生命科学関連特許情報
| タイトル： | 特許公報(B2)_Ｄ−ソルビトールの測定方法およびその測定用キット |
| 出願番号： | 1995135787 |
| 年次： | 2005 |
| IPC分類： | 7,C12Q1/26,C12Q1/28,C12Q1/32,C12Q1/54 |
特許情報キャッシュ
増田 稔 藪内 正彦 小村 啓悟 岡本 英里 中川 泰三 JP 3710166 特許公報(B2) 20050819 1995135787 19950509 Ｄ−ソルビトールの測定方法およびその測定用キット 日本化薬株式会社 000004086 池田食研株式会社 000210067 岡田 数彦 100097928 増田 稔 藪内 正彦 小村 啓悟 岡本 英里 中川 泰三 20051026 7 C12Q1/26 C12Q1/28 C12Q1/32 C12Q1/54 JP C12Q1/26 C12Q1/28 C12Q1/32 C12Q1/54 7 C12Q 1/00-70 EUROPAT(QUESTEL) JICSTファイル(JOIS) BIOSIS/MEDLINE/WPIDS(STN) 特開平０８−１６９７６４（ＪＰ，Ａ） 特開平０８−０８９２４２（ＪＰ，Ａ） 5 1996298996 19961119 11 20010914 阪野 誠司 【０００１】【産業上の利用分野】本発明は、簡便で特異的なＤ−ソルビトールの測定方法およびその測定用キットに関する。【０００２】【従来の技術】従来、Ｄ−ソルビトールの測定方法には、ソルビトール脱水素酵素(EC 1.1.1.14) を使用し、Ｄ−ソルビトールの脱水素反応によってＤ−フルクトースを生成させ、このＤ−フルクトースの６位をヘキソキナーゼ(EC 2.7.1.1)でリン酸化し、生成したＤ−フルクトース−６−リン酸をグルコース−６−リン酸イソメラーゼ(EC 5.3.1.9)でＤ−グルコース−６−リン酸に異性化し、このＤ−グルコース−６−リン酸のグルコース−６−リン酸脱水素酵素(EC 1.1.1.49) による脱水素反応によって生成した補酵素ＮＡＤＰの還元体であるＮＡＤＰＨの吸光度を測定する方法（ベーリンガー社のキット) が知られている。【０００３】また、ソルビトール脱水素酵素(EC 1.1.1.14) を使用し、Ｄ−ソルビトールの脱水素反によって生成した補酵素ＮＡＤの還元体であるＮＡＤＨの蛍光強度を測定する方法(Clin. Chem.34 2327 (1988)、特開平６−１０９７２６) 、ソルビトール脱水素酵素(EC 1.1.1.14) を使用し、この酵素の補酵素であるＮＡＤＨとチオ−ＮＡＤの共存下にＤ−ソルビトールの脱水素反応と逆反応のＤ−フルクトースの還元反応を行い、この酵素サイクリング反応によって生成したチオ−ＮＡＤの還元体であるチオ−ＮＡＤＨの吸光度を測定する方法（特開平４−３４９８９７）等が知られている。【０００４】更に、ソルビトール脱水素酵素（特開昭５６−２９９９４）を使用し、電子伝達体の１−メトキシ−５−フェナゾリウムメチルサルフェイト（１−ＭＰＭＳ）と還元発色性色素のテトラゾリウム塩の存在下にＤ−ソルビトールの脱水素反応を行い、この反応によって生成したホルマザン色素の吸光度を測定する方法（特開平６−１８９７９０）が知られている。【０００５】また、ソルビトール脱水素酵素（特開昭５６−２９９９４）を使用し、１−ＭＰＭＳの存在下にＤ−ソルビトールの脱水素反応を行い、この反応によって生成した過酸化水素を、ペルオキシダーゼを使用する各種検出法で測定する方法（特開平６−２０９７９３）、ソルビトール酸化酵素（特開平６−１６９７６４）を使用し、酸素の存在下にＤ−ソルビトールを酸化し、この反応によって生成した過酸化水素を、ペルオキシダーゼを使用する各種検出法で、測定する方法（特開平６−１６９７６４）等が知られてる。