生命科学関連特許情報
| タイトル： | 特許公報(B2)_組み換えブタ肝臓エステラーゼ、その使用及びその製造方法 |
| 出願番号： | 2002550041 |
| 年次： | 2009 |
| IPC分類： | C12N 15/09,C12N 1/15,C12N 1/19,C12N 1/21,C12N 5/10,C12N 9/20,C12P 41/00 |
特許情報キャッシュ
ウーヴェ ボルンショイアー アナ ムスィドロフスカ クラウディア シュミット−ダンネルト シュテファン ランゲ JP 4263482 特許公報(B2) 20090220 2002550041 20011206 組み換えブタ肝臓エステラーゼ、その使用及びその製造方法 エボニック デグサ ゲーエムベーハー 501073862 Ｅｖｏｎｉｋ Ｄｅｇｕｓｓａ ＧｍｂＨ 矢野 敏雄 100061815 山崎 利臣 100094798 久野 琢也 100099483 杉本 博司 100110593 星 公弘 100128679 二宮 浩康 100135633 アインゼル・フェリックス＝ラインハルト 100114890 ウーヴェ ボルンショイアー アナ ムスィドロフスカ クラウディア シュミット−ダンネルト シュテファン ランゲ DE 100 61 864.2 20001212 20090513 C12N 15/09 20060101AFI20090416BHJP C12N 1/15 20060101ALI20090416BHJP C12N 1/19 20060101ALI20090416BHJP C12N 1/21 20060101ALI20090416BHJP C12N 5/10 20060101ALI20090416BHJP C12N 9/20 20060101ALI20090416BHJP C12P 41/00 20060101ALI20090416BHJP JPC12N15/00 AC12N1/15C12N1/19C12N1/21C12N5/00 AC12N9/20C12P41/00 D C12N 15/00 BIOSIS/MEDLINE/WPIDS(STN) GenBank/EMBL/DDBJ/GeneSeq SwissProt/PIR/GeneSeq FEBS, vol.293, pp.37-41 (1991) Eur.J.Biochem., vol.257, pp.142-148 (1998) Cell., vol.48, pp.899-907 (1987) Biochem.J. vol.269, pp.451-458 (1990) 27 EP2001014338 20011206 WO2002048322 20020620 2004515247 20040527 27 20041129 長井 啓子 【０００１】本発明は酵素的に活性な組み換えブタ肝臓エステラーゼ、その製造のための生体工学的な方法並びに有機合成におけるその使用に関する。【０００２】リパーゼ及びエステラーゼは有用な生体触媒として多くの光学活性化合物の製造のために使用できる。しかしながら全ての一連のリパーゼ（特に微生物由来）は市販されているが、ラセミ分割もしくは非対称化における使用のために提供される非常に僅かなエステラーゼが存在するにすぎない。ブタ肝臓組織からのエステラーゼ抽出物を用いて部分的に基質を十分な立体選択性で変換できるにもかかわらず、かかる抽出物の使用は一連の欠点と結びついている。種々のバッチの間のエステラーゼ成分の変動の他に、特に他のヒドロラーゼの存在が立体選択性に関して問題があるとみなされる（Seebach, D. et al., Chimia (1986), 40, 315-318）。更に従来の抽出物は、部分的にその基質特異性においてかなり異なる多くのイソ酵素の形で存在するという問題がある（Farb, D., et al., Arch. Biochem. Biophys. (980) 203, 214-226）。Heymann, E.及びJunge, W.（Eur. J. Biochem. (1979), 95,509-518; Eur. J. Biochem. (1979), 95, 519-525）は費用のかかる電気泳動的な分離に成功したので、有利にはブチリルコリン、プロリン−β−ナフチルアミド及びメチルブチレートを分解するフラクションを単離することができた。それに対して、別の研究（例えばLam, L.K.P., et al., J.Am.Chem. Soc. (1988) 110, 4409-4411）は単に活性における差異を示したにすぎず、個々のフラクションの特異性においては示していない。【０００３】前記の理由から、生体工学的に製造された特異的な組成を有するブタ肝臓エステラーゼの必要性が存在する。【０００４】推定されるブタ肝臓エステラーゼ遺伝子のクローニングは既に成功している（Takahashi, T, et. al., J. Biol. Chem. (1989), 264, 11565-11571; FEBS Lett. (1991), 280, 297-300; FEBS Lett. (1991), 293, 37-41; Ldavid, L., et al., Eur. J. Biochem. (1998) 257, 142-148）が、かかる酵素の需要が存在するにもかかわらす活性なブタ肝臓エステラーゼ酵素の機能的発現はいままで成功していない。【０００５】従って本発明の課題は、生体工学的に容易に製造できる酵素的に活性なブタ肝臓エステラーゼを提供することであった。【０００６】前記課題は、モノマーのサブユニットがＣ末端で天然に存在するブタ肝臓エステラーゼ−サブユニットに対して短縮されているブタ肝臓エステラーゼによって解決された。更にＮ末端を同様に短縮することも更に有利であると判明した。【０００７】意想外にも、生体工学的な発現は培地においてブタ肝臓エステラーゼのサブユニットを分泌して酵素的に活性な組み換えブタ肝臓エステラーゼをもたらし、これらは十分に不純物を含まずに単離でき、高度にエナンチオ選択的にはたらき、かつそれに基づいて基質変換において、特に収率及びエナンチオ選択性に関して再現性のある結果を保証することを示すことができた。