生命科学関連特許情報
| タイトル： | 特許公報(B2)_ペントース含有基質からの乳酸の製造 |
| 出願番号： | 2006500112 |
| 年次： | 2013 |
| IPC分類： | C12P 7/56,C12R 1/07 |
特許情報キャッシュ
オットー，ロエル JP 5322383 特許公報(B2) 20130726 2006500112 20040112 ペントース含有基質からの乳酸の製造 ピュラック バイオケム ビー． ブイ． 504421730 松井 光夫 100085545 オットー，ロエル EP 03100042.5 20030113 20131023 C12P 7/56 20060101AFI20131003BHJP C12R 1/07 20060101ALN20131003BHJP JPC12P7/56C12P7/56C12R1:07 C12P 7/56 ＰｕｂＭｅｄ／ＣＡ／ＣＡＰＬＵＳ／ＳＣＩＳＥＡＲＣＨ ＢＩＯＳＩＳ／ＷＰＩＤＳ／ＭＥＤＬＩＮＥ ＪＳＴＰｌｕｓ／ＪＭＥＤＰｌｕｓ／ＪＳＴ７５８０ 米国特許第５７９８２３７（ＵＳ，Ａ） 特開２００２−３００８９８（ＪＰ，Ａ） Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃ ｂａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｙ，１９８８，Ｖｏｌ．３８，Ｎｏ．１，ｐ．６３−７３ Ｅｎｚｙｍｅ ａｎｄ ｍｉｃｒｏｂｉａｌ ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，１９９９，Ｖｏｌ．２４，Ｎｏ．３−４，ｐ．１９１−１９９ 10 EP2004050013 20040112 WO2004063382 20040729 2006514831 20060518 12 20070111 2010020377 20100910 田村 明照 関 美祝 安藤 倫世本発明は、ペントース含有基質、特にキシロース含有基質からの乳酸の製造に関する。乳酸、及びラクテートとして知られるその塩は、種々の分野、例えば医薬、生分解性ポリマー、及び食品加工において有用な工業的に発展しうる製品である。現在、乳酸はグルコース、澱粉、液化された澱粉又は蔗糖から工業的に製造されている。現在、これらの基質は乳酸の製造原価へ大きく寄与する。リグノセルロースバイオマスは、乳酸の生物学的生産のための基質として価格的に魅力的な代替品を提供する、なぜならそれは入手容易であり、競合する栄養価を有さず、澱粉又は蔗糖より安価であるからである。理論的には、微生物はバイオマスに含まれる蔗糖を乳酸へ発酵させることができる。しかし、いくつかの障害が、微生物によるこの原料の乳酸生産への有効利用を妨げる。リグノセルロース基質は、主にセルロース、ヘミセルロース、及びリグニンから構成されている。いくつかの微生物はセルロース中のグルコース成分を効率的に発酵させることはできるが、バイオマスのヘミセルロース画分中に含まれるペントース糖の転化は、より困難であることがわかっている。ヘミセルロース中の最も豊富なペントース糖は、Ｄ−キシロース、及びＬ−アラビノースを含む。キシロース及びアラビノースの発酵は、植物起源のバイオマスの経済的な転化の主な障害である。多くのヘテロ乳酸及び任意の（facultative）へテロ乳酸バクテリアは、ペントースを発酵することができる。これらの糖を発酵させるために、これらの生物により使用される代謝経路は簡単である：ペントース、例えばＤ−キシロース（アルドース）が細胞に入り、該細胞においてキシルロース（ケトース）に異性化され、次に１ＡＴＰを消費してリン酸エステル化されて、キシルロース−５−リン酸を与え、それが次にホスホケトラーゼ（ＥＣ４．１．２．