【０００６】しかしながら、Ｄ−ソルビトールの２位を酸化してＤ−フルクトースを生成させるソルビトール脱水素酵素(EC 1.1.1.14）やＤ−ソルビトールの１位を酸化してＤ−グルコースを生成させるソルビトール酸化酵素（特開平６−１６９７６４）を使用する何れの測定法においても、それぞれの酵素の基質特異性が悪いことから、Ｄ−ソルビトールの測定値の信頼性には疑問がある。従って、これらの測定法の対象とする検体としてはＤ−ソルビトールの含有量が多く且つ干渉する成分の含有量が少ない食品や赤血球などに限定されている。【０００７】一方、酢酸菌の細胞膜由来であり、Ｄ−ソルビトールの５位を酸化してＬ−ソルボースを生成させるソルビトール脱水素酵素（特開昭５６−２９９９４）を使用するＤ−ソルビトールの測定法においては、Ｄ−ソルビトールに対する特異性が高いとは言え、熱安定性に問題があり、診断薬を開発する上で、実用的ではなかった。この様に、ソルビトールの含有量が少なく、測定に干渉する基質成分が相対的に多い血清や血漿について、酵素法で正確に測定できたとの報告は未だにない。【０００８】【発明が解決しようとする課題】本発明は、上記実情に鑑みなされたものであり、本発明の目的は、複雑な前処理操作を必要とせず、汎用型の自動生化学測定装置にも対応可能であり、簡便で特異性の高いＤ−ソルビトールの測定法の提供に存する。また、本発明の他の目的は、腎不全、糖尿病などの診断に利用できるＤ−ソルビトールの測定用キットの提供に存する。【０００９】【課題を解決するための手段】本発明者らは、前記の問題点を解決すべく鋭意研究を重ねた結果、Ｄ−ソルビトールを酸化してＤ−グルコースを生成する酸化酵素が、効率よくＤ−ソルビトールを酸化して定量的にＤ−グルコースを生成すること、この反応によって生成したＤ−グルコースをＤ−グルコースの検出系と組み合わせ、更に特定の前処理と組み合わせることにより、Ｄ−ソルビトールに対して極めて特異性の高い測定系になることを見いだし、本発明に至ったものである。【００１０】すなわち、本発明の第１の要旨は、Ｄ−ソルビトールとＤ−グルコースを含有する検体に、Ｄ−グルコースを消去する前処理を施した後、Ｄ−ソルビトールを酸化してＤ−グルコースを生成させる酸化酵素を作用させ、該酵素反応によるＤ−ソルビトールの酸化で生成したＤ−グルコースを検出することにより、検体中のＤ−ソルビトールを特異的に測定する方法に関する。【００１１】本発明の第２の要旨は、Ｄ−ソルビトールを酸化してＤ−グルコースを生成する酸化酵素がソルビトールオキシダーゼ、キシリトールオキシダーゼ又はマンニトールオキシダーゼであるＤ−ソルビトールの測定方法に関する。【００１２】本発明の第３の要旨は、Ｄ−グルコースを消去する前処理の方法およびＤ−グルコースを検出する方法がグルコースオキシダーゼ、ピラノースオキシダーゼ、グルコースデヒドロゲナーゼ又はグルコース−６−ホスフェートデヒドロゲナーゼを使用するＤ−ソルビトールの測定方法に関する。【００１３】本発明の第４の要旨は、Ｄ−グルコースを消去する前処理剤、Ｄ−ソルビトールを酸化してＤ−グルコースを生成させる酸化酵素およびＤ−グルコース検出試薬を含有するＤ−ソルビトール測定用キットに関する。【００１４】更に、本発明の第５の要旨は、Ｄ−グルコース消去用前処理とＤ−ソルビトール検出試薬に同一酵素を使用するＤ−ソルビトール測定用キットに関にする。【００１５】以下、本発明を詳細に説明する。本発明で、Ｄ−ソルビトール測定の対象となる検体とは、Ｄ−ソルビトールの測定を必要とするものであれば特に制限されない。例えば、Ｄ−ソルビトールとＤ−グルコースを含有する生体試料、食品、それらの抽出液や各種の処理液などが挙げられる。