【０００８】従って本発明の対象はＣ末端で、天然に存在するブタ肝臓エステラーゼに対して１〜５０個のアミノ酸、有利には３〜１０個のアミノ酸、特に有利には３又は４個のアミノ酸を欠損しているブタ肝臓エステラーゼの組み換えサブユニットである。本発明によるサブユニットはＣ末端に他の機能的ペプチドドメインを、例えばアフィニティクロマトグラフィーにより容易に単離するためにｍｙｃ−タグ及び／又はポリ−Ｈｉｓ−タグを有してよい。【０００９】更に、Ｎ末端で、天然に存在する遺伝子産物に対して１０〜５０アミノ酸、有利には１５〜２５アミノ酸の範囲を除去することは、機能的な生体工学的製造のために有利である。【００１０】Ｎ末端は同様に機能的ペプチドドメインを有してよく、その際、特に分泌シグナルドメイン、例えば相応のプライマー配列ＰＬＥ−７Ｆ（配列番号８）に含まれているα−因子−シグナル配列又は、例えばプライマー配列ＰＬＥ−９Ｆ（配列番号１０）中に含まれているｏｍｐＡ−シグナル配列に関心が持たれている。【００１１】Ｓｗｉｓｓ−Ｐｒｏｔのアクセッション番号Ｑ２９５５０による推測されるブタ肝臓エステラーゼ−サブユニットから出発して得ることができる特定のブタ肝臓エステラーゼ−サブユニット、とりわけ生体工学的に製造できる配列番号１のアミノ酸配列を有するブタ肝臓エステラーゼ−サブユニット、そのアレル形又は８０％を上回る、特に９０％を上回る配列ホモロジーを有するその機能的な突然変異形が有利である。【００１２】【表１】【００１３】（配列番号１）機能的な突然変異形とは、本願の範囲では酵素的に活性な組み換えブタ肝臓エステラーゼに会合できるブタ肝臓エステラーゼ−サブユニットを意味する。またα、β、γ型のブタ肝臓エステラーゼの天然に存在するモノマーから誘導できるサブユニットもそれに該当する。有利には得られる酵素の活性中心の周辺で改変された人工的に作成される突然変異形もそれに該当する。このことは、例えば配列番号１によるモノマーのサブユニットのＡｓｐ８０、−ａｗｅ１８６及びＨｉｓ４３１の位置の周辺での突然変異に関する。それによって組み換えブタ肝臓エステラーゼの酵素活性及び選択性は規定の基質に関して増大されうる。【００１４】更にブタ肝臓エステラーゼ−サブユニットという用語には、翻訳後修飾によって本来の翻訳生成物から生じるその誘導体が該当する。【００１５】組み換えブタ肝臓エステラーゼの個々のモノマーサブユニットは溶液中で特に機能性の酵素にマルチマーを形成できる。更に種々の型のサブユニットも結合しうる。更にまた該モノマー自体も、一般にマルチマーより弱い酵素活性を示す。【００１６】こうして得られたブタ肝臓エステラーゼは高純度に優れている。特に、ブタ肝臓エステラーゼ抽出物中に存在する慣用の不純物をイソ酵素及び別のヒドロラーゼによって低減できる。組み換えブタ肝臓エステラーゼは更に、高められた部分的にどころか強く高められたエナンチオ選択性を示し、これは酵素的な有機合成での使用に関心が持たれている。また組み換えブタ肝臓エステラーゼが市販のブタ肝臓エステラーゼと反対の立体選択性を時々示すことも特に関心が持たれている。更に組み換えブタ肝臓エステラーゼは一様な品質で製造することができる。【００１７】本発明の更なる対象は、本発明による組み換えブタ肝臓エステラーゼ−サブユニットをコードする核酸又はかかる核酸配列と相補性であり、前記のサブユニットをコードする核酸とストリンジェントな条件下にハイブリダイズするＤＮＡ断片である。そのために通例のハイブリダイゼーション条件（例えば６０℃、０．１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ）を用いることができる。【００１８】更に有利な実施形においてコーディング領域の３′末端での翻訳の特異的な終止のために終止コドンを導入する。【００１９】コーディングＤＮＡ配列を慣用のベクターにクローニングし、かつかかるベクターによる宿主細胞のトランスフェクションの後に細胞培養中で発現させることができる。適当なベクターは、例えばＥ．コリの形質転換のためのｐＵＣ１９ベクター又はｐＣＹＴＥＸベクター又は酵母ピシア パストリス（Pichia pastoris）の形質転換のためのｐＰＩＣＺα−ベクターである。アスペルギルス種、シュワニオマイセス種（Schwanniomyces）、クルイベロマイセス種、ヤロイア種（Yarrowia）、アルクスラ種（Arxula）、サッカロマイセス種、ハンゼヌラ種又はピシア種の種の中で更に関心が持たれている単細胞生物が組み換え酵素の生体工学的発現のための宿主として適当であると見なされている。有利な宿主生物として、Ｐ．パストリスの他にサッカロマイセス セレビシエ、アスペルギルス オリザエ（Aspergillus orycae）、シュワニオマイセス オキシデンタリス（Schwanniomyces occidentalis）、クルイベロマイセス ラクティス（Kluyveromyces lactis）、ヤロイア リポリチカ（Yarrowia lipolytica）、アルクスラ アデニニブランス（Arxula adeninivrans）、ピシア メタノリカ（Pichia methanolica）、ピシア ギリエルモンディ（Pichia guilliermondii）又はハンゼヌラ ポリモルファ（Hansenula polymorpha）が挙げられる。【００２０】コーディングＤＮＡ断片はベクター中でプロモーターに対するオープンリーディングフレームに存在せねばならない。プロモーターとしては、とりわけ強力なプロモーター、例えばｌａｃプロモーター、λプロモーター、Ｔ７プロモーター、Ｔ４プロモーター、ラムノース誘導可能なプロモーター又はアルコールオキシダーゼ（ＡＯＸＩ）プロモーターが有利である。ベクターは他の機能的領域を有してよい。選択マーカー及び複製起点の他に、とりわけ遺伝子調節エレメント、例えばオペレーター、リプレッサー又は転写因子が関心が持たれている。特に組み換えブタ肝臓エステラーゼ又は機能性酵素自体の可逆的な、誘導可能な又は阻害可能な発現を可能にするベクターの構築物を使用してよい。