９）によりグリセルアルデヒド−３−リン酸及びアセチルリン酸に開裂される。この代謝経路は、ホスホケトラーゼ経路として公知である(Lengeler,J. W.; G. Drews; H. G. Schlegel, 「原核生物の生物学（Biology of prokaryotes）」、1999年、Thieme出版, シュトゥットゥガルト、 ドイツ)。ホスホケトラーゼ反応において生産されるグリセルアルデヒド−３−リン酸は、エムデン−マイヤーホフ経路におけるようにピルビン酸に転化され、２ＡＴＰ及び１ＮＡＤＨ２を与える(Lengeler, J. W.; G.Drews; H. G. Schlegel, 「原核生物の生物学」、1999年、 Thieme出版,シュトゥットゥガルト、 ドイツ)。ピルビン酸は最終的にＮＡＤＨ２で乳酸に還元される。ホスホケトラーゼ反応において生産されるアセチルリン酸は、アセテートキナーゼ（ＥＣ２．７．２．１）により１ＡＴＰの生成と共にアセテートに転化される。ペントースの発酵の途中において、１ＮＡＤＨ２が生成されて、消費される。実質的なＡＴＰ収率は１モルのペントース当たり２である。ヘテロ発酵の乳酸バクテリアはヘキソースの発酵のための似た経路を使用する。ヘキソース、例えばグルコースは最初にグルコース−６−リン酸にホスホリル化され、酸化されて６−ホスホグルコネートを与え、最終的に酸化的に脱カルボキシル化されてリブロース−５−リン酸及び二酸化炭素を与える。リブロース−５−リン酸のエピマー化は、キシルロース−５−リン酸を与え、それはホスホケトラーゼ経路に入る。ペントースの発酵と対照的に、ヘテロ発酵乳酸バクテリアによるヘキソースの発酵は過剰の還元力（３ＮＡＤＨ２）を生産し、それはアセチルリン酸をエタノールに、及びピルビン酸を乳酸に還元するために使用される。この体系においてアセチルリン酸から酢酸は生産されない、従ってヘキソースの発酵のＡＴＰ収率は、ペントース発酵のそれの半分に過ぎず、即ち発酵された１モルのヘキソース当たり１ＡＴＰである。ペントース発酵の上の代謝経路において、酵素ホスホケトラーゼは、運命を決定する役割を果たす、なぜならペントースのＣ５の炭素骨格を、最終的に乳酸として回収されるＣ３部分、及び最終的に酢酸になるＣ２部分に分裂させるのはこの酵素だからである。もちろん最高の乳酸収率に向けて調整される乳酸の生産にとって、酢酸の生成は不経済である。しかし少数の報告は、あるラクトバチルス（ラクトバチルス）属例えばラクトバチルス属MONT4はある種のペントースをほとんどもっぱら乳酸に発酵させることを示す（Barre P. , 「高温発酵するブドウワインからの高温細菌及びホモ発酵する好熱性のペントース利用乳酸桿菌の識別」（Identification of thermobacteria and homofermentative,thermophilic pentose utilizing Lactobacilli from hightemperature fermenting grape must, J. Appl. Bacteriol. 1978年,第44巻,125〜129ページ)。ラクトバチルス属MONT４において、ペントースは、トランスアルドラーゼ（ＥＣ２．２．１．２）及びトランスケトラーゼ（ＥＣ２．２．１．１）を含む代謝経路ではなく、ホスホケトラーゼを含まない経路により異化される（米国５．７９８．２３７号）。この経路はトランスアルドラーゼ／トランスケトラーゼ経路として公知である。しかし、この経路のペントースに対するより高い乳酸の収率は、微生物の値段にくる。ホスホケトラーゼ経路のＡＴＰ収率がペントース１モル当たり２である一方、トランスアルドラーゼ／トランスケトラーゼ経路のそれはペントース３モル当たり５ＡＴＰである。