また、Ｄ−ソルビトールは、腎不全や糖尿病の診断指標として期待されており、生体試料としては、赤血球、血漿、血清、組織の抽出液、尿などが有用である。【００１６】本発明で使用されるＤ−ソルビトールを酸化してＤ−グルコースを生成させる酸化酵素としては、Ｄ−ソルビトールの１位を酸化してＤ−グルコースを生成させる能力のある酵素であれば特に制限されない。【００１７】アルコール基を酸化する酵素は、電子受容体の種類により、(1) ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド（ＮＡＤ+ ）又はニコチンアミドアデニンジヌクレオチドホスフェート（ＮＡＤＰ+ ）を電子受容体とするもの、(2) シトクロムを電子受容体とするもの、(3) 酸素を電子受容体とするもの、(4) その他に分類（酵素ハンドブック：丸尾文治、田宮信雄監修；朝倉書店）されているが、Ｄ−ソルビトールからＤ−グルコースを生成させる能力があれば、何れのものであってもよい。【００１８】例えば、酸素を電子受容体とする酸化酵素としては、キサントモナスに属する微生物由来のソルビトールオキシダーゼ（特開平６−１６９７６４）、ストレプトミセスに属する微生物由来のキシリトールオキシダーゼ（例えば、工業技術院生命工学工業技研究所寄託番号ＦＥＲＭ Ｐ−１４３３９由来のキシリトールオキシダーゼ）、蝸牛由来のマンニトールオキシダーゼ(Int. J. Biochem. 18 337-344(1986)) 等が挙げられる。【００１９】下記に本発明で使用できるストレプトミセスに属する微生物由来のキシリトールオキシダーゼ（ＦＥＲＭ Ｐ−１４３３９由来のキシリトールオキシダーゼ）の一例を示す。【００２０】【表１】【００２１】本発明で使用されるＤ−グルコースを検出する方法としては、実質的にＤ−グルコースに特異性が高い検出方法であれば何れの方法であってもよく、公知の化学的な方法から生化学的な方法まで幅広く包含し、特に制限されるものではない。特に好ましくは、Ｄ−グルコースに対して特異性に優れ、汎用型の自動生化学測定装置に適用可能な、酵素を使用するＤ−グルコースの検出法がある。【００２２】この酵素を使用するＤ−グルコースの検出法としては、血糖測定用試薬として販売されている既存の方法がそのまま利用できる。具体例としては、▲１▼グルコースオキシダーゼ（ＧＯＤ：EC 1.1.3.4）を使用してＤ−グルコースを酸化し、その反応で生成した過酸化水素を比色法で検出する方法、▲２▼ピラノースオキシダーゼ（ＰＲＯＤ：EC 1.1.3.10)を使用してＤ−グルコースを酸化し、その反応で生成した過酸化水素を比色法で検出する方法などが知られている。【００２３】また、▲３▼グルコースデヒドロゲナーゼ（ＧＤＨ：EC 1.1.1.47 ）を使用し、補酵素ＮＡＤ+ 又はＮＡＤＰ+ 〔ＮＡＤ（Ｐ）と略す〕の存在下にＤ−グルコースを脱水素反応し、その反応で生成した補酵素の還元体であるＮＡＤＨ又はＮＡＤＰＨ〔ＮＡＤ（Ｐ）Ｈと略す〕の吸光度を比色法で検出する方法などが知られている。【００２４】更に、▲４▼アデノシントリホスフェ−ト（ＡＴＰ）の存在下、ヘキソキナーゼ（ＨＫ：EC 2.7.1.1）又はグルコキナーゼ（ＧＫ：EC 2.7.1.2）でＤ−グルコースをリン酸化し、生成したＤ−グルコース−６−リン酸を補酵素ＮＡＤＰ+ の存在下にグルコース−６−ホスフェートデヒドロゲナーゼ（Ｇ６ＰＤＨ：EC 1.1.1.49)を使用して脱水素反応し、その反応により生成した補酵素の還元体であるＮＡＤＰＨの吸光度を比色法で検出する方法などが知られている。