ブタ肝臓エステラーゼ−サブユニットの発現のための本発明によるコーディングＤＮＡ断片を有するベクターによるトランスフェクションのために有利な宿主細胞は単細胞性の原核生物又は真核性物、例えばアスペルギルス種、Ｓ．セレビシエ、ハンゼヌラ種、Ｅ．コリ又はＰ．パストリスである。【００２１】従って本発明の更なる対象は本発明によるブタ肝臓エステラーゼ−サブユニット及び場合により該サブユニットに融合される他のＮ−末端ドメイン及び／又はＣ−末端ドメインをコードするＤＮＡ断片のベクターへのクローニングのための使用、細胞の形質転換のための前記ベクターの使用並びに形質転換されたかかる細胞又は細胞培養の組み換えブタ肝臓エステラーゼ−サブユニットの発現のための使用である。発現されたサブユニットは、例えばモノマー形で単離できるが、またサブユニットを媒体中で酵素活性の組み換えブタ肝臓エステラーゼにマルチマー形成させること及び、引き続いて機能的な酵素を単離することも可能である。【００２２】定常法で液体培養容器中で宿主細胞の培養及びブタ肝臓エステラーゼの分泌性発現は有利である。【００２３】発現されたエステラーゼの活性は選択された基質の変換によって調査することができる。この場合にアセテート、例えばｐ−ニトロフェニルアセテートのエステラーゼ触媒による発色団分解も適当であるとみなされる。【００２４】酵素活性の組み換えブタ肝臓エステラーゼの生体工学的発現の他に、突然変異誘発のためのＤＮＡ断片、発現ベクター又は発現系を使用してよい。更に発現可能な突然変異のブタ肝臓エステラーゼ及びそのモノマーサブユニットをその酵素活性に対して試験しかつ選択できる。突然変異誘発、発現及び選択の周期の多数の反復によって有機合成のためのテーラーメイドの酵素触媒を作成できる。その際、選択段階は発現された組み換え酵素を潜在的な基質を含有する反応バッチに添加することによって実施でき、その際、該変換は、例えば測光的に測定できる。【００２５】組み換えブタ肝臓エステラーゼによる触媒反応のための基質としては、とりわけ芳香族−脂肪族の及び脂肪族−脂肪族のエステルが考慮され、この場合、とりわけキラル又はプロキラルのアルコールのカルボン酸エステルが考慮され、その際、該カルボン酸成分は有利には２〜６個、特に有利には２〜４個のＣ原子を含み、かつまた分枝していてよい。カルボン酸エステル、特にアセテートの酵素触媒的ラセミ分割はこの場合、高い乃至優れたエナンチオ選択性で進行する。配列番号１によるモノマーサブユニットを有する組み換えブタ肝臓エステラーゼの酵素活性の最適値は５〜１０、有利には７〜９のｐＨ値並びに２０℃〜９０℃、有利には３０℃〜８０℃、特に有利には４０又は５０℃〜６０又は７０℃の温度にある。【００２６】更に本発明による組み換え酵素はカルボン酸のラセミ分割においても又はプロ立体異性形成性の化合物、特にジオール又はジカルボン酸の変換において使用できる。【００２７】以下に本発明の明瞭化のために幾つかの実施例を挙げるが、限定するものではないと解釈されるべきである。【００２８】一般的な使用される微生物、培地、ベクター及びオリゴヌクレオチドＥ．コリ株ＤＨ５α（F-endA1 hsdR17 (rk-,mk＋) supE44 rhi-I λ gyrA96 relAI Δ(argF-laczya) U169）を以下に使用されるプラスミドの取得及び増幅のために使用する。Ｅ．コリ株ＤＨ５αをＬＢ低塩（１０ｇｌ-１の酵母エキス、１０１０ｇｌ-１のペプトン及び５ｇｌ-１のＮａＣｌ）中で培養する。培養溶液を５０ｍｇｌ-１のナリジキシン酸及び場合により１００ｍｇｌ-１のアンピシリン又は２５ｍｇｌ-１のゼオシン（Invitrogen, Carlsbad, CA, USA）と混合する。発現試験のために酵母ピシア パストリスＸ３３（Invitrogen）を用いた。ピシア細胞の培養のために以下の培地を用いた：− ＹＰＤ培地（１％の酵母エキス、２％のペプトン及び２％のグルコース）；− ＹＰＤＳ培地（１Ｍのソルビトール中のＹＰＤ培地）；− ＢＭＧＹ培地（１％の酵母エキス、２％のペプトン、１００ｍＭのリン酸カリウムｐＨ６、アミノ酸ではなく硫酸アンモニウムでの１．３４％の酵母−窒素ベース及び１％のグリセロール）；− ＢＭＭＹ培地（ＢＭＧＹ培地、その際、０．５％の濾過滅菌されたメタノールを１％のグリセロールの代わりに使用する）これらの培地を１００ｍｇｌ-１のゼオシンと混合する。プレート作成可能な培地のために１．５％のアガーを添加する。【００２９】Ｅ．コリ−Ｐ．パストリスのベクターｐＰＩＣＺαＡ（Invitrogen）を使用して、アルコールオキシダーゼ−プロモーターＡＯＸＩのコントロール下にあるブタ肝臓カルボキシエステラーゼをコードするＤＮＡ配列をクローニングした。ＰＣＲのために使用されるオリゴヌクレオチドプライマーを第１表にまとめる。【００３０】第１表【００３１】【表２】【００３２】一般的なＤＮＡ組み換え及び形質転換特に挙げられない限りはSambrook, J., Fritsch, E., Maniatis, T. (1989) Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2nd Edn., Cold Spring Habour, NYによる標準的方法を使用する。プラスミド抽出及びＤＮＡ抽出のために、QIAprep Spin Miniprep Kit、Plasmid Midi Kit又はQIAquick Gel Extraction Kit（Qiagen, Hilden, Germany）を使用する。使用される制限酵素はそれぞれ製造者の指示のもと使用する。ＤＮＡ配列決定は両ストランドをもとにTaq Ready Reaction Dye DeoxyＴＭ Terminator Cycle Sequencing Kit（Applied Biosystems, Weiterstadt, Germany）を用いて行う。配列決定生成物を同社の３７３ＤＮＡ−シークエンサーを用いて分析する。コンピテントなＥ．コリ細胞の調製及び形質転換のためにChung, C.T., Niemela, S.L. & Miller, R.H. (1989) Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 86, 2172-2175による標準的プロトコールを用いる。