この低いＡＴＰ収率は、ペントース発酵のホモ乳酸パターンを有する乳酸バクテリアがなぜ相対的に稀であるかの理由の１つであり得る。ラクトバチルス属MONT4がキシロースを発酵できないことを本明細書において特筆することは工業的な観点から関連がある。最近ラクトバチルス属MONT4が、キシロースイソメラーゼ及びラクトバチルス ペントサス(Lactobacillus pentosus)からのキシルロキナーゼ遺伝子で遺伝子工学的に操作されて、この微生物にキシロースを発酵させる能力を付与した。これは米国特許第５，７９８，２３７号に記載されている。微生物、例えばラクトバチルス属は乳酸を生産するが、ある性質がこれらの微生物を乳酸の工業的生産に適さないものにする：ラクトバチルス属は成長促進物質だけでなく、かなりの量の有機窒素を発酵培地中に必要とし、その結果、単純な発酵培地が使用されることができるときより、ブロスはより高価になり、乳酸は精製することがより困難になる。ラクトバチルス属 ＭＯＮＴ４を含む、さらに多くのラクトバチルス属は、低い鏡像体純度を有する乳酸を生産する（Barre P. , 「高温発酵するブドウワインからの高温細菌及びホモ発酵する好熱性のペントース利用ラクトバシリの識別」（Identification of thermobacteria and homofermentative,thermophilic pentose utilizing Lactobacilli from hightemperature fermenting grape must）, J. Appl.Bacteriol. 1978年、第44巻、125〜129ページ参照のこと）。これらの欠点のない方法を提供することは、本発明の目的の１つである。我々は、ある天然に存在する３０〜６５℃の温度で成長可能な中等度に好熱性（以下、「中等度に好熱性」という）であるバチルス属はペントース、より具体的にはキシロースを嫌気的、主として鏡像体的に純粋な乳酸及び／又は乳酸塩に発酵できることを今見出した。該ペントースの転化は実質的にＣ３化合物のみをもたらし、即ち該転化はホモ発酵経路を経て進行し、該Ｃ３化合物は乳酸及び／又は乳酸塩として回収されることができる。中等度に好熱性のバチルス属は、３０〜６５℃の温度において成長することができるバクテリア株である。該発酵は嫌気的に行われることがさらに重要である。嫌気的発酵の場合、工程は工業スケールで容易に行われることができる、なぜなら、例えば徹底的な攪拌装置による酸素供給は必要でないからである。この例は、バチルス コアギュランス（Bacillus coagulans）及びバチルススミッチィ（Bacillus smithii）、及びそれらの遺伝子的に変性された乳酸生産属である。これらのタイプの微生物は栄養的にLactobacilliより少なく必要とする。これらのタイプの微生物の追加的な利点は、より高い成長温度（ラクトバチルス属は５０℃以下の成長温度を有する）は、工業的スケールの発酵系における感染を避けることをより容易にする。従って、本発明は乳酸の製造方法において、ペントース含有基質が、嫌気的に発酵する中等度に好熱性のバチルス属によりホモ乳酸的に発酵される方法に向けられる。基質の選択はコスト及び乳酸及び／又は乳酸塩に発酵されるべき基質の供給に依存する。ペントースの典型的な低価格の供給はヘミセルロースからである。キシロース、アラビノース、及び他のペントースはヘミセルロース物質からスチーム及び／又は酸又はアルカリでの処理により遊離される。少量の他の糖、例えばグルコースもまたこの処理の間に分離され、中等度に好熱性のバチルス属により乳酸及び／又は乳酸塩に発酵される。リグノセルロース基質は、セルロース、ヘミセルロース、及びリグニンの両者を含む。これらのタイプの基質は、スチーム及び／又は温和な酸又はアルカリ処理による加水分解により入手可能にされ得る。