【００２５】さらに詳しくは、酵素を使用してＤ−グルコースを検出する方法においては、前記の酵素反応または酵素反応系を使用して、電子受容体をＤ−グルコースの存在量を検出し易い中間物質、例えば、過酸化水素や補酵素の還元体へ酵素的に変換し、最終的には、これらの中間物質を安定かつ高感度に検出することによって実施され得る。この中間物質が過酸化水素の場合は、過酸化水素の検出法として知られている比色法、蛍光法、化学発光法、電極法などが使用できる。【００２６】比色法では、ペルオキシダーゼ等の触媒により、過酸化水素でペルオキシダーゼの基質を酸化発色させ、発色濃度を分光光度計で測定する。ペルオキシダーゼの基質としては、０−フェニレンジアミン、５−アミノサリチル酸、３，３’，５，５’−テトラメチルベンジジン等の芳香属アミン系の物質、トリンダー系試薬と称するフェノール、３−ヒドロキシ−２，４，６−トリヨード安息香酸などのフェノール系の物質やＮ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−ｍ−トルイジン、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−３，５−ジメトキシアニリン等のアニリン系の物質と４−アミノアンチピリンの組み合わせ等が利用できる。【００２７】更に、２，２’−アジノビス（３−エチルベンゾチアゾリン−６−スルホン酸）、１０（メチルアミノカルボニル）−３，７−ビス（ジメチルアミノ）−フェノチアジン、１０（カルボキシメチルアミノカルボニル）−３，７−ビス（ジメチルアミノ）−フェノチアジン、ビス〔３−ビス（４−クロロフェニル）メチル−４−ジメチル−アミノフェニル〕アミン等の過酸化水素検出用の高感度基質とされる物質などが利用できる。【００２８】蛍光法では、ペルオキシダーゼ等の触媒により、過酸化水素で基質を酸化して蛍光物質を生成させ、その蛍光強度を蛍光光度計で測定する。ペルオキシダーゼの基質としては、ｐ−ヒドロキシフェニル酢酸、ｐ−ヒドロキシフェニルプロピオン酸などが利用できる。化学発光法では、ペルオキシダーゼ等の触媒により、過酸化水素で基質を酸化して発光させ、その発光強度をルミノメーターで測定する。化学発光する基質としては、ルミノール化合物、ルシゲニン、アリルシュウ酸エステル類の化合物などが利用できる。【００２９】中間物質が補酵素ＮＡＤ+ 、ＮＡＤＰ+ 、チオ−ＮＡＤ+ 、チオ−ＮＡＤＰ+ 等の還元体であるＮＡＤＨ、ＮＡＤＰＨ、チオ−ＮＡＤＨ、チオ−ＮＡＤＰＨ等の場合は、これら補酵素の還元体の検出法として公知の方法が利用できる。例えば、▲１▼補酵素の還元体の吸光度や蛍光強度を、直接測定する方法、▲２▼酵素のジアホラーゼ又は電子伝達体の１−ＭＰＭＳ等を使用し、補酵素の還元体であるＮＡＤＨ、ＮＡＤＰＨ、チオ−ＮＡＤＨ、チオ−ＮＡＤＰＨ等と還元発色性色素の各種テトラゾリウム塩類とを反応させ、この反応によって生成するホルマザン色素の吸光度を測定する方法がある。【００３０】また、▲３▼脱水素酵素を使用し、補酵素としてＮＡＤ（Ｐ）Ｈとチオ−ＮＡＤ（Ｐ）の共存下、この酵素のチオ−ＮＡＤ（Ｐ）による脱水素反応とＮＡＤ（Ｐ）Ｈによるこの逆反応の還元反応をサイクルさせ、この酵素の基質を介する酵素サイクリング反応によって生成するチオ−ＮＡＤ（Ｐ）の還元体であるチオ−ＮＡＤ（Ｐ）Ｈの吸光度を測定する方法などがある。【００３１】更に、▲４▼補酵素の還元体の酸化酵素または電子伝達体の１−ＭＰＭＳ等によって補酵素の還元体であるＮＡＤＨ、ＮＡＤＰＨ、チオ−ＮＡＤＨ、チオ−ＮＡＤＰＨ等を酸化し、この時発生する過酸化水素を、前記の過酸化水素の検出法で検出する方法がある。【００３２】本発明で使用されるＤ−グルコースを消去する前処理とは、Ｄ−ソルビトールの検出を妨害する内因性のＤ−グルコースを消去する方法である。