Ｐ．パストリスの形質転換はそれぞれのプラスミドを用いてエレクトロポレーションによって行う。【００３３】例１：組織調製、ｍＲＮＡ単離及びｃＤＮＡのクローニング０．８ｇの新鮮なブタ肝臓組織を均質化し、かつ遊離されたポリＡ−ｍＲＮＡをFast Track 2.0 Kit（Invitrogen）を使用して製造者による指示に従って単離する。ｍＲＮＡ抽出物を主体とするｃＤＮＡ合成はＲＴ−ＰＣＲによってcDNA CycleＴＭ Kits（Invitrogen）を用いてオリゴ−ｄＴ−プライマーを使用してキットのプロトコールに従って実施した。ＲＴ−ＰＣＲ産物を次いでブタ肝臓エステラーゼ（ブタ肝臓エステラーゼＰＬＥ）の増幅のためのテンプレートとして考慮する。遺伝子特異的プライマーとしてこの場合、オリゴヌクレオチドＰＬＥ−１Ｆ（配列番号２）及びＰＬＥ−２Ｒ（配列番号３）（第１表）が使用され、それによって同時にＰＣＲ産物のクローニングのために必要な制限切断部位が導入された。両方のプライマーをブタ肝臓のプロリン−β−ナフチルアミダーゼ（Matsushima, M., et al. (1991) FEBS Lett. 293, 37-41）のｍＲＮＡ配列をもとに製造し、そこから該配列がＰＬＥに相補性の配列の１つを有することが推測された。ＰＣＲをサーモサイクラー（Robocycle Gradient 40, Stratagene, La Jolla, CA, USA）で実施した。最初の５分間の９５℃での変性工程の後に以下の温度プログラムによる２８サイクルを行った：９５℃で１分間、５５℃で２分間及び７２℃で３分間。【００３４】精製されたＰＣＲ産物をその平滑末端を利用してｐＵＣ１９ベクターのＳｍａＩ−制限切断部位にクローニングする。得られるｐＵＣ１９−ＰＬＥ−Ｒ−ベクターをＥ．コリＤＨ５α株の形質転換のために用い、該プラスミドを形質転換された株の培養によって増幅させた。該プラスミドを組み換えＥ．コリ株から単離し、サイズ測定もしくは制限マッピングにより同定し、かつＰＬＥ−配列のＰＣＲ−増幅のためのテンプレートとして考慮した。増幅されたＰＬＥ配列を引き続き配列決定した。【００３５】例２：Ｅ．コリ及びＰ．パストリスのための発現ベクターの構築Ｅ．コリにおけるクローニングされたＰＬＥの細胞内発現のために、ｐＵＣ１９−ＰＬＥ−ＲをＮｄｅＩ及びＥｃｏＲＩで切断し、それによって完全な天然に存在するＰＬＥ配列をコードする１７０５ｂｐ長の断片が得られた。得られた制限断片をｐＴ１−ＢＴＬ２（Belev, T.N. et al. (1991) Plasmid, 26, 147-150）のＮｄｅＩ／ＥｃｏＲＩ制限切断部位に挿入し、その際、新規のベクターｐＣＹＴＥＸ−ＰＬＥ（６６５２ｂｐ）が形成する。Ｎ末端のリーダー配列（ｍＰＬＥ）を有さないＰＬＥ配列の細胞周辺発現のために相応のＤＮＡ配列をプライマーＰＬＥ−３Ｆ（配列番号４）及びＰＬＥ−４Ｒ（配列番号５）（第１表）を用いて増幅させ、かつその平滑末端でｐＴ１−ｏｍｐＡ−ＢＴＬ２ベクター（Rua, M.L., et al. Appl. Microbiol. Biotechnol. 49, 405-410）のｐＴ１−ｏｍｐＡ−ＢＴＬ２配列にライゲーションし、同様にプライマーＰＬＥ−５Ｆ（配列番号６）及びＰＬＥ−６Ｒ（配列番号７）（第１表）を用いて増幅させてよい。得られるベクター（ＢＴＬ２遺伝子をもはや有さない）をｐＣＹＴＥＸ−ｏｍｐＡ−ｍＰＬＥ（６６８２ｂｐ）と呼称し、これはｍＰＬＥ遺伝子をｏｍｐＡリーダー配列に対するオープンリーディングフレームに、熱により誘導可能なλプロモーターのコントロール下に有する。Ｐ．パストリスにおけるｍＰＬＥ遺伝子の発現のために、Ｅ．コリ−Ｐ．パストリスのベクターｐＰＩＣＺαＡ（Invitrogenによる）のα−因子シグナル配列の下流のオープンリーディングフレームにｍＰＬＥ ＤＮＡ配列をクローニングした。ｍＰＬＥ遺伝子を次いでプライマーＰＬＥ−７Ｆ（配列番号８）及びＰＬＥ−８Ｒ（配列番号９）（第１表）を用いて増幅し、増幅産物を制限酵素ＮｄｅＩ及びＸｂａＩで切断し、かつｐＰＩＣＺαＡベクターの相応の制限切断部位にライゲーションする。得られたベクターをｐＰＩＣＺα−ｍＰＬＥと呼称する。【００３６】更に、発現生成物がＣ末端のＨＡＥＬテトラペプチドの欠失を有する発現ベクターを構築した。そのために、ｍＰＬＥ遺伝子をプライマーＰＬＥ−９Ｆ（配列番号１０）及びＰＬＥ−１０Ｒ（配列番号１１）又はＰＬＥ−１１Ｒ（配列番号１２）を用いて増幅させた。両方のＰＣＲ産物をｐＰＩＣＺαＡのＥｃｏＲＩ／ＸｂａＩ−制限切断部位にライゲーションした。プライマーＰＬＥ−１０Ｒを用いて作成した断片は、当初のｐＰＩＣＺαＡベクターで既にコードされているｍｙｃ−ドメイン及びＨｉｓタグドメインを含有する融合タンパク質をもたらす。プライマーＰＬＥ−１１の使用によって得られるＰＣＲ産物はＣ末端タグを有さない。それというのもプライマーによってｐＰＩＣＺαＡベクターのタグドメインとの融合を妨げる終止コドンが導入されるからである。【００３７】全ての得られるベクターｐＰＩＣＺα−ｍＰＬＥ（５１８３ｂｐ）、ｐＰＩＣＺα−ｍＰＬＥ*−１（５１７０ｂｐ）及びｐＰＩＣＺα−ｍＰＬＥ*−２（５１７１ｂｐ）をＰｍｅＩ制限切断部位で直鎖化し、かつＰ．パストリスにエレクトロポレーション（Invitrogen）で導入させる。製造されたベクターを図１で図示する。【００３８】例３：Ｅ．コリＤＨ５αにおける組み換えＰＬＥの発現ｐＣＹＴＥＸ−ＰＬＥ又はＰＣＹＴＥＸ−ｏｍｐＡ−ｍＰＬＥベクターで形質転換されている組み換えＥ．コリＤＨ５αを３７℃でＬＢ培地において２００ｒｐｍで細胞密度ＯＤ５７８が０．８〜１．０に達するまで培養する。組み換えタンパク質の発現を４２℃への温度増加によって誘導した。１時間ごとに試料を採取し、誘導の３〜４時間後に細胞を回収し、かつ−２０℃で貯蔵するか、もしくはＳＤＳ−ＰＡＧＥ又は活性アッセイによって調査した。【００３９】例４：培養及びＰ．パストリスにおける組み換えＰＬＥの分泌的発現ゼオシン培地で選択された組み換えクローンをピックアップし、かつＹＰＤＳ培地上で３０℃において２００ｒｐｍで、細胞密度ＯＤ６００が約１５に達するまで培養する。