物との複合体を含む、免疫学的測定用の非特異反応抑制剤を開示する。前記非特異反応抑制剤は、免疫測定法において、微量物質を正確に検出、定量する際の障害となる非特異反応を抑制することができる。