Ｄ−グルコースの消去法としては、前記のＤ−ソルビトールの検出を妨害しない方法であれば何でもよく、Ｄ−グルコースを除去する方法と、Ｄ−グルコースを別物質に変換する方法がある。【００３３】Ｄ−グルコースを除去する方法としては、物理的に樹脂に吸着させ除去する方法がある。すなわち、強塩基性樹脂が、アルドースやケトースを吸着する性質を利用するものであり、強塩基性樹脂を充填したカラムに検体を通し、Ｄ−グルコースを吸着し、吸着されずに溶出してきたＤ−ソルビトールを検出する方法（特開平３−４７０９４）である。【００３４】Ｄ−グルコースを別物質に変換する方法としては、化学的または生化学的な方法がある。汎用型の自動生化学測定装置で測定する場合、酵素を使用する生化学的な変換法が好ましい。生化学的な変換法としては、前記の酵素を使用するＤ−グルコースの検出法において述べたＤ−グルコースの変換法がそのまま利用できる。【００３５】具体的には、▲１▼ＧＯＤ（EC 1.1.3.4）を使用してＤ−グルコースを酸化する方法、▲２▼ＰＲＯＤ（EC 1.1.3.10)を使用してＤ−グルコースを酸化する方法、▲３▼ＧＤＨ（EC 1.1.1.47 ）を使用して補酵素ＮＡＤ（Ｐ）の存在下にＤ−グルコースを酸化する方法、▲４▼ＨＫ（EC 2.7.1.1）又はＧＫ（EC 2.7.1.2）でＤ−グルコースをリン酸化し、生成したＤ−グルコース−６−リン酸を、Ｇ６ＰＤＨ（EC 1.1.1.49)を使用して、補酵素ＮＡＤＰ+ の存在下に酸化する方法などがある。【００３６】なお、前処理用の酵素とＤ−グルコース検出用の酵素とを、必ずしも同じにする必要はないが、前処理法と共通にするほうが簡便であり好ましい。例えば、後記のＡ法に記載の様に、Ｇ６ＰＤＨを使用するＤ−グルコース測定系で前処理しておき、キシリトールオキシダーゼ添加後の吸光度増加を測定したり、または、後記のＢ法に記載の様に、ＧＯＤを使用して前処理しておき、キシリトールオキシダーゼと合わせて過酸化水素の検出系を整え、キシリトールオキシダーゼ添加後の吸光度増加だけを測定するのが合理的である。【００３７】本発明で使用される酵素、補酵素、試薬などは、臨床検査に使用できる程度に精製されたものが好ましい。また、反応は、公知の方法に準じて行うことが出来る。これらの酵素や試薬などの使用量は、反応温度、反応時間、反応 pH 、レート法またはエンドポイント法などの反応速度論上の設定、使用する酵素の性質や試薬の純度などにより左右されるが、一例を挙げると概ね以下に示す量である。【００３８】キシリトールオキシダーゼは通常0.01〜50U/mL、好ましくは 0.1〜20U/mLである。Ｇ６ＰＤＨは通常 0.5〜500U/mL 、好ましくは 2〜100U/mL である。ＧＯＤは通常 0.1〜10000U/mL 、好ましくは10〜5000U/mLである。その他の酵素、試薬などを使用する場合も、公知の方法に準じて適宜使用できる。反応温度は通常 5〜50℃、好ましくは20〜40℃であり、反応時間は通常 1〜60分、好ましくは 1〜10分である。【００３９】反応 pH は使用する酵素によって異なり、各酵素の至適 pH の近辺が望ましいが、複数の酵素を同時に作用させるような場合には、必ずしも個々の酵素の至適 pH にこだわる必要はなく、酵素の反応率、基質親和性、特異性、安定性、経済性などの点で制約の大きい酵素に有利なように、各酵素の活性が消失しない pH 範囲から選択すればよい。【００４０】酵素反応は、速度論上からはレート法とエンドポイント法の２つに分類されている。本質的にはこれらの何れであってもよいが、検体の種類、干渉成分の存在、測定対象とする基質の濃度、反応時間、要求される精度などの条件により、適宜選択される。