２５ｍｌのＢＭＧＹ培地を２００μｌの前記の培養で接種し、かつ３０℃で一晩培養した。次いで酵母細胞を３０００ｇ及び４℃での５分間の遠心分離によって単離し、かつＢＭＭＹ誘導培地に移し、その際、該培養を細胞密度ＯＤ６００が１．０になるまで培養する。前記の誘導を０．５％（ｖ／ｖ）のメタノールの毎日の添加によって行う。９６時間の誘導後にこれらの細胞を遠心分離によって回収した。上清は組み換え酵素を含有し、これを４０００ｇ及び４℃での１５分間の遠心分離によって２０ｍｌのセントリコン（NMWL30000, Ultracel-PL membrane, Millipore）を用いて濃縮する。培養の増殖期の間の活性及び濃縮された酵素含有培地の活性の測定をｐＮＰＡアッセイで測定し、これらのタンパク質をゲル電気泳動で同定した（より詳細な記載は引き続いて行う）。タンパク質濃度の比重測定のための参考として血清アルブミンを既知の濃度で使用した。【００４０】例５：ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動２ｍｌ又は２０μｌの１０倍濃縮されたＰ．パストリス培養の上清に溶解された２０μｌの市販のブタ肝臓−カルボキシルエステラーゼ（１００Ｕ、ｐＮＰＡアッセイ後）を１０μｌの２×ＳＤＳサンプルバッファーと混合した。該溶液を９５℃で５分間加熱した後に、これらのタンパク質を１２．５％のポリアクリルアミドゲル、４％のスタッキングゲル上で分離する。これらの試料をタンパク質検出のためにクーマシーブリリアントブルーＲ２５０で染色した。エステラーゼ活性測定のためにこれらのタンパク質をトライトンＸ−１００溶液（０．１Ｍのトリス／ＨＣｌ中０．５％ｐＨ７．５）中で再生させた。次いでゲルを溶液Ａ（５ｍｌのアセトン中に溶解され、引き続き５０ｍｌの０．１Ｍのトリス／ＨＣｌ（ｐＨ７．５）、５０ｍｌの０．１Ｍのトリス／ＨＣｌ（ｐＨ７．５）中に溶解された５０ｍｇのFast Red TR塩が添加された２０ｍｇのα−ナフチルアセテート）及び溶液Ｂ（５０ｍｌの０．１Ｍのトリス／ＨＣｌ（ｐＨ７．５）中に溶解された５０ｍｇのFast Red TR塩）からの１：１混合物を混合した。加水分解性のリパーゼ又はエステラーゼの活性の存在下に赤色のα−ナフチル形のFast Redが形成する（Krebsfaenger, N., et. al., (1998) Enzyme Microb. Technol. 22, 641-646）。【００４１】例６：Ｎ−末端タンパク質配列決定市販のＰＬＥフラクションを分離し、かつＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルからＰＶＤＦメンブレン上にブロットする（Matsudaira, P. (1987) J. Biol. Chem. 262, 10035-10038）。配列決定を気相シークエンサーを用いて実施する。【００４２】例７：エステラーゼ活性の測定エステラーゼ活性を測光的にリン酸ナトリウムバッファー（５０ｍＭ、ｐＨ７．５）中で測定する。ｐ−ニトロフェニルアセテート（ＤＭＳＯ中に溶解して１０ｍＭ）を基質として使用する。遊離されたｐ−ニトロフェノールの量を４１０ｎｍ（ε＝１２．３６×１０３Ｍ-１ｃｍ-１）で室温において測定する。酵素活性を更に異なるｐＨ値で測定した。単位Ｕとして、１マイクロモルのｐ−ニトロフェノールがアッセイ条件下に１分間あたり変換されるエステラーゼ活性を定義する。ＰＬＥの基質特異性をｐＨスタットアッセイを使用して測定した。そのために５％（ｖ／ｖ）のエステル（メチルブチレート、エチルカプリレート、エチルアセテート、トリオレイン、トリカプリリン）及び２％（ｗ／ｖ）のアラビアゴムを含有する３０ｍｌのエマルジョンに添加した。遊離酸を自動的にｐＨスタット（Schott, Mainz, Germany）を用いて０．０１ＮのＮａＯＨで７．５の一定ｐＨ値を保持するために滴定する。Ｕはアッセイ条件下での１分間あたりの１マイクロモルの酸消費に相当する。種々の温度での活性測定を基質としてのエチルカプリレートを用いてｐＨ７．５で実施した。測定された最も高い活性を１００％とした。【００４３】例８：プロリン−β−ナフチルアミダーゼ活性の測定プロリン−β−ナフチルアミダーゼ活性を測光的に基質としてプロリン−β−ナフチルアミド（ＤＭＳＯ中の０．２ｍＭ）の使用下に測定する。該反応を０．１Ｍのトリス／ＨＣｌバッファー（ｐＨ８．０）、５０μｌの基質を含有する混合物中で実施し、かつ組み換えのＰＬＥ調製物又は市販されるＰＬＥ調製物を３７℃において３０分間０．４Ｕ（ｐＮＰＡアッセイによる）で混合する。該反応を１．５ｍｌのカップリング試薬FastGarnet（シグマ）を添加することによって停止させる（Barret, A.J., (1997) Proteinases in Mammalian Cells and Tissues Barret, A.J., ed pp. 181-208, Elsevier, Amsterdam）。β−ナフチルアミンの遊離された量を５２０ｎｍ（ε＝２４．０３×１０３Ｍ-１ｃｍ-１）で測定する。１Ｕのアミダーゼ活性を、１マイクロモルのβ−ナフチルアミンをアッセイ条件下に１分間あたりに遊離する酵素量として定義する。【００４４】本来のリーダー配列とＰＬＥとを含有するベクターｐＣＹＴＥＸ−ＰＬＥ及びｍＰＬＥ核酸配列を含有するｐＣＹＴＥＸ−ＰＬＥ−ｏｍｐＡ−ｍＰＬＥのＰＬＥ発現産物を、エステラーゼ酵素を細胞周辺腔に分泌することを保証すべきであるｏｍｐＡ−リーダー配列と融合する（図１の２）と３）（Beer, H.D., et. al., biochim. Biophys. Acta. 1399, 173-180）はベクター構築物を図示している）。トランスフェクションされた培養は酵素活性の本来の又は組み換えのブタ肝臓エステラーゼを発現できず、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ及びエステラーゼ活性アッセイでの調査は陰性であった。【００４５】Ｐ．パストリスにおける組み換えブタ肝臓エステラーゼの発現のために、図１の４）〜６）に示されるベクターを考慮する。