基質がセルロース物質を含むとき、セルロースは、同時に又は別個に、糖に加水分解されて、乳酸にもまた発酵され得る。ヘミセルロースは一般的にセルロースより糖に加水分解されやすいので、最初にヘミセルロース物質を予備加水分解し、可溶性のペントース糖を分離して、次にセルロースを加水分解することが好ましい。加水分解は、酵素的に（セルロースにはセルラーゼで、ヘミセルロースにはヘミセルラーゼで）、又は酸処理により化学的に行われ得る。ペントース糖及びヘキソース糖の両者は同時に又は別個に中等度に好熱性のバチルス属を用いて乳酸及び／又は乳酸塩に発酵され得る。もし所望されるならば、ヘキソースは異なる微生物により、例えばイースト、菌、又は他の公知の乳酸生産バクテリア、例えばラクトバチルス属及びペントース発酵に使用されたものとは異なるバチルス属を用いる混合培養において、乳酸及び／又は乳酸塩に発酵され得る。乳酸及び／又は乳酸塩を生成するための発酵条件は、自体公知であり、国際公開第01/27064号、国際公開 第99/19290号及び 国際公開第98/15517号に記載されている。従って、温度は０〜８０℃の範囲であり得、ｐＨ（乳酸が生成されると下がる）は、３〜８の範囲である。５未満のｐＨが一般的に望ましい、なぜなら生成される乳酸の一部がその塩の形における代わりにその遊離の酸の形において存在するからである。さらに、低いｐＨにおいては、他の微生物による汚染のリスクがより少ない。多くの公知のタイプの装置のいずれも本発明に従う発酵に使用され得る。本発明に従う微生物は生物学的に純粋な培養物として使用され得るか、あるいは混合培養において他の乳酸生産菌と一緒に使用され得る。生物学的に純粋な培養は混合培養物よりも最適化することが一般的により容易であるが、混合された培養物は追加の基質を利用し得る。基質の分解を補助するために、又は乳酸生産を促進するために発酵容器に酵素を添加することもまた可能である。例えば、微生物によるグルコースの乳酸への発酵と同時に、セルラーゼがセルロースをグルコースに分解するために添加され得る。同様に、ヘミセルラーゼはヘミセルロースを分解するために添加され得る。上述されたように、該加水分解（場合により酵素によってもよい）は、発酵の前にもまた行われ得る。中等度に好熱性のバチルス属を含有する発酵ブロス培養物は、他の微生物による汚染に対して相対的に耐性がある。それにもかかわらず中等度に好熱性のバチルス属に添加された基質において前から存在する有害な微生物を除く又は無能にすることが好ましい。これは慣用の技術、例えば濾過、低温殺菌、及び滅菌により行われ得る。本発明に従う方法において使用される中等度に好熱性のバチルス属は、いわゆる化学的に定義された培地、及び定義されていない化合物、例えばイーストエキス、ペプトン、トリプトン、他の肉エキス、および複雑な窒素源を含む培地の両方において成長され得る。化学的に定義された培地が好ましい、なぜならそれは、より少ない不純物を有する乳酸及び／又は乳酸塩をもたらすからである。発酵後、乳酸及び／又は乳酸塩は、乳酸及び／又は乳酸塩を水性溶液から分離する多くの慣用の公知技術のいずれによっても発酵ブロスから分離される。基質の粒子又は微生物（バイオマス）は分離の効率を上げるために分離前に除去され得る。該分離は、遠心分離、濾過、凝集、浮揚、又は膜濾過により行われ得る。これは例えば国際公開第０１／３８２８３号から公知であり、該公報において発酵による乳酸の連続製造法が記載されている。この明細書における発酵の議論は一般的にバッチ法に関係するが、工程全体の一部又はすべてが連続的に行なわれ得る。発酵器において微生物を保持するため、発酵流動体から固体粒子を分離してもよい。又は、微生物は発酵器における保持の為、又はより容易な分離を与えるために固定化され得る。