【００４１】Ｄ−ソルビトールの測定に必要な前記の各成分を含む試薬溶液を、常法にしたがって調製し、Ｄ−ソルビトールの測定用キットとして診断薬に組み立てることが出来る。各成分は、前記の使用量に応じた割合となるように組み合わせて、キットとすることが出来る。【００４２】【実施例】以下、本発明を実施例により具体的に説明するが、本発明はその要旨を超えない限り、以下の実施例に限定されるものではない。【００４３】参考例１ Ａ法（ＧＫとＧ６ＰＤＨによる方法） 200mg/L 濃度のＤ−ソルビトール標準液を蒸留水で倍々希釈し、標準液の希釈系列を作製した。この標準液の希釈系列を検体とし、それぞれ 50 μL の各検体に、5U/mL のＧＫ、10U/mLのＧ６ＰＤＨ、10mmol/LのＡＴＰ、10mmol/LのＮＡＤＰ+ 、20mmol/LのＭｇＣｌ2 を含む 100mmol/Lトリス塩酸緩衝液(pH 7.5) 950μL を添加し、３７℃で１０分間インキュベートして恒温化した。【００４４】次に、２U/mL濃度のキシリトールオキシダーゼ（ストレプトミセス属の微生物由来）を 85 μL 添加して攪拌後、３７℃で１０分間反応し、キシリトールオキシダーゼ添加後の３４０ nm における吸光度の増加を分光光度計で測定した。検量線の測定結果を図１に示す。検量線は１から100mg/L まで直線となり、Ｄ−ソルビトールの測定が可能であることが示された。【００４５】実施例１ （Ａ法による血清検体の測定）健常者の血清Ｍと、この血清ＭにＤ−ソルビトール 50mg/L を添加したものを検体として、Ａ法（参考例１）に従って操作し、図１の検量線から検体中のＤ−ソルビトール濃度を求めた。その結果を表２に示す。Ｄ−ソルビトールは、健常者の血清には極わずかしか含まれていないことが知られている。また、腎不全患者を想定したＤ−ソルビトール添加血清での測定値は、ほぼ理論値に近い回収率であった。このことから、Ａ法は信頼できるＤ−ソルビトールの測定法であることが示された。【００４６】実施例２ （Ａ法の汎用型生化学分析装置への適用）Ｄ−ソルビトールの標準液と実施例１と同一の血清Ｍを検体とし、これら検体のそれぞれ10μL に、5U/mL のＧＫ、10U/mLのＧ６ＰＤＨ、10mmol/LのＡＴＰ、10mmol/LのＮＡＤＰ+ 、20mmol/LのＭｇＣｌ2 を含む 100mmol/Lトリス塩酸緩衝液(pH 7.5)からなる第１試薬（Ｒ−１）340 μL を添加して３７℃で５分間インキュベートした。【００４７】その後、４U/mL濃度のキシリトールオキシダーゼ（ストレプトミセス属の微生物由来）を含む 100mmol/Lトリス塩酸緩衝液(pH 7.5)からなる第２試薬（Ｒ−２）50μL を添加して３７℃で５分間反応し、第２試薬添加後の主波長 340nm（副波長 405nm）における吸光度の増加を、日立７１５０形自動分析装置で測定した。測定結果を表２に示す。実施例１とほぼ同様な結果が得られた。【００４８】【表２】【００４９】参考例２ Ｂ法（ＧＯＤを使用する方法）40mg/L濃度のＤ−ソルビトール標準液を蒸留水で倍々希釈し、標準液の希釈系列を作製した。この標準液の希釈系列を検体とし、それぞれ 25 μL の各検体に、400U/mL のＧＯＤ、400U/mL のカタラーゼ、3U/mL のムタロターゼ、1.5mmol/L の４−アミノアンチピリン（４−ＡＡＰ）を含む 100mmol/Lリン酸カリウム緩衝液（pH 7.5）475 μL を添加し、３７℃で２０分間反応した。