図１の５）に示されるベクター（ｐＰＩＣＺα−ｍＰＬＥ*−１）はＮ−末端分泌シグナルα（α−因子）の他にＣ末端タグｍｙｃ及びＨｉｓ（６×）を有し、これら両者はベクターｐＰＩＣＺαＡに由来する。図１に示される構築物６）（ｐＰＩＣＺα−ｍＰＬＥ*−２）はＣ末端タグを有さない。それというのも読み枠において本願では相応のベクター領域の前に終止コドンを挿入したからである。該ベクター構築物においては、本来のブタ肝臓エステラーゼ中に存在するＣ−末端ＨＡＥＬをＣ末端で欠損している。３番目に製造されたＰ．パストリスのベクター（ｐＰＩＣＺα−ｍＰＬＥ、図１，４））は更にＣ末端に天然のテトラペプチド配列ＨＡＥＬ（ＥＲ）を有する。これらのベクターを直鎖化し、かつそのＰ．パストリスでトランスフェクションした。３０クローンの上清をそれぞれクローニングされた酵素の活性発現に対してｐＮＰＡ−アッセイを用いて調査した。図１の４）のベクターの場合にエステラーゼ活性は認めることはできなかった。それに対して、図１の５）又は６）による本来のＣ末端に対してコーディング領域を欠損するベクターを使用することによって活性に発現できかつ分泌されうることを示すことができた。１つずつのＣ末端タグを有するクローン及び有さないクローンをピックアップし、かつ更に特徴付けした。【００４６】他の調査のために用いられる上清の活性をピックアップされたクローンの９６時間の培養の後にｐＮＰＡアッセイを用いて０．５Ｕ／ｍｌに規定した。遠心分離による酵素の濃縮の後に、１０Ｕ／ｍｌの活性が生じ、これは約５００Ｕ／ｍｇの特異的タンパク質活性に相当する。商Ｖｍａｘ／Ｋｍは本発明による組み換えブタ肝臓エステラーゼの場合に基質としてのｐＮＰＡについて１３９分-１ｍｇ-１である（市販のブタ肝臓エステラーゼ抽出物に対する値を以下の第２表に列記する。【００４７】第２表：【００４８】【表３】【００４９】本発明による組み換えＰＬＥはエチルカプリレート及びトリブチリンを約５０Ｕ／ｍｇの活性で分解し、かつエチルアセテートを約２０Ｕ／ｍｇの活性で分解する。トリオレインは純粋なエステラーゼについて想定されるように分解されない。市販の抽出物（Fluka 又は Roche キラザイム（Chirazyme） E-2)）はそれに対してトリオレインを加水分解し、これはリパーゼ又はＰＬＥイソ酵素によるコンタミネーションを示している。【００５０】図２はＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析（左）及び活性検出（右）を示している。本発明による組み換えブタ肝臓エステラーゼ−サブユニットの分子量（Ｃ末端タグを有する配列番号１、図２中のレーン１及び２、Ｍｗ 分子量標準）はＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析で測定して約６１〜６２ｋＤａである。Fast Redによる活性分析は本発明による組み換えブタ肝臓エステラーゼ（０．４Ｕ）について鋭いバンドを示し、それに対して市販の抽出物は不鮮明であり、これは種々のイソ酵素もしくは別のヒドロラーゼの存在に起因しうる（４ＵのPLE-Fluka、レーン３、４ＵのPLE-キラザイム-E2、レーン４、図２）。【００５１】種々の温度及びｐＨ値におけるエチルカプリレートの加水分解に関する酵素活性の測定は６０℃（ｐＨ７．５）において最適値を示し、その際、本発明によるエステラーゼは７０℃で完全に不活性化され、かつ約ｐＨ８において最適値を有する。【００５２】図３は本発明による組み換えＰＬＥ（ｒＰＬＥ）及び市販のＰＬＥ抽出物（PLE-Fluka, キラザイム E2）の基質カプリル酸−エチルエステル、酢酸−エチルエステル、トリブチリン及びトリオリンに関する相対活性を示している。【００５３】図４は基質プロリン−β−ナフチルアミド（ＰＮＡ、黒いバー）及びメチルブチレート（白いバー）についての酵素の相対活性を示している。【００５４】例９：得られる組み換えブタ肝臓エステラーゼの更なる特徴付け本来のポリアクリルアミドゲル電気泳動１０μｌの市販のＰＬＥ（０．１Ｕ）及び５〜１０μｌのＰ．パストリス培養の濃縮された上清を１０μｌのサンプルバッファーと混合した。これらの試料を７．５％のポリアクリルアミドゲル、４％のスタッキングゲルで分離した。これらのゲルを活性染色し、次いでクーマシーブリリアントブルー染色を行った。【００５５】図５は組み換えＰＬＥ及び市販のＰＬＥの本来のＰＡＧＥの結果を示している。Ｍｗ：分子量標準：（２７２ｋＤａ、ジャックビーンウレアーゼ（Jack Bean Urease）（三量体）；１３２ｋＤａ（二量体）及び６６ｋＤａ（単量体）、ウシ血清アルブミン；４５ｋＤａ、鶏卵アルブミン；レーン１：０．１ＵのFluka PLE；レーン２：０．０７Ｕのキラザイム E-2；レーン３〜６：０．１、０．０４５、０．０９及び０．０４５ＵのｒＰＬＥ（種々の培養からの試料）、単位はｐＮＰＡ試験に基づく。【００５６】等電点焦点化Ｐ．パストリス培養の１〜５μｌの濃縮された上清（０．０２〜０．１Ｕ）を１０μｌのサンプルバッファーと混合した。これらの試料を両性電解質担体（２．４％；ｐＨ３〜１０；Serva）を含有する５％のポリアクリルアミドゲル上で分離した。これらのゲルを活性染色し、トリクロロ酢酸溶液で固定し（１０％（ｗ／ｖ）で１０分、次いで１％（ｗ／ｖ）で一晩）、引き続きクーマシーブリリアントブルー染色を行った。組み換えＰＬＥの等電点はｐＩ：４．７８である。【００５７】例１０：アセテートのエステラーゼ触媒によるラセミ分割エステラーゼ触媒による加水分解のために１０ミリモルのアセテートをリン酸ナトリウムバッファー（ｐＨ７．５、５０ミリモル）中に溶解させ、かつ１ｍｌの反応容器に添加し、かつラセミ分割を０．５ユニット（ｐＮＰＡ試験に対する）のエステラーゼの添加によって開始させた。反応の中断のために該混合物をメチレンクロリドで抽出し、かつ有機相を無水硫酸ナトリウム上で乾燥させた。エナンチオマー純度及び変換率の測定をガスクロマトグラフィー（カラム：ヘプタキス（２，６−Ｏ−メチル−３−Ｏ−ペンチル）−β−シクロデキストリン、キャリヤーガス：Ｈ２、火炎イオン化検出器）により行った。