発酵ブロスから乳酸及び／又は乳酸塩の分離の後、生成物は１以上の精製工程、例えば抽出、蒸発、結晶化、濾過、活性炭素による処理などに付され得る。種々の残渣ストリームは、場合により処理後に、発酵容器、あるいは以前に行われた精製工程のいかなる工程にも再循環され得る。本発明は、さらに以下の実施例により説明されるが、該実施例は制限的であると解釈されるべきではない。実施例１中等度に好熱性のバチルス属によるペントース糖からの乳酸生成材料及び方法培地ビチルススミッチィ DSM459及び460（ドイツ培養物コレクション（German culture collection）から得られたＤＳＭ株）の生育のためのイーストエキス培地は、１リットルあたり、３．５ｇのＤＡＳ（硫酸アンモニウム）、２ｇのＤＡＰ（リン酸アンモニウム）、１０ｇのイーストエキスを含み、１０ｇのＢＩＳ−ＴＲＩＳ（ビス［２−ヒドロキシ−メチル］イミノトリス［ヒドロキシメチル］メタン）により緩衝処理された。培地は、使用前にオートクレーブ殺菌された。Ｄ−リボース、Ｄ−キシロース、Ｄ−アラビノース又はグルコースが、３％の最終濃度において炭素源として使用された。炭素源は、フィルター殺菌され、別に添加された。培地のｐＨは、ＨＣｌで６．６〜６．７に調節された。バチルスコアギュランス DSM 2314生育のためのイーストエキス培地は、Ｂ．スミッチィのために記載されたようであったが、10ｇ／リットルの代わりに１ｇ/リットルのイーストエキスを含んでいた。Ｂ．スミッチィDSM 2319及びＢ．コアギュランス DSM 2314の生育のための最小培地は、１リットルあたり２ｇのＤＡＰ，３．５ｇのＤＡＳ，１０ｇのＢＩＳ−ＴＲＩＳ，０．５ｇのＫＣｌ及び１５ｍｇのＭｇＣｌ２を含んでいた。培地のｐＨはＨＣｌでｐＨ６．８に調節された。培地は、使用前にオートクレーブ殺菌された。Ｄ−リボース、Ｄ−キシロース、Ｄ−アラビノース又はグルコースが、３％の最終濃度において炭素源として使用された。炭素源、成長因子及び微量元素は、フィルター殺菌され、別に添加された。最終濃度は０．０２４ｍｇ／Ｌのビオチン、０．０１２ｍｇ/Ｌのチアミン、０．０２ｇ／Ｌのメチオニン、０．０５ｇ／Ｌのイーストエキス、１００濃度は、０．０２４ｍｇ／Ｌのビオチン、０．０１２ｍｇ／Ｌのチアミン、０．０２ｇ／Ｌメチオニン、０．０５ｇ／Ｌのイーストエキス、１００μＬの微量元素、１ｇ/ＬのＣａＣｌ２であった。１００ｍｌ当たりに含まれる微量元素は、０．３６ｇのＦｅＣｌ３，０．３ｇのＭｎＣｌ２，０．２４ｇのＣｏＣｌ２，０．１２ｇのＺｎＣｌ２であった。乳酸生産のための成長条件炭素源として１０ｇ／Ｌのゲルライト（ゲランガム、シグマ）を含むグルコース（５％重量/重量）を用いるイーストエキス培地上に、すべてのバクテリアが、−８０のグリセロールストックから植えつけられた。プレートは４６℃において２４〜４８時間、嫌気ジャーの中でインキュベートされた。その後、嫌気培養物は、滅菌１０ｍｌチューブ中で炭素源としてグルコースを有する（３％ｗ／ｗ）イーストエキス上で製造された。培養物は５４℃において２４時間インキュベートされた。その後、培養物の２％が、炭素源としてグルコース、キシロース、リボース、又はアラビノースを有する最小培地を含むチューブに移された。チューブは５４℃において４８時間インキュベートされた。新鮮な培地への２度目の移動（２％）及び５４℃における４８時間のインキュベーションの後、バイオマス、ｐＨ及び有機酸生産の測定のために試料採取された。バイオマス生産量を測定するために、６１０ｎｍにおける光学密度が、脱ミネラル化水に対して測定された。（乳）酸生産の同定として、細胞ブロス中のｐＨが測定された。その後、細胞は遠心分離により採取され（１０分、８０００ｒｐｍ）、上澄みは０．