【００５０】次に、10U/mL濃度のキシリトールオキシダーゼ（ストレプトミセス属の微生物由来）、25U/mL濃度のペルオキシダーゼ (西洋わさび由来) 、1mg/mLのＮａＮ3 、7.5mmol/L の３−ヒドロキシ−２，４，６−トリヨード安息香酸（ＨＴＩＢ）を含む 100mmol/Lリン酸カリウム緩衝液（pH 7.5）100 μL を添加し、３７℃で２０分間発色反応を行い、発色反応における 515nmの吸光度の増加を分光光度計で測定した。検量線の測定結果を図２に示す。検量線は１から 40mg/L まで直線となり、Ｄ−ソルビトールの測定が可能であることが示された。【００５１】実施例３ （Ｂ法による血清検体の測定）健常者の血清Ｋ、Ｓ及びそれらの血清やＤ−グルコース溶液(100mg/L) にＤ−ソルビトールを添加したものを検体として、Ｂ法（参考例２）に従って操作し、図２の検量線から検体中のＤ−ソルビトール測定値を求めた。その結果を表３に示す。Ｄ−ソルビトールは、健常者の血清には僅かしか含まれていないことが知られている。また、腎不全患者を想定したＤ−ソルビトール添加血清での測定値は、ほぼ理論値に近い回収率であった。このことから、Ａ法と同様に、Ｂ法は信頼できるＤ−ソルビトールの測定法であることが示された。【００５２】実施例４ （Ｂ法の汎用型生化学分析装置への適用）Ｄ−ソルビトールの標準液および実施例３と同一の血清を検体とし、これらの検体のそれぞれ 10 μL に、2000U/mLのＧＯＤ、400U/mL のカタラーゼ、10U/mLのムタロターゼ、1.5mmol/L の４−アミノアンチピリン（４−ＡＡＰ）を含む 100mmol/Lリン酸カリウム緩衝液（pH 7.5）からなる第１試薬（Ｒ−１）300 μL を加えて３７℃で５分間インキュベートした。【００５３】その後、10U/mL濃度のキシリトールオキシダーゼ（ストレプトミセス属の微生物由来）、50U/mL濃度のペルオキシダーゼ (西洋わさび由来) 、1mg/mLのＮａＮ3 、7.5mmol/L の３−ヒドロキシ−２，４，６−トリヨード安息香酸（ＨＴＩＢ）を含む 100mmol/Lリン酸カリウム緩衝液（pH 7.5）からなる第２試薬（Ｒ−２）50μL を添加し、３７℃で５分間発色反応を行い、第２試薬添加後の主波長 546nm（副波長 660nm）における吸光度の増加を、日立７１５０形自動分析装置で測定した。結果を表３に示す。実施例３とほぼ同様な結果が得られた。【００５４】【表３】【００５５】【発明の効果】以上説明した本発明によれば、腎不全、糖尿病などの診断に利用できる簡単で特異的なＤ−ソルビトールの測定方法およびＤ−ソルビトールの測定用キットが提供される。【図面の簡単な説明】【図１】本発明のＡ法によるＤ−ソルビトールの検量線である。【図２】本発明のＢ法によるＤ−ソルビトールの検量線である。 Ｄ−ソルビトールとＤ−グルコースを含有する検体に、Ｄ−グルコースを消去する前処理を施した後、Ｄ−ソルビトールを酸化してＤ−グルコースを生成させる酸化酵素を作用させ、該酵素反応によるＤ−ソルビトールの酸化で生成したＤ−グルコースを検出することを特徴とする検体中のＤ−ソルビトールの測定方法。 Ｄ−ソルビトールを酸化してＤ−グルコースを生成させる酸化酵素がソルビトールオキシダーゼ、キシリトールオキシダーゼ又はマンニトールオキシダーゼである請求項１記載の測定方法。 Ｄ−グルコースを消去する前処理の方法およびＤ−グルコースを検出する方法がグルコースオキシダーゼ、ピラノースオキシダーゼ、グルコースデヒドロゲナーゼ又はグルコース−６−ホスフェートデヒドロゲナーゼを使用する方法である請求項１又は請求項２記載の測定方法。 Ｄ−グルコースを消去する前処理剤、Ｄ−ソルビトールを酸化してＤ−グルコースを生成させる酸化酵素およびＤ−グルコース検出試薬を含有するＤ−ソルビトール測定用キット。 Ｄ−グルコース消去用前処理とＤ−ソルビトール検出試薬に同一酵素を使用する請求項４の測定用キット。