【００５８】以下のアセテート基質を酵素的に変換させた：１−フェニル−１−エチルアセテート１、１−フェニル−２−プロピルアセテート２、１−フェニル−２−ブチルアセテート３、１−フェニル−１−プロピルアセテート４、１−フェニル−３−プロピルアセテート５、１−フェニル−２−ペンチルアセテート６【００５９】【化１】【００６０】ブタ肝臓エステラーゼによる動力学的なラセミ分割の生成物（アルコール）を相応して１ａ〜６ａで明示する。【００６１】滞留時間：１（１００℃等温）：（Ｓ）−１、３．７分；（Ｒ）−１、５．８分；（Ｒ）−１ａ、６．７分；（Ｓ）−１ａ、７．６分；２（７５℃等温）：（Ｓ）−２、２６．５分；（Ｒ）−２、４２．３分；（Ｓ）−２ａ、３２．６分；（Ｒ）−２ａ、３４．２分；３（９０℃等温）：（Ｓ）−３、１７．６分；（Ｒ）−３、２０．２分；（Ｓ）−３ａ、２４．８分；（Ｒ）−３ａ、２７．４分；４（８０℃等温）：（Ｓ）−４、１３．９分；（Ｒ）−４、２０．９分；（Ｓ）−４ａ、５１．５分；（Ｒ）−４ａ、４４．６分；５（１００℃等温）：（Ｓ）−５、１５．６分；（Ｒ）−５、２８．７分；（Ｓ）−５ａ、１９．１分；（Ｒ）−５ａ、２０．５分；６（９０℃／３０′／／５℃／分／／１１０℃）：（Ｓ）−６：２９．１分及び（Ｒ）−６、３０．４分；（Ｓ）−６ａ、３７．３分及び（Ｒ）−６ａ、３８．３分。【００６２】絶対配置の測定絶対配置は１については市販の（Ｒ）−１との比較に基づくものである。２、３及び４の場合には関連として文献から公知のリパーゼAmano PSの（Ｒ）−選択性を用いた（Gutman, A.L., et. al., Tetrahedron: Assymmetry(1993)4, 839-844）。絶対配置は５については市販のリパーゼ：リパーゼAmano AKの文献から公知の選択性に基づき、１−フェニル−３−ブタノール（５ａ）についてはＲ−選択性（K. Burgess, LD Jenning, J. Am. Chem. Soc 1991, 113, 6129）に基づくものである。６についての絶対配置は光学的に純粋なアルコールの旋光度の測定及び文献データ（U. P. Dhokte, P. M. Pathare, V. K. Mahindroo, H. C. Brown, J. Org. Chem. 1998, 63, 8276-8283）との比較に基づくものである。【００６３】エナンチオ選択性ＥはChen, C. S. et al., J. Am. Chem. Soc. 104 (1982), 7294に従って計算できる。【００６４】結果を第３表から第８表にまとめる。【００６５】第３表：（Ｒ，Ｓ）−１−フェニル−１−エチルアセテート１の動力学的ラセミ分割における種々のブタ肝臓エステラーゼのエナンチオ選択性【００６６】【表４】【００６７】第４表：（Ｒ，Ｓ）−１−フェニル−２−プロピルアセテート２の動力学的ラセミ分割における種々のブタ肝臓エステラーゼのエナンチオ選択性【００６８】【表５】【００６９】第５表：（Ｒ，Ｓ）−１−フェニル−２−ブチルアセテート３の動力学的ラセミ分割における種々のブタ肝臓エステラーゼのエナンチオ選択性【００７０】【表６】【００７１】第６表：（Ｒ，Ｓ）−１−フェニル−１−プロピルアセテート４の動力学的ラセミ分割における種々のブタ肝臓エステラーゼのエナンチオ選択性【００７２】【表７】【００７３】第７表：（Ｒ，Ｓ）−４−フェニル−２−ブチルアセテート５の動力学的ラセミ分割における種々のブタ肝臓エステラーゼのエナンチオ選択性【００７４】【表８】【００７５】第８表：（Ｒ，Ｓ）−１−フェニル−２−ペンチルアセテート６の動力学的ラセミ分割における種々のブタ肝臓エステラーゼのエナンチオ選択性【００７６】【表９】【００７７】該実施例は、使用される組み換えブタ肝臓エステラーゼが酵素抽出物に対して高いエナンチオ選択性を示すことを示す。このことは、特に２位又は３位でエステル化されているフェニル−アルキル−アセテートの場合に明確である。【００７８】例１１：酵素基質の製造基質は化学的な標準的方法に従って製造できる。以下に基質（２）〜（６）及び前駆体（６ａ）の合成を記載する。全ての別の基質は商業的に得られる。【００７９】４０ミリモルの酢酸塩化物を２０ｍｌのピリジン中に４℃で溶解させる。引き続き激しい撹拌下に４０ミリモルのアルコール（１−フェニル−２−プロパノール２ａ、１−フェニル−２−ブタノール３ａ、１−フェニル−１−プロパノール４ａ、１−フェニル−３−プロパノール５ａ、１−フェニル−２−ペンタノール６ａ）を滴加し、２０時間室温で混合する。次いで該反応混合物をジエチルエーテルと混合し、かつ飽和炭酸水素ナトリウム溶液で２回洗浄する。有機相を無水硫酸ナトリウム上で乾燥させ、かつ溶剤を回転蒸発器上で除去する。該アセテートを引き続きシリカゲルクロマトグラフィー（ヘキサン：酢酸エステル、５：１）によって９１％（２）、７４％（３）、４３％（４）もしくは８７％（５）の収率で単離する。アセテート（６）をカラムクロマトグラフィーによってヘキサン：酢酸エステル３：１で２５％（６）の収率で単離する。【００８０】（Ｒ，Ｓ）−１−フェニル−２−ペンタノール（６ａ）の合成８０ミリモルのプロピルマグネシウムクロリドからのグリニャール試薬溶液（１６ｍｌのエーテル性溶液）において撹拌下に１００ミリモルのフェニルアセテートアルデヒドを同容量の無水エーテル中に滴加する。添加が完了した後に、反応混合物を２時間撹拌下に水浴上で加熱し、かつ次いで冷却する。細かく砕いた氷を添加し、かつ引き続き生成する沈殿物が溶解するほど多量の半濃縮された塩酸を添加する。エーテル層を分離し、かつ水相を更にエーテルで２回抽出する。精製された抽出物を飽和亜硫酸水素ナトリウム溶液、炭酸水素塩溶液及び少量の水で洗浄する。無水の硫酸ナトリウム上での乾燥の後にエーテルを留去し、かつ残留物を蒸留によって分画する。生成物は４８％の収率で単離された。【図面の簡単な説明】【図１】 図１は１）ｐＵＣ１９−ｐＰＬＥ、２）ｐＣＹＴＥＸ−ＰＬＥ、３）ｐＣＹＴＥＸ−ｏｍｐＡ−ｍＰＬＥ、４）ｐＰＩＣＺα−ｍＰＬＥ、５）ｐＰＩＣＺα−ｍＰＬＥ*−１、６）ｐＰＩＣＺα−ｍＰＬＥ*−２の個々のベクターを示している。