４５μｍのフィルターを通して濾過され、さらなる分析の為に４℃に保たれた。有機酸、エタノール及び糖の分析有機酸（乳酸、酢酸、蟻酸、コハク酸）及びエタノールが誘導体化及びＧＬＣを用いて測定された。乳酸の純度は、ＧＬＣにより測定された。Ｄ−及びＬ−乳酸塩は乳酸メチルにメチル化され、キラルカラム上でのヘッドスペース分析により測定された。ペントース糖は、Carbopac PA −１カラムを含むDionexタイプのＤＸ５００及び１．０ml／分の流れを用いるPAD（パルス電流検出型ＥＤ４０）検出器で分析された。結果Ｂ．スミッチィ及びＢ．コアギュランスは嫌気的に５４℃においてイーストエキス及び３％（重量／重量）のアラビノース、リボース、又はキシロールを含む最小培地上で生育された（表１及び表２）。すべての株はペントース糖のホモ発酵を行い、主にＬ−乳酸を生産した。検出可能なレベルの酢酸は見出されなかった。生産されたＬ−乳酸の光学純度は９６．７〜９９．７％であった。他の有機酸（蟻酸、琥珀酸）及びエタノールはすべての場合において0.05％重量／重量の検出レベルより下であった。残った糖の分析は、使用された炭素源に依存する、キシロース、リボース、及びアラビノースの濃度の減少を示した（データは示されていない）実施例２ Ｂ．コアギュランスDSM 2314によるキシロースのホモ乳酸発酵材料及び方法株、培地、及び発酵条件使用された微生物はバチルスコアギュランスＤＳＭ２３１4であった。株は−８０℃においてグリセロールストック中で保たれていた。反応器（３リットル、アプリコン）以下の組成、２ｇ／ＬのＤＡＰ、３．５ｇ／ＬのＤＡＳ，１０ｇ／ＬのＢＩＳ−ＴＲＩＳ及び０．５ｇ／ＬのＫＣｌを有する１．５リットルの培地を含んでいた。 培地を含むバイオ反応器は１２１℃（１．２ｂａｒ）において２０〜３０分間オートクレーブ殺菌された。ビタミン及び微量元素の溶液が濾過滅菌され、殺菌後、別々にバイオ反応器に添加された。成長因子の最終的な濃度は、２０ｍｇ／ＬのＤＬメチオニン、２４ｍｇ／Ｌのビオチン、１２ｍｇ／Ｌのチアミン、１５ｍｇ／ＬのＭｇＣｌ２・２Ｈ２Ｏ、０．１ｇ／ＬのＣａＣｌ２，及び１．５ｍｌの微量元素であった。微量元素は１００ｍｌ当たり、０．３６ｇのＦｅＣｌ３，０．３ｇのＭｎＣｌ２，０．２４ｇのＣｏＣｌ２，及び０．１２ｇのＺｎＣｌ２を含んでいた。Ｄ−キシロースは殺菌後、５０ｇ／Ｌの最終濃度まで別に添加された。培地のｐＨは、ＨＣｌの濃縮された溶液で６．５に調節された。発酵の間、及び発酵の５０時間後に達成された低いバイオマスの濃度のために、イーストエキスが１０ｇ／Ｌの最終濃度まで添加された。接種源（〜１１０ｍｌ）が１％のD-キシロースを含む発酵培地中で５０℃において一晩成育された。接種減は２度の移動後、キシロース培地上で使用された。ｐＨの維持は、２０％（重量／体積(w/v)）におけるＫＯＨ溶液の自動添加で達成された。発酵は、５４℃、ｐＨ６．４及び２５０〜３００ｒｐｍの攪拌速度において行われた。温度制御は、水浴Lauda E100で行われ、ｐHの読み取り／制御データはADI１０２０バイオプロセッサーにより行われた。すべてのデータ（ｐH及び塩基消費）はオンラインデータ取得FM V５．０により加工された。試料は接種の前及び後に取り出された。発酵の間、５〜３０ｍｌの試料がOD測定、細胞乾燥重量（Cell Dry Weight）（CDW）及びL(+)及びD(-)乳酸、キシロース、及び可能な副生成物（アセテート）の分析の為に定期的に取り出された。試料は遠心分離され（４〜６℃、６０００〜１２０００ｒｐｍ、５〜１０分間）、上澄みは回収され、更なる分析まで−２１℃において貯蔵された。バイオマス生産の測定最初に秤量された０．４５μｍミリポアフィルターを通して乾燥物質が得られた。１５〜２０ｍｌの試料が濾過され、１０ｍｌの脱ミネラル化された水で洗浄され、１０５℃において１〜２日乾燥された。