【図２】 図２は本発明による組み換えブタ肝臓エステラーゼ−サブユニット（レーン１及び２）、４ＵのPLE-Fluka（レーン３）、４ＵのPLE-キラザイム-E2（レーン４）のＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析（左）及びFast Redによる活性検出（右）を示している。【図３】 図３は本発明による組み換えＰＬＥ（ｒＰＬＥ）及び市販のＰＬＥ抽出物（PLE-Fluka, キラザイム E2）の基質カプリル酸−エチルエステル、酢酸−エチルエステル、トリブチリン及びトリオリンに関する相対活性を示している。【図４】 図４は基質プロリン−β−ナフチルアミド（ＰＮＡ、黒いバー）及びメチルブチレート（白いバー）についての酵素の相対活性を示している。【図５】 図５はｐＮＰＡ試験に基づく単位による、０．１ＵのFluka PLE（レーン１）；０．０７Ｕのキラザイム E-2（レーン２）；０．１、０．０４５、０．０９及び０．０４５ＵのｒＰＬＥ（種々の培養からの試料）（レーン３〜６）を用いた組み換えＰＬＥ及び市販のＰＬＥの本来のＰＡＧＥの結果を示している。Ｍｗ：分子量標準：（２７２ｋＤａ、ジャックマメウレアーゼ（三量体）；１３２ｋＤａ（二量体）及び６６ｋＤａ（単量体）、ウシ血清アルブミン；４５ｋＤａ、鶏卵アルブミン。【配列表】 ブタ肝臓エステラーゼの組み換えサブユニットにおいて、該組み換えサブユニットがＣ末端のＨＡＥＬ配列が存在しないように４〜５０個のアミノ酸配列を欠損する、のアミノ酸配列で示されるタンパク質であることを特徴とするブタ肝臓エステラーゼの組み換えサブユニット。 前記サブユニットがＣ末端において４〜１０個のアミノ酸を欠損する、請求項１に記載のブタ肝臓エステラーゼの組み換えサブユニット。 Ｃ末端において天然に存在するブタ肝臓エステラーゼ中に存在するヒスチジン、アラニン、グルタミン酸及びロイシンの配列（ＨＡＥＬ）を欠損する、請求項１に記載のブタ肝臓エステラーゼの組み換えサブユニット。 配列番号１をコードするポリヌクレオチド配列に対して相補的なポリヌクレオチド配列にストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチド配列によってコードされた、エステラーゼ活性を有するブタ肝臓エステラーゼの組み換えサブユニットにおいて、前記ストリンジェントな条件が、０．１×ＳＳＣ及び０．１％のＳＤＳ中における６０℃でのハイブリダイゼーションを含み、かつ前記エステラーゼがＣ末端において４〜５０個のアミノ酸を欠損していることを特徴とするブタ肝臓エステラーゼの組み換えサブユニット。 前記サブユニットがＣ末端において４〜１０個のアミノ酸を欠損する、請求項４に記載のブタ肝臓エステラーゼの組み換えサブユニット。 Ｃ末端において天然に存在するブタ肝臓エステラーゼ中に存在するヒスチジン、アラニン、グルタミン酸及びロイシンの配列（ＨＡＥＬ）を欠損する、請求項４に記載のブタ肝臓エステラーゼの組み換えサブユニット。 前記のサブユニットがＮ−末端において１〜５０個のアミノ酸を欠損する、請求項１又は４に記載のブタ肝臓エステラーゼの組み換えサブユニット。 Ｎ−末端に分泌シグナルドメインが、かつ／又はＣ−末端にはタグドメインが融合されている、請求項１又は４に記載のブタ肝臓エステラーゼの組み換えサブユニット。 該サブユニットが翻訳後修飾を有する、請求項１又は４に記載のブタ肝臓エステラーゼの組み換えサブユニット。 請求項１又は４に記載のブタ肝臓エステラーゼ−サブユニットをコードするＤＮＡからなる遺伝子又は、該ＤＮＡとストリンジェントな条件下にハイブリダイズする核酸配列又は部分配列に相補性であるＤＮＡからなる遺伝子。 コーディング領域の３′−末端に終止コドンを有する、請求項１０に記載のブタ肝臓エステラーゼのサブユニットをコードするＤＮＡ。 請求項１０又は１１に記載の核酸配列を有するＤＮＡ断片を有するベクター。 請求項１から９までのいずれか１項に記載のブタ肝臓エステラーゼ−サブユニットを有する酵素的に活性な組み換えブタ肝臓エステラーゼ。 該サブユニットが翻訳後修飾を有する、請求項１３に記載の酵素的に活性な組み換えブタ肝臓エステラーゼ。 発現ベクターの製造のための、請求項１０又は１１に記載のＤＮＡの使用。 トランスフェクションされた細胞培養の製造のための、請求項１２に記載のベクターの使用。 請求項１２に記載のベクターで形質転換されている細胞を含む発現系。 該細胞が単細胞性の原核生物又は真核生物である、請求項１７に記載の発現系。 細胞が、アスペルギルス種、シュワニオマイセス種、クルイベロマイセス種、ヤロイア種、アルクスラ種、サッカロマイセス種、ハンゼヌラ種、ピシア種又はＥ．コリ細胞である、請求項１７又は１８に記載の発現系。 突然変異の組み換えブタ肝臓エステラーゼ−サブユニット及び機能的酵素の製造のための、請求項１０又は１１に記載のＤＮＡ又は請求項１２に記載のベクター又は請求項１７から１９までのいずれか１項に記載の発現系の使用。 酵素的に活性なブタ肝臓エステラーゼの定方向進化のための、請求項１０又は１１に記載のＤＮＡ又は請求項１２に記載のベクター又は請求項１７から１９までのいずれか１項に記載の発現系又は請求項１から９までのいずれか１項に記載のブタ肝臓エステラーゼ−サブユニットの使用。 請求項１２に記載のベクターを有する細胞培養による、請求項１から９までのいずれか１項に記載のブタ肝臓エステラーゼ−サブユニットの発現。 請求項１２に記載のベクターを有する細胞培養による、請求項１３又は１４に記載の酵素的に活性なブタ肝臓エステラーゼの発現方法。 用いられる細胞培養が単細胞性の原核生物又は真核生物である、請求項１３又は１４に記載の酵素的に活性なブタ肝臓エステラーゼの発現方法。 有機合成における触媒としての、請求項１３又は１４に記載のブタ肝臓エステラーゼの使用。 カルボン酸エステルのエステラーゼに触媒されるラセミ分割のための、カルボン酸のラセミ分割のための、又はプロ立体異性形成性の化合物の変換における、請求項１３又は１４に記載のブタ肝臓エステラーゼの使用。 触媒として、請求項１３又は１４に記載の組み換えブタ肝臓エステラーゼを使用する、エステラーゼに触媒されるラセミ分割方法。