フィルターの最終的な重さはｇ／Ｌにおける乾燥された細胞（ＣＤＷ）の測定を許した。糖、有機酸及びエタノールの分析試料の残渣のキシロース濃度は、Chaplin, M. F., Kennedy, J.F. （１９８７年）、「炭化水素分析：実際的なアプローチ」ＩＲＬ出版リミテッド（ＩＳＢＮ 0-947946-68-3）により記載された鉄（III）オルシノールを用いて比色分析により測定された。（１）表３に示されたキシロース濃度がCarbopac PA-1カラムを含むＤｉｏｎｅｘタイプのＤＸ５００及び１．０ml／分の流れを用いるPAD（パルス電流検出器タイプED４０）検出器で分析された。試料のL(＋)乳酸塩分析は、酵素法により行われ、該方法は、グルコースオキシダーゼによるグルコースの定量のためのBoehringerのGOD-PAP法の改良版である。L(+)乳酸オキシダーゼはL(+)乳酸をピルビン酸塩及び過酸化水素に転化する。過酸化水素は、ペルオキシダーゼの存在下４−アミノフェナゾン及びフェノールと反応して、５４０ｎｍにおいて分光学器において測定されることができる水溶性の赤に着色された生成物を生成する。表３に示されたように有機酸（乳酸、酢酸、蟻酸、琥珀酸）及びエタノールが誘導体化及びＧＬＣを用いて測定された。乳酸の光学純度はＧＬＣにより測定された。Ｄ−及びＬ−乳酸塩は乳酸メチルにメチル化され、キラルなカラム上でヘッドスペース分析により測定された。結果株バチルスコアギュランス DSM 2314が、３リットルの発酵器（図１）で５４℃において最小培地において５０ｇ／Ｌのキシロース上で成育された。発酵の間、発酵の５０時間後に達成された低いバイオマス濃度のために、イーストエキスが１０ｇ／Ｌの最終濃度まで添加された。およそ１０５時間後、キシロースが培地から使い果たされ、主に乳酸に転化され（３５ｇ／Ｌ）、酢酸の濃度は低くかった（１ｇ／Ｌ）（表３）。生産された乳酸の光学純度は、９９％であった。他の有機酸の生産はすべて検出レベルより下であった。結果は、Ｂ．コアギュランスの能力が、ペントース糖上でホモ発酵的な乳酸発酵を行うことができることを示す。キシロース上での最適化されていない発酵におけるＢ．コアギュランスによる最大乳酸生産速度は、オンラインデータ取得ソフトウェアにより観察されたところ１．７ｇ／Ｌ／時であった。乳酸及び／又は乳酸塩の製造方法において、ペントース含有基質が、嫌気的に発酵する、３０〜６５℃の温度で成長可能な中等度に好熱性のバチルス属によりホモ乳酸的に発酵される方法。ペントース含有基質がキシロースを含む、請求項１に記載の方法。３０〜６５℃の温度で成長可能な中等度に好熱性のバチルス属がバチルスコアギュランス及び／又はバチルススミッチィから選択される、請求項１又は２のいずれか１項に記載の方法。ペントース含有基質がアラビノースを含む、請求項１〜３のいずれか１項に記載の方法。基質がグルコースを含む、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。発酵が、３０〜６５℃の温度で成長可能な中等度に好熱性のバチルス属及び他の乳酸生産微生物の混合物により行われる、請求項１〜５のいずれか１項に記載の方法。生成された乳酸及び／又は乳酸塩が発酵ブロスから分離される、請求項１〜６のいずれか１項に記載の方法。３０〜６５℃の温度で成長可能な中等度に好熱性のバチルス属が化学的に定義された培地上で成育される、請求項１〜７のいずれか１項に記載の方法。発酵ブロスからの乳酸及び／又は乳酸塩の分離の前に、バイオマスが発酵ブロスから除去される、請求項８に記載の方法。生産された乳酸及び／又は乳酸塩が、発酵ブロスからの分離の後に１以上の精製工程に付される、請求